Summary

Isolamento de células do sistema imunológico funcional cardíaca

Published: December 05, 2011
doi:

Summary

Este método para isolar células do sistema imunológico funcional do coração fornece uma alternativa aos métodos convencionais de digestão da colagenase, que causa a ativação de células imunes indesejadas, resultando em uma capacidade de resposta diminuiu dessas células. Nosso método de isolamento de rendimentos funcional cardíaca células do sistema imunológico, evitando os problemas associados com a digestão enzimática.

Abstract

Cardíacas células do sistema imunológico estão ganhando interesse para os papéis que desempenham no remodelamento patológico em muitas doenças cardíacas 05/01 Estas células do sistema imunológico, que incluem os mastócitos, células T e macrófagos;. Armazenar e liberar uma variedade de mediadores biologicamente ativos, incluindo citocinas e proteases, como triptase. 6-8 Esses mediadores têm se mostrado os jogadores-chave no metabolismo da matriz extracelular pela ativação de metaloproteinases de matriz ou causando acúmulo de colágeno por função modular os fibroblastos cardíacos. 9-11 No entanto, as técnicas disponíveis para isolar células do sistema imunológico têm cardíaca sido problemática, porque eles usam a colagenase bacteriana para digerir o tecido do miocárdio. Esta técnica faz com que a ativação das células imunes e, portanto, uma perda de função. Por exemplo, cardíaco mastócitos tornam-se significativamente menos sensíveis aos compostos que causam degranulação. 12 Por isso, desenvolvemos uma técnica que permite a tele isolamento de células do sistema imunológico funcional cardíaca que levaria a uma melhor compreensão do papel destas células na doença cardíaca. 13, 14

Este método requer uma familiaridade com a localização anatômica do rato processo xifóide axila, e ligamento falciforme, e pericárdio do coração. Estes marcos são importantes para aumentar o sucesso do procedimento e garantir uma maior produção de células do sistema imunológico cardíaca. Estes isolados cardíaca células do sistema imunológico podem então ser utilizados para a caracterização do fenótipo, funcionalidade, maturidade e co-cultura experiências com outras células cardíacas para obter uma melhor compreensão de suas interações.

Protocol

1. Preparação de sal de Hanks Balance Solution (HBSS) Autoclave um copo de vidro L, 1000 mL proveta graduada, e mexa bar. Reconstituir a solução HBSS pó no copo de vidro autoclavados 1 L para a marca de 900 mL com água destilada duas vezes. Misturar a solução HBSS com 3,4 g de sal Hepes Na + e ajustar o pH para um valor entre 7,35-7,41 usando HCL concentrado ou NaOH. Uma vez que o pH desejado foi atingido e permanece estável, adicionar 5 g de soro albumina bovina para a …

Discussion

Este método de isolamento de células do sistema imunológico cardíaca permite a análise de sua função, o fenótipo, e maturidade, sem a ativação indesejados que normalmente ocorre durante a técnica de isolamento enzimático de digestão tradicional. O número médio total de células obtidas com esta técnica é de cerca de 400.000 por coração de rato, e coloração diferencial e análise de citometria de fluxo destas células indica população mista de linfócitos T (~ 70%), macrófagos (~ 12%) e mastócito…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi financiado por um UNCF-Merck de Pós-Graduação Pesquisa em Ciências Dissertation Fellowship (JLM), National Heart, Lung, and Blood Institute concede RO1-HL-62228 (JSJ) e RO1-HL-073990 (JSJ).

Materials

Name of Reagent and Equipment Company Catalogue Number Comments
Hanks’ Balanced Salt Sigma H4891 One bottle makes 1 L of Hanks’ Balance Salt
Solution. Reconstitute Hanks’ Balance Salt
Solution as a part of the procedure.
Antibiotic- Antimyotic Gibco 15240-062  
HEPES Sigma H3784  
Bovine Serum Albumin Sigma A3912  
250 mL Nalogene Filter Bottle Thermoscientific 157-0020  
12 N HCL Fisher Scientific CAS 7647-01-0 For 6 N, add equal volumes of HCL to deionized water.
10 N NaOH Fisher Scientific SC267 For 5 N, add equal volumes of NaOH to deionized water.
Double Distilled Water      

Table of Specific Equipment:

