Summary

Oprichting van Microbiële Eukaryote Enrichment Culturen van een chemisch Stratified Antarctic Lake en Beoordeling van Carbon Fixatie Potentiële

Published: April 20, 2012
doi:

Summary

Microbiële eukaryoten zijn zowel een bron van fotosynthetisch afgeleide koolstof en top roofzuchtige soort in permanent met ijs bedekte Antarctische meren. Dit rapport beschrijft een verrijking cultuur benadering van het metabool veelzijdige microbiële eukaryoten isoleren van de Antarctische meer, Lake Bonney, en beoordeelt anorganische koolstof fixatie mogelijkheden met behulp van een radio-isotoop test voor ribulose-1 ,5-bisphophate carboxylase oxygenase (RuBisCO) activiteit.

Abstract

Lake Bonney is een van de vele permanent met ijs bedekte meren gelegen in het McMurdo droge valleien op Antarctica. De eeuwige ijslaag zorgt voor een chemisch gelaagde waterkolom en in tegenstelling tot andere binnenlandse wateren, grotendeels voorkomt externe input van koolstof en voedingsstoffen uit stromen. Biota worden blootgesteld aan tal van milieu-invloeden, waaronder het hele jaar door ernstige gebrek aan voedingsstoffen, lage temperaturen, extreme schaduw, hypersalinity, en 24-uurs duisternis in de winter 1. Deze extreme omstandigheden beperken de fauna en flora in Lake Bonney bijna uitsluitend voor micro-organismen 2.

Eencellige micro-organismen eukaryoten (de zogenaamde "protisten") zijn belangrijke spelers in de wereldwijde biochemische cycli 3 en spelen een belangrijke ecologische rol in de cyclus van koolstof in de droge vallei meren, waarmee het zowel de primaire en tertiaire rollen in het aquatisch voedselweb. In de droge vallei in het water levende voedselweb, protisten dat ik dat oplossennorganic koolstof (autotrophy) zijn de belangrijkste producenten van organische koolstof voor organotrofe organismen 4, 2. Phagotrophic of heterotrofe protisten staat inname van bacteriën en kleinere protisten optreden als toppredatoren in de voedselketen 5. Last, een onbekend deel van de protisten bevolking in staat is om gecombineerde mixotrophic metabolisme 6, 7. Mixotrophy in protisten betreft het vermogen om fotosynthetische capaciteit combineren met phagotrophic inname van prooi micro-organismen. Deze vorm van mixotrophy verschilt van mixotrophic metabolisme in soorten bacteriën, die over het algemeen gaat de opname opgeloste koolstof moleculen. Er zijn op dit moment zeer weinig protisten isolaten van permanent ijs bedekte polaire meren, en studies van de protisten diversiteit en ecologie in deze extreme omgeving zijn beperkt 8, 4, 9, 10, 5. Een beter begrip van protisten metabolische veelzijdigheid in het eenvoudige droge vallei meer voedselweb zal helpen bij de ontwikkeling van modellen voor de role van protisten in de mondiale koolstofcyclus.

We gebruikten een verrijking cultuur benadering van potentieel fototrofe en mixotrophic protisten isoleren van Lake Bonney. Sampling diepten in de waterkolom werden gekozen op basis van de locatie van de primaire productie maxima en protisten fylogenetische diversiteit 4, 11, en ​​variabiliteit in de grote abiotische factoren die van invloed protisten trofische modi: ondiepe bemonstering diepten zijn beperkt voor belangrijke voedingsstoffen, terwijl de diepere bemonstering diepten beperkt door de beschikbaarheid van licht. Bovendien zijn meer watermonsters aangevuld met verschillende soorten kweekmedia om de groei van verschillende fototrofe organismen.

RuBisCO katalyseert de snelheidsbepalende stap in de Calvin Benson Bassham (CBB) cyclus, de belangrijkste route door die autotrofe organismen vast anorganische koolstof en zorgen voor organische koolstof voor hogere trofische niveaus in aquatische en terrestrische voedselwebben 12. In deze studie we toegepast een radio-isotoop test aangepast voor gefilterde monsters 13 tot en met maximale carboxylase-activiteit te controleren als een proxy voor koolstof fixatie potentieel en metabolische veelzijdigheid in het Lake Bonney verrijking culturen.

