Summary

Rejet de fond de fluorescence de résonance et spontanée microspectroscopie Raman

Published: May 18, 2011
doi:

Summary

Nous discutons de la construction et l'exploitation d'un système optique complexe non linéaire qui utilise ultrarapide tout-optiques de commutation pour isoler Raman de signaux de fluorescence. Grâce à ce système, nous sommes en mesure de séparer les signaux succès Raman et de fluorescence en utilisant des énergies d'impulsion et de puissances moyennes qui restent biologiquement sûrs.

Abstract

Spectroscopie Raman est souvent en proie à un fond fluorescent intense, surtout pour les échantillons biologiques. Si un échantillon est excité par un train d'impulsions ultra-rapides, un système qui peut séparer temporairement spectralement chevauchement des signaux sur une échelle de temps picoseconde permet d'isoler rapidement arriver Raman de la lumière diffusée à partir de fin-lumière de fluorescence qui arrivent. Ici, nous discutons de la construction et l'exploitation d'un système optique complexe non linéaire qui utilise tout-optiques de commutation sous la forme d'un portail de faible puissance Kerr optique d'isoler les signaux Raman et de fluorescence. Une seule 808 nm laser avec 2,4 W de puissance moyenne et de 80 MHz taux de répétition est divisée, avec environ 200 mW de lumière 808 nm étant converti en <5 mW de 404 nm de lumière envoyée sur l'échantillon pour exciter la diffusion Raman. Le reste de lumière inconvertis 808 nm est ensuite envoyé à un milieu non linéaire où il agit comme la pompe pour l'obturateur tout-optique. L'obturateur s'ouvre et se ferme en 800 fs avec une efficacité maximale d'environ 5%. Grâce à ce système, nous sommes en mesure de séparer les signaux succès Raman et de fluorescence à un taux de répétition de 80 MHz en utilisant des énergies d'impulsion et de puissances moyennes qui restent biologiquement sûrs. Parce que le système n'a pas de capacité de réserve en termes de puissance optique, nous détaillons quelques considérations de conception et de l'alignement que l'aide à maximiser le débit du système. Nous discutons également de notre protocole pour l'obtention du chevauchement spatial et temporel du signal et des poutres de pompe dans le milieu Kerr, ainsi que d'un protocole détaillé pour l'acquisition spectrale. Enfin, nous rapportons un des résultats représentatifs de quelques spectres Raman, obtenu en présence d'une forte fluorescence à l'aide de notre temps de déclenchement du système.

Protocol

1. Certaines précautions doivent être prises dans la préparation et à placer un échantillon Raman dans ce système. Parce que le système permet généralement l'utilisation d'objectifs très élevés ouverture numérique avec de très courtes distances de travail, les échantillons sont placés sur une lamelle. Les échantillons biologiques sont généralement placés sur une lamelle d'épaisseur n ° 1 monté dans une chambre de la cellule Attofluor (Invitrogen, Carlsbad, CA). Les…

Discussion

Le domaine de la spectroscopie Raman biomédicale a constaté un intérêt croissant au cours des dernières années en raison de son potentiel démontré pour résoudre plusieurs défis difficiles dans le diagnostic biologique. Par exemple, les spectres Raman ont été montré pour avoir une valeur diagnostique dans le cancer de détection 3, 4, 5, 6. La spectroscopie Raman a également été utilisée dans la quantification bactérienne 7, 8 et 9 réponse aux médicaments bactérienne….

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été financé par la NSF prix DBI 0852891. Une partie de ce travail a également été financée par le Centre pour la science et la technologie biophotonique, un désigné NSF Science et Technology Center géré par l'Université de Californie, Davis, sous l'accord de coopération n ° PHY0120999.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Lenses ThorLabs Various All lenses coated to have maximum transmission losses of 1% each
Tunable Ti:Sapph laser Coherent Chameleon 30 nJ, 200 fs, 80 MHz
40X oil immersion objective Olympus UApo/340 NA = 1.35
Inverted microscope Olympus IX-71 Modified to remove all lenses in side port
Half wave plate Thorlabs AHWP05M-600  
Glan-Thompson polarizer Thorlabs GTH10M ˜10% transmission loss
Spectrometer PI Acton SP2300i  
CCD PI Acton Pixis 100B  
Mathmatical software The MathWorks MATLAB version 2008a
Faraday isolator EOT BB8-5I  
Piezo-electric mirror Newport AG-M100  
BBO crystal CASIX custom 1 mm thickness
Bandpass filter 1 Andover 008FC14 808 ± 0.4 nm
Dichroic mirror Semrock FF662-FDI01 band edge at 662 nm
Long-pass filter Semrock BLP01-405R band edge at 417 nm
Bandpass filter 2 Semrock FF02-447/60 417-447 nm
CS2 Sigma-Aldrich 335266 99% purity
Coumarin 30 Sigma-Aldrich 546127 99% purity
Immersion oil Cargille 16242 Type DF

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Diesen Artikel zitieren
Smith, Z. J., Knorr, F., Pagba, C. V., Wachsmann-Hogiu, S. Rejection of Fluorescence Background in Resonance and Spontaneous Raman Microspectroscopy. J. Vis. Exp. (51), e2592, doi:10.3791/2592 (2011).

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