Summary

简化活体成像方法,用于在倒置共聚焦显微镜上长期监测上皮组织动力学

Published: June 30, 2023
doi:

Summary

该协议提供了一种新工具,可使用倒置共聚焦显微镜简化活体成像。

Abstract

了解正常和异常的 体内 细胞行为对于开发临床干预措施以阻止疾病的发生和进展是必要的。因此,优化成像方法至关重要,以促进原 观察细胞动力学,其中组织结构和组成不受干扰。表皮是人体最外层的屏障,也是最普遍的人类癌症(即皮肤癌)的来源。皮肤组织的可及性为使用非侵入性活体显微镜监测完整动物的上皮和真皮细胞行为提供了独特的机会。然而,这种复杂的成像方法主要是使用正置多光子显微镜实现的,这对大多数研究人员来说是一个重要的进入壁垒。本研究提出了一种定制设计的 3D 打印显微镜载物台插件,适用于倒置共聚焦显微镜,简化了活转基因小鼠耳部皮肤的长期活体成像。我们相信,这项多功能发明可以定制以适应所选择的倒置显微镜品牌和型号,并适用于对其他器官系统进行成像,这将通过显着提高活体显微镜的可及性,为广大科学研究界证明是无价的。这种技术进步对于加强我们对正常和疾病背景下活细胞动力学的理解至关重要。

Introduction

活体显微镜是一种强大的工具,可以监测细胞在不受干扰的体内环境中的行为。这种独特的方法为复杂哺乳动物器官系统的内部运作提供了关键的见解,包括肺1、大脑2、肝脏3、乳腺4、肠5 和皮肤6。此外,这种方法还揭示了肿瘤发展过程中的细胞行为改变7、伤口愈合 8,9、炎症10 和其他不同的原位病理。在这项研究中,我们专注于增强活体显微镜对完整小鼠皮肤中实时上皮和基质动力学成像的可及性。由于哺乳动物皮肤具有显着的再生和致瘤能力,了解哺乳动物皮肤中的细胞行为具有很高的临床意义。

小鼠的活体成像主要使用正置多光子显微镜进行,因为它们能够在组织深度 >100 μm11,12 提供高分辨率成像。然而,这些仪器缺乏倒置共聚焦显微镜的主力多功能性和更普遍的可及性,后者更人性化、更具成本效益,能够对培养的细胞进行成像,在图像采集过程中不需要完全黑暗,并且通常更安全,以及其他显着优势13,14.在这项研究中,我们提出了一种新工具,通过将这种方法应用于倒置共聚焦显微镜,显着提高了活体成像的可及性。

在这里,我们展示了一种 3D 打印的定制载物台插入设计,该设计结合了几个关键功能,以促进在倒置共聚焦显微镜上对小鼠耳部皮肤进行稳定、长期的活体成像(图 1、图 2、图 3、图 4图 5)。这些特殊功能包括一个偏移物镜孔,允许成年小鼠的整个身体在成像过程中完全平放。这最大限度地减少了小鼠身体运动对成像的振动干扰,并且无需使用氯胺酮和甲苯噻嗪来抑制呼吸,这种做法通常与活体成像相结合6。此外,插入物上的角支架可正确定位异氟醚鼻锥以与鼠标正面对齐,金属耳夹将鼠标耳朵固定在定制的盖玻片上,可选的可拆卸闭环生物反馈加热板齐平放置在插入物内,以在长时间成像期间支持小鼠体温。定制的盖玻片盘为小鼠头部和耳朵平放提供了必要的平坦表面,它是在机械车间通过去除含有通用盖玻片的细胞培养皿的壁而产生的。将 40 倍硅油浸没透镜(1.25 数值孔径 [N.A.],0.3 mm 工作距离)与盖玻片和定制载物台插件结合使用,可提供深入耳真皮> 50 μm 的高分辨率图像。

为了测试这种新的倒置显微镜载物台插入物的功能,我们在活的转基因K14-H2B-mCherry15成年小鼠的耳朵中捕获了跨越所有表皮上皮层的z-stacks(该小鼠系中的上皮细胞核含有红色荧光标记)(图6A-A)。我们还在活转基因 Pdgfra-rtTA16 的耳朵中捕获了 3 小时内跨越皮肤真皮内多个成纤维细胞层的 z 堆栈;pTRE-H 2 B – GFP17成年小鼠(该小鼠系中的成纤维细胞核在多西环素诱导后含有绿色荧光标记)(图6B-D)。我们的高分辨率数据显示,由于 x、y 和 z 平面没有漂移,因此具有一致的稳定性,从而证明了这种新型活体成像工具在倒置显微镜上使用的有效性。重要的是,这种3D打印载物台插件的尺寸可以调整,如补充文件1、补充文件2和补充文件3中所述,以适应任何倒置显微镜,并且物镜开口的位置可以移动到插件内的其他位置,以更好地适应感兴趣的特定组织和/或动物模型的成像。因此,这项发明可以使单个实验室或具有核心设施共聚焦访问能力的研究人员能够根据其独特的活体成像需求调整该工具,从而简化对各种体内细胞生物学的评估。