Protocol

1. Afnemen van het monster Kies en de voorbereiding van de bemonstering plaats een dag voor bemonstering van de waterkolom. Hierdoor kan de gelaagde lagen van de waterkolom te hervormen na de verstoring als gevolg van boor-en ijs-holes smelten. Identificeer locatie van de boor site door GPS. Om de waterkolom toegang te krijgen, beginnen met het boren van een gat door het ijs met een Jiffy ijs grondboor gekoppeld aan een 4-inch Jiffy vlucht uitbreiding en snijden bit. Om bevriezing van de boor in het…

Discussion

De recente moleculaire studies hebben gerapporteerd grote diversiteit van eencellige eukaryoten een heel scala van omgevingen 3, 19, 20, maar als gevolg van een gebrek aan isolaten over de volle breedte van protisten habitats de functionele rol van deze individuele soorten in voedselwebben zijn grotendeels onbekend. In deze studie hebben we beschreven methoden te verrijken voor microbiële eukaryote soorten vertonen metabolische veelzijdigheid van een relatief undersampled omgeving, een permanent ijs bedekte …

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De auteurs danken J. Priscu, A. Chiuchiolo en de McMurdo LTER limnologie team voor hulp bij het verzamelen en bewaren van de monsters in Antarctica. Wij danken Ratheon Polar Services en PHI helikopters voor logistieke ondersteuning. Licht microfoto werden gegenereerd in Center Miami for Advanced Microscopy and Imaging Center. Dit werk werd ondersteund door NSF Bureau van Polar programma's Grants 0631659 en 1056396.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
BBM Sigma B5282  
BG11 Sigma C3061  
F/2 Sigma G9903  
GF/F filter, 25 mm Fisher Scientific 09-874-64  
GF/F filter, 47 mm Fisher Scientific 09-874-71  
Polyethersulfone filter, 0.45 μm pore, 47 mm Pall Life Sciences 61854  
Sterile cell culture flask, 25 cm2 Corning 430639  
Diurnal growth chamber VWR 35960-076  
Zirconia/silica beads, 0.1 mm diamter BioSpec Products 11079101z  
Mini-Bead beater BioSpec Products 3110BX  
Screw-cap microcentrifuge tube (1.5 μL) USA Scientific 1415-8700  
NaH14CO3 ViTrax VC 194 Keep in aliquots of 400 μL at -20°C
RuBP Sigma R0878-100mg Dissolve in 10 mM Tris-propionic acid (pH 6.5)