Name of Reagent and Equipment Company Catalogue Number Comments
3-O Suture Silk Braided Ethicon Products SA64H  
Small Animal Ventilator CWE Incorporated SAR-830 Set breathing rate to 40.5 breaths per min.
Bevel 18 gauge needle BD Biosciences 305199 Trim needle by 1/2 to 3/4 of its original length for use as a tracheal tube.
Teflon Tip (with needle removed) of 24-gauge Baxter quick-cath catheter Baxter 2N111 Reduce the Teflon Tip length by 1/2 to 3/4.
10 cc syringe Fisher Scientific 14-823-16B  
15 mL Falcon Tubes BD Biosciences 352097  
Sorvall RT6000B Refrigerated Centrifuge Fisher Scientific 75-004-377 Remember to pre-cool and keep at 4°C.
Hyclone Thermoscientific S300030.02  
Hemocytometer Hausser Scientific HS-LB-1483  

Referenzen

  1. Brower, G. L., Chancey, A. L., Thanigaraj, S., Matsubara, B. B., Janicki, J. S. Cause and effect relationship between myocardial mast cell number and matrix metalloproteinase activity. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 283, H518-H525 (2002).
  2. Brower, G. L., Janicki, J. S. Pharmacologic inhibition of mast cell degranulation prevents left ventricular remodeling induced by chronic volume overload in rats. Journal of Cardiac Failure. 11, 548-556 (2005).
  3. Chancey, A. L., Brower, G. L., Janicki, J. S. Cardiac mast cell-mediated activation of gelatinase and alteration of ventricular diastolic function. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 282, H2152-H2158 (2002).
  4. Levick, S. P., Gardner, J. D., Holland, M., Hauer-Jensen, M., Janicki, J. S., Brower, G. L. Protection from adverse myocardial remodeling secondary to chronic volume overload in mast cell deficient rats. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 43, 56-61 (2008).
  5. Levick, S. P., McLarty, J. L., Murray, D. B., Freeman, R. M., Carver, W. E., Brower, G. L. Cardiac Mast Cells Mediate Left Ventricular Fibrosis in the Hypertensive Rat. Hypertension. 53, 1041-1047 (2009).
  6. Batista, M. L., Santos, R. V., Cunha, L. M., Mattos, K., Oliveira, E. M., Seelander, M. C. Changes in the pro-inflammatory cytokine production and peritoneal macrophage function in rats with chronic heart failure. Cytokine. 34, 284-290 (2006).
  7. Galli, S. J., Tsai, M. Mast Cells: Versatile regulator of inflammation, tissue remodeling, host defense and homeostasis. Journal of Dermatological Science. 49, 7-19 (2008).
  8. Yndestad, A., Holm, A. M., Muller, F., Simonsen, S., Froland, S. S., Gullested, L. Enhanced expression of inflammatory cytokines and activation markers in T-cells from patients with chronic heart failure. Cardiovasc. Res. 60, 141-146 (2003).
  9. Bozkurt, B., Kribbs, S. B., Clubb, F. J., Michael, L. H., Didenko, V. V., Hornsby, P. J. Pathophysiologically Relevant Concentrations of Tumor Necrosis Factor-ɑ Promote Progressive Left Ventricular Dysfunction and Remodeling in Rats. Circulation. 97, 1382-1391 (1998).
  10. Frangogiannis, N. G., Lindsey, M. L., Michael, L. H., Youker, K. A., Bressler, R. B., Mendoza, L. H. Resident Cardiac Mast Cells Degranulate and Release Preformed TNF-ɑ, Initiating the Cytokine Cascade in Experimental Canine Myocardial Ischemia/Reperfusion. Circulation. 98, 699-710 (1998).
  11. Jobe, L. J., Melendez, G. C., Levick, S. P., Du, Y., Brower, G. L., Janicki, J. S. TNF-α inhibition attenuates adverse myocardial remodeling in a rat model of volume overload. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 297, H1462-H1468 (2009).
  12. Forman, M. F., Brower, G. L., Janicki, J. S. Spontaneous histamine secretion during isolation of rat cardiac mast cells. Inflammation Research. 53, 453-457 (2004).
  13. Levick, S. P., Murray, D. B., Janicki, J. S., Brower, G. L. Sympathetic nervous system modulation of inflammation and remodeling in the hypertensive heart. Hypertension. 55, 270-276 (2010).
  14. Morgan, L., Levick, S., Voloshenyuk, T., Murray, D., Forman, M., Brower, G. A novel technique for isolating functional mast cells from the heart. Inflammation Research. 57, 241-246 (2008).
check_url/de/3020?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
McLarty, J. L., Meléndez, G. C., Spencer, W. J., Levick, S. P., Brower, G. L., Janicki, J. S. Isolation of Functional Cardiac Immune Cells. J. Vis. Exp. (58), e3020, doi:10.3791/3020 (2011).

View Video