Un modèle animal approprié est nécessaire pour comprendre les mécanismes pathologiques sous-jacents à la sténose valvulaire aortique (SVA) et pour évaluer l’efficacité des interventions thérapeutiques. Le présent protocole décrit une nouvelle procédure pour le développement du modèle de lapin AVS via une blessure directe par ballonnet in vivo.
Les modèles animaux apparaissent comme un outil important pour comprendre les mécanismes pathologiques sous-jacents à la sténose valvulaire aortique (SVA) en raison du manque d’accès à des sources fiables de valves aortiques humaines malades. Parmi les différents modèles animaux, les modèles de lapins AVS sont l’un des plus couramment utilisés dans les études sur les grands animaux. Cependant, les modèles traditionnels de lapins AVS nécessitent une longue période de supplémentation alimentaire et de manipulation génétique pour induire une sténose significative de la valve aortique, ce qui limite leur utilisation dans les études expérimentales. Pour remédier à ces limitations, un nouveau modèle de lapin AVS est proposé, dans lequel la sténose est induite par une lésion directe de la valve aortique par ballonnet. Le présent protocole décrit une technique efficace pour induire l’AVS chez les lapins blancs de Nouvelle-Zélande (NZW), avec des procédures étape par étape pour la préparation, l’intervention chirurgicale et les soins postopératoires. Ce modèle simple et reproductible offre une approche prometteuse pour l’étude de l’initiation et de la progression de l’AVS et constitue un outil précieux pour étudier les mécanismes pathologiques sous-jacents de la maladie.
Il est de plus en plus reconnu que l’utilisation de modèles animaux appropriés peut contribuer à une meilleure compréhension des mécanismes pathologiques sous-jacents à la sténose valvulaire aortique (SVA) en raison du manque d’accès à des sources fiables de valves aortiques humaines malades associées à la progression de la sténose aortique (SA). Parmi les différents modèles animaux pour l’étude de l’AVS, les lapins sont l’un des modèles AVS les plus couramment utilisés pour les grands animaux, et le modèle AVS du lapin est induit soit par une supplémentation en cholestérol/vitamine D2, soit par des manipulations génétiques 1,2,3,4.
Bien que les modèles AVS de lapin aient fourni des informations significatives sur le développement et la progression de l’AVS, il reste encore difficile d’induire l’AVS de manière cohérente et reproductible, comme on l’a vu dans nos expériences préliminaires.
En plus des modèles animaux induits par l’alimentation et génétiquement prédisposés, un nouveau modèle d’AVS a été établi par lésion mécanique directe chez la souris 5,6. Le modèle de lésion mécanique induit avec succès une sténose aortique et représente un modèle AVS simple et reproductible chez les souris de type sauvage. À notre connaissance, il n’y a pas eu d’études antérieures examinant les effets d’une lésion mécanique sur la valve aortique dans des modèles de lapin. Ainsi, cette étude fournit une nouvelle procédure pour induire l’AVS chez les lapins blancs mâles de Nouvelle-Zélande par une lésion directe de la valve aortique par ballonnet, qui peut imiter avec précision l’état de sténose aortique valvulaire. Ce protocole comprend des descriptions étape par étape de la préparation, de l’intervention chirurgicale et des soins postopératoires, qui sont utiles pour induire des modèles de lapin AVS reproductibles.
Les modèles de SVA chez l’animal sont couramment utilisés pour étudier les aspects pathologiques du SVA, y compris l’initiation et la progression du SVA. Ce protocole introduit un nouveau modèle AVS de lapin induit par une lésion directe de la valve aortique par ballonnet. Dans cette étude, le modèle de lésion valvulaire aortique a montré un épaississement et une calcification significatifs des feuillets. Par rapport au modèle AVS léger induit par une supplémentation alimentaire, la valve aortique dans l…
The authors have nothing to disclose.
Ce travail a été soutenu par une subvention de la National Research Foundation of Korea (NRF) financée par le gouvernement coréen (MSIT) (n° 2020R1A4A3079570), le ministère de l’Éducation (n° 2021R1I1A1A01051425) et le programme de développement technologique stratégique industriel (n° 20014873) financé par le ministère du Commerce, de l’Industrie et de l’Énergie de la République de Corée.
3-0 Silk suture | AILEE | SK312 | |
4% paraformaldehyde(PFA) | Intron | IBS-BP031-2 | |
Alizarin red Solution | Millpore | TMS-008-C | |
ASAHI SION BLUE | ASAHI | Guide wire | |
Back Table Cover | Yuhan kimberly | 80101-30 | |
Balloon In-deflation Device | Demax Medical | DID30s | |
Bionet Veterinary monitor | BIONET | BM3 VET | |
C-Arm | SIEMENS Healthcare GmbH | Cios alpha | |
Certified Rabbit Diet | Purina | 5322 | 4.7% Hydrogenated Coconut Oil, 0.5% Cholesterol, & 1% Molasse |
Curadle Smart Incubator | Autoelex | CS-CV206 | Intensive Care Unit (ICU) |
Ergocalciferol | Sigma-aldrich | E5750 | Vitamin D2 |
Fechtner conjunctiva forceps titanium | WORLD PRECISSION Instrument | WP1820 | |
Forceps | HEBU | HB203 | |
Gentamicin | Shin Poong | ||
Glycopyrrolate | SamChunDang | ||
Greenflex NS | DAI HAN PHARM | Normal saline 500 mL | |
Hematoxylin solution | Sigma-aldrich | HT1079-1 SET | |
Heparin | JW pharmaceutical | 25,000 U | |
Infusion set for single use | SWOON MEDICAL | ||
Iodine | Green pharmaceutical | ||
Iodixanol | GE Healthcare | Visipaque | Inflation solution (contrast agent) |
IV catheter 22 G | BD | 382423 | |
IV catheter 24 G | BD | 382412 | |
Ketoprofen | SamChunDang | ||
Luer-Lok syringe 10 mL | Becton Dickinson Medical | ||
Luer-Lok syringe 3 mL | Becton Dickinson Medical | ||
Microscope | OLYMPUS | SZ61 | |
Microtome | ThermoFisher Scientific | HM 325 | |
MT stain kit | Sigma-aldrich | HT15-1kt | |
Needel holder | Solco | 009-1304 | |
Needle Holder with Lock and Suture | JEUNGDO BIO & PLANT | H-1222-18 | |
Paraffin | LK LABKOREA | H06-660-107 | |
PBS | Gibco | 10010-023 | |
Potassium chloride 40 | Daihan Pharm | KCl | |
Prelude Ideal Hydrophilic Sheath | MERIT MEDICAL | PID4F11018SS | Sheath 4F |
PTA Balloon Dilatation catheter | Boston Scientific | H749-3903280208-0 | Balloon catheter 8.0 mm |
Rompun | Elanco | Xylaxine | |
sterile Gauze | DAE HAN Medical | 10 cm x 20 cm | |
Surgical Gloves | Ansell | Ansell | |
Surgical Gown | Yuhan kimberly | 90002-02 | |
Surgical Scissors | Nopa, Germany | AC020/16 | |
Surgical Tape | 3M micopore | 1530-1 | |
Syringe 1 mL | Shin Chang Medical | ||
Syringe 10 mL | Shin Chang Medical | ||
Tissue cassette | Scilav korea | Cas3003 | |
Transducer gel | SUNGHEUNG | SH102 | |
Tridol | Yuhan Corp. | Tramadol HCl | |
Ultrasound system | Philps | Affiniti 50 | |
Von Kossa stain kit | Abcam | ab105689 | |
Zoletil 50 | Virbac korea | Tiletamine & zolazepam |