Referenzen

  1. Morgan-Kiss, R. M., Priscu, J. P., Pocock, T., Gudynaite-Savitch, L., Hüner, N. P. A. Adaptation and acclimation of photosynthetic microorganisms to permanently cold environments. Microbiol Mol. Biol. Rev. 70, 222-252 (2006).
  2. Priscu, J. C., Wolf, C. F., Takacs, C. D., Fritsen, C. H., Laybourn-Parry, J., Roberts, J. K. M., Berry-Lyons, W. Carbon transformations in the water column of a perennially ice-covered Antarctic Lake. Biosci. 49, 997-1008 (1999).
  3. Caron, D. A., Worden, A. Z., Countway, P. D., Demir, E., Heidelberg, K. B. Protists are microbes too: a perspective. ISME J. 3, 4-12 (2009).
  4. Bielewicz, S., Bell, E. M., Kong, W., Friedberg, I., Priscu, J. C., Morgan-Kiss, R. M. Protist diversity in a permanently ice-covered Antarctic lake during the polar night transition. ISME J. 5, 1559-1564 (2011).
  5. Laybourn-Parry, J. No place too cold. Science. 324, 1521-1522 (2009).
  6. Roberts, E. C., Laybourn-Parry, J. Mixotrophic cryptophytes and their predators in the Dry Valley lakes of Antarctica. Freshwat. Biol. 41, 737-746 (1999).
  7. Roberts, E. C., Priscu, J. C., Laybourn-Parry, J. Microplankton dynamics in a perennially ice-covered Antarctic lake-Lake Hoare. Freshwat Biol. 27, 238-249 (2004).
  8. Bell, E. M., Laybourn-Parry, J. Mixotrophy in the Antarctic phytoflagellate Pyramimonas gelidicola. J. Phycol. 39, 644-649 (2003).
  9. De Wever, A., Leliaert, F., Verleyen, E., Vanormelingen, P., Van der Gucht, K., Hodgson, D. A. Hidden levels of phylodiversity in Antarctic green algae: further evidence for the existence of glacial refugia. Proc. Biol. Sci. , 276-3591 (2009).
  10. Laybourn-Parry, J. Survival mechanisms in Antarctic lakes. Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 357, 863-869 (2002).
  11. Lizotte, M. P., Priscu, J. C., Priscu, J. C. Distribution, succession and fate of phytoplankton in the dry valley lakes of Antarctica, based on pigment analysis. Ecosystem Dynamics in a Polar Desert: The McMurdo Dry Valleys. , 229-240 (1998).
  12. Ellis, R. J. Most abundance protein in the world. Tren. Biochem. Sci. 4, 241-244 (1979).
  13. Tortell, P. D., Martin, C. L., Corkum, M. E. Inorganic carbon uptake and intracellular assimilation by subarctic Pacific phytoplankton assemblages. Limnol. Oceanogr. 51, 2102-2110 (2006).
  14. Jeffrey, S. W., Humphrey, G. F. New spectrophotometric equations for determining chlorophyll a, b, c1, c2 in higher plants, algae and natural phytoplankton. Biochem. Physiol. Pflanz. 167, 191-194 (1975).
  15. Morgan, R. M., Ivanov, A. G., Priscu, J. C., Maxwell, D. P., Hüner, N. P. A. Structure and composition of the photochemical apparatus of the Antarctic green alga, Chlamydomonas subcaudata. Photosyn. Res. 56, 303-314 (1998).
  16. Guillard, R. R. L., Smith, W. L., Chanley, M. H. Culture of phytoplankton for feeding marine invertebrates. Culture of Marine Invertebrate Animals. , 29-60 (1975).
  17. Johnson, M. D., Tengs, T., Oldach, D., Stoecker, D. K. Sequestration, performance, and functional control of cryptophyte plastids in the ciliate Myrionecta rubra (Ciliophora. J. Phycol. 42, 1235-1246 (2006).
  18. Rippka, R., Deruelles, J., Waterbury, J., Herdman, M., Stanier, R. Generic assignments, strain histories and properties of pure cultures of cyanobacteria. J. Gen. Microbiol. 111, 1-61 (1979).
  19. Not, F., del Campo, J., Balague, V., De Vargas, C., Massana, R. New insights into the diversity of marine picoeukaryotes. PLoS ONE. 4, e7143 (2009).
  20. Sherr, B. F., Sherr, E. B., Caron, D. A., Vaulot, D., Worden, A. Z. Oceanic Protists. Oceanography. 20, 130-135 (2007).
  21. Finlay, B. J. Protist taxonomy: an ecological perspective. Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 359, 599-610 (2004).
  22. Foissner, W. Protist diversity: estimates of the near-imponderable. Protist. 150, 363-368 (1999).
  23. Gast, R. J., Moran, D. M., Dennett, M. R., Caron, D. A. Kleptoplasty in an Antarctic dinoflagellate: caught in evolutionary transition. Environmental Microbiology. 9, 39-45 (2007).
  24. Gast, R. J., Moran, M. A., Beaudoin, D. J., Blythe, J. N., Dennett, M. R., Caron, D. A. High abundance of a novel dinoflagellate phylotype in the Ross Sea. Antarctica. J. Phycol. 42, 233-242 (2006).
  25. Moran, D. M., Anderson, O. R., Dennett, M. R., Caron, D. A., Gast, R. J. A Description of Seven Antarctic Marine Gymnamoebae Including a New Subspecies, Two New Species and a New Genus: Neoparamoeba aestuarina antarctica n. subsp., Platyamoeba oblongata n. sp., Platyamoeba contorta n. sp. and Vermistella antarctica n. gen. n. sp. Journal of Eukaryotic Microbiology. 54, 169-183 (2007).
  26. Rose, J. M., Vora, N. M., Countway, P. D., Gast, R. J., Caron, D. A. Effects of temperature on growth rate and gross growth efficiency of an Antarctic bacterivorous protist. The ISME journal. 3, 252-260 (2009).

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Dolhi, J. M., Ketchum, N., Morgan-Kiss, R. M. Establishment of Microbial Eukaryotic Enrichment Cultures from a Chemically Stratified Antarctic Lake and Assessment of Carbon Fixation Potential. J. Vis. Exp. (62), e3992, doi:10.3791/3992 (2012).

View Video