Protocol

这项研究是按照埃默里大学和亚特兰大退伍军人事务医疗中心的动物护理和使用指南进行的,并已获得机构动物护理和使用委员会 (IACUC) 的批准。 1. 在倒置显微镜载物台上安装实时成像插件 使用 .stl 文件(补充文件 1、补充文件 2 和补充文件 3)构建插入物,指定 3D 尺寸和设计(参见图 1 和图 2A)、3D <st…

Representative Results

通过在≥1小时的时间过程中获取荧光标记的活耳组织的z堆栈来验证在倒置共聚焦显微镜上正确组装活成像插入物以及转基因小鼠在插入物顶部的适当方向,并且在x轴,y轴和z轴上漂移的证据最小。图像应以一致的间隔捕获(间隔时间将取决于生物学问题、荧光信号的强度等),以便可以随时间跟踪细胞动力学和图像漂移。在整个时间过程中,监测单个 z 平面以确保它们保持焦点,揭示动物运动?…

Discussion

在这项研究中,我们提出了一种新工具,该工具有助于在倒置共聚焦显微镜上对完整的小鼠皮肤上皮进行稳定、长期的活体成像。本发明由PLA制成,PLA是最常见和最便宜的3D打印材料;该插件的所有内部 3D 打印成本为 < 美元。两个独立的插入件( 1、补充文件 1 和补充文件 2)可以使用固定螺钉轻松组装(参见 材料表)。值得注意的是?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

我们感谢 Valentina Greco 的 K14-mCherry-H2B 小鼠。我们感谢埃默里大学物理系机械车间生产玻璃盖玻片盘。这项工作由美国退伍军人事务部 BLRD 服务向 LS 颁发的职业发展奖 #IK2 BX005370 资助,向 MJMR 颁发 NIH 奖 RF1-AG079269 和 R56-AG072473,以及向 MJMR 颁发的 I3 Emory SOM/GT 计算和数据分析奖。

Materials

3D Printer Qudi Tech i-Fast 3D prints using PLA material
40x 1.25NA silicone objective lens Nikon
AxR Laser Scanning Confocal Microscope Nikon
Cotton Tipped Swab VWR 76337-046 Cream/ointment application
Doxycycline hyclate Sigma-Aldrich D9891 Induces GFP labeling of fibroblast nuclei in Pdgfra-rtTA; pTRE-H2B-GFP mice
Flathead Screwdriver (2.5 mm) Affiix insert to microscope stage
Flathead Screws x 4 (#6-32) Nikon Screw insert into microscope stage
Glass Bottom Culture Dish chemglass Life Sciences CLS-1811-002 Modified by removing walls of dish for use as coverslip disk compatible with live insert; 35 mm wide disk contains 20 mm wide glass coverslip; dish walls were removed by machine shop
Heat Plate controller Physitemp TCAT-2LV Animal Temperature Controller – Low Voltage; anal prob attachment for mouse body temperature monitoring
Hex Wrench (1.5 mm) For M3 setscrew adjustments
Hex Wrench (2.5 mm) Adjust tension on metal ear clip
Intravital Imaging Insert
Isoflurane Med-Vet International HPA030782-100uL Mouse anesthesia
Labeling Tape (or Scotch Tape) VWR 10127-458 Alternative to metal ear clip to immobilize ear to coverslip
Metal fastener used as ear clip
Mouse: C57BL/6-Pdgfraem1(rtTA)Xsun/J The Jackson Laboratory RRID: IMSR_JAX:034459 Fibrroblast-specific promoter driving doxycycline-inducible rtTA expression
Mouse: K14-H2BPAmCherry Courtesy of Dr. Valentina Greco at Yale University Labels epidermal epithelial cell nuclei with mCherry; referred to in text as "K14-H2B-mCherry"
Mouse: pTRE-H2B-GFP: STOCK
Tg(tetO-HIST1H2BJ/GFP)47Efu/J
The Jackson Laboratory RRID: IMSR_JAX:005104  Labels fibroblast nuclei with GFP when combined with Pdgfra-rtTA and induced with doxycycline
Multipurpose Sealing Wrap Glad Enhance mouse warmth
Optixcare VWR MSPP-078932779 Eye lubricant
Set screws x 3 (M3; 6 mm) Thorlabs SS3M6 Attachment for heatplate module
Silicone Immersion Oil Applied to 40x silicone objective
Small Animal Heating Plate Physitemp HP-4M Provides heat to animal
Somnoflow Low-Flow Electronic Vaporizer Kent Scientific SF-01 Mouse anesthesia
Vacuum Grease Flinn Scientific AP1095 Seals coverslip disk to insert
Veet hair removal 
Water circulating heat pad Stryker Medical TP700 for mouse revival post-imaging

References

  1. Babes, L., Yipp, B. G., Senger, D. L. Intravital microscopy of the metastatic pulmonary environment. Methods in Molecular Biology. , 383-396 (2023).
  2. Nal Chen, ., et al. Neutrophils promote glioblastoma tumor cell migration after biopsy. Cells. 11 (14), 2196 (2022).
  3. Courson, J. A., Langlois, K. W., Lam, F. W. Intravital microscopy to study platelet-leukocyte-endothelial interactions in the mouse liver. Journal of Visualized Experiments. 188 (188), (2022).
  4. Rios, A. C., van Rheenen, J., Scheele, C. L. G. J. Multidimensional imaging of breast cancer. Cold Spring Harbor Perspectives in Medicine. 13 (5), (2022).
  5. Fischer, M., Edelblum, K. L. Intravital microscopy to visualize murine small intestinal intraepithelial lymphocyte migration. Current Protocols. 2 (8), (2022).
  6. Pineda, C. M., et al. Intravital imaging of hair follicle regeneration in the mouse. Nature Protocols. 10 (7), 1116-1130 (2015).
  7. Entenberg, D., Oktay, M. H., Condeelis, J. S. Intravital imaging to study cancer progression and metastasis. Nature Reviews. Cancer. 23 (1), 25-42 (2023).
  8. Turk, M., Biernaskie, J., Mahoney, D. J., Jenne, C. N. Intravital microscopy techniques to image wound healing in mouse skin. Methods in Molecular Biology. , 165-180 (2022).
  9. Pal Arndt, ., et al. A quantitative 3D intravital look at the juxtaglomerular renin-cell-niche reveals an individual intra/extraglomerular feedback system. Frontiers in Physiology. 13, 980787 (2022).
  10. Oal Yam, A., et al. Neutrophil conversion to a tumor-killing phenotype underpins effective microbial therapy. 癌症研究. 83 (8), 1315-1328 (2023).
  11. Huang, S., Rompolas, P. Two-photon microscopy for intracutaneous imaging of stem cell activity in mice. Experimental Dermatology. 26 (5), 379-383 (2017).
  12. Durr, N. J., Weisspfennig, C. T., Holfeld, B. A., Ben-Yakar, A. Maximum imaging depth of two-photon autofluorescence microscopy in epithelial tissues. Journal of Biomedical Optics. 16 (2), 026008 (2011).
  13. Tauer, U. Advantages and risks of multiphoton microscopy in physiology. Experimental Physiology. 87 (6), 709-714 (2002).
  14. Yoshitake, T., et al. Direct comparison between confocal and multiphoton microscopy for rapid histopathological evaluation of unfixed human breast tissue. Journal of Biomedical Optics. 21 (12), 126021 (2016).
  15. Mesa, K., Rompolas, P., Zito, G., et al. Niche-induced cell death and epithelial phagocytosis regulate hair follicle stem cell pool. Nature. 522, 94-97 (2015).
  16. Ral Li, ., et al. Pdgfra marks a cellular lineage with distinct contributions to myofibroblasts in lung maturation and injury response. eLife. 7, (2018).
  17. Tal Tumbar, ., et al. Defining the epithelial stem cell niche in skin. Science. 303 (5656), 359-363 (2004).
  18. Ewald, A. J., Werb, Z., Egeblad, M. Monitoring of vital signs for long-term survival of mice under anesthesia. Cold Spring Harbor Protocols. 2 (2), 5563 (2011).
  19. Sanderson, J. Multi-photon microscopy. Current Protocols. 3 (1), 634 (2023).

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Hamersky IV, M., Tekale, K., Winfree, L. M., Rowan, M. J. M., Seldin, L. Streamlined Intravital Imaging Approach for Long-Term Monitoring of Epithelial Tissue Dynamics on an Inverted Confocal Microscope. J. Vis. Exp. (196), e65529, doi:10.3791/65529 (2023).

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