Summary

종양 및 중간 엽 줄기 세포 사이의 세포 외 기 중재 통신을 정의 하는 다리의 전 임상 마우스 모델

Published: May 06, 2018
doi:

Summary

골 종양 진행; 지원의 프로그래밍 이끌어 낸다 암 파생 extracellular 소포 (EVs)의 직접 분사 그러나, 셀 중재이 효과가 명확 하지 않습니다. 여기, 우리 EV 교육 MSCs 전이에 대 한 중요 한 역할을 드러내는 EV 중재 종양 mesenchymal 줄기 세포 (MSC) 상호 작용에서 vivo에서, 조사 하는 단계별 프로토콜을 설명 합니다.

Abstract

종양 microenvironment 내 거주 또는 모집 중간 엽 줄기 세포 (MSCs) 여러 암 종류에 악성 진행에 기여 한다. 특정 환경 신호 영향이 성인 줄기 세포 paracrine 중재자 가속된 종양 성장 및 전이 해제할 수 있습니다. 종양 및 MSCs 사이 누화를 정의 암 진행을 기본 메커니즘을 이해 하 고 치료 적 개입에 대 한 새로운 목표를 식별 하려면 기본 중요성 이다.

암 세포 생성 높은 양의 extracellular 소포 (EVs), 뿌리깊은 대상 세포 종양 microenvironment에 또는 먼 사이트에서의 동작에 영향을 미칠 수 있습니다. 종양 EVs 염증 성 RNAs 등 (onco) 단백질, 암 세포의 전이 행동을 강화 하거나 미리 전이성 틈새 시장 형성에 참여 stromal 세포 교육 수 기능 생체를 묶습니다. 이 문서에서는, 우리는 EV 중재 누화 종양 사이의 중간 엽 줄기 세포의 특정 평가 가능 하 게 하는 전 임상 암 마우스 모델의 개발을 설명 합니다. 첫째, 우리는 정화 및 종양 분 비 EVs의 특성화 및 MSCs에서 EV 국제화 평가 설명합니다. 우리 다음 게 암 EVs에 의해 유도 된 다중 구슬 기반 immunoassay MSC cytokine 식 프로필 변경을 평가 하의 사용. 마지막으로, 우리이 종양-msc와 상호 작용 하는 다리의 발광 orthotopic이 종이 식 마우스 모델의 생성을 설명 하 고 종양 성장 및 전이 형성에 EV 교육 MSCs의 기여를 표시.

우리의 모델 암 EVs 종양 지원 환경 형성 하는 방법을 정의 하 고 종양 및 MSCs 간의 EV 중재 통신의 봉쇄 암 진행을 방지 하는 여부를 평가 기회를 제공 한다.

Introduction

종양 microenvironment tumorigenesis 및 암 진행, 전이 형성 등의 치료제1저항 개발의 대부분, 그렇지 않으면 모두, 측면에서 적극적으로 참여 합니다. 이 종양 틈새에서 발생 하는 복잡 한 종양-기질 상호 작용의 해 부를 수 있는 전 임상 orthotopic 암 마우스 모델에 대 한 필요성을 강조 하고있다.

종양 microenvironment의 많은 세포 구성 성분 중에서 중간 엽 줄기 세포 (MSCs) 강하게 유방암, 전립선 암, 뇌종양, 다 발성 골 수 종, 및 다리2 등 여러 암 종류의 암 진행에 기여 ,3,,45,,67. MSCs는8,9골 수, 지방 조직, 태 반, 탯 줄 혈액, 등을 포함 하 여 다양 한 성인 그리고 태아 조직에 있는 multipotent 줄기 세포 이다. 염증 신호 암 생성에 대 한 응답, MSCs 종양 사이트 쪽으로 마이그레이션할 종양 microenvironment에 통합 고 궁극적으로 암 지원 셀10으로 차별화 합니다. 이러한 암 관련 된 MSCs 종양 진행 행동 종양 세포에 및 주변 기질2, 에 대 한 필수적인 요인 (즉, 성장 요인, 발산, cytokines, 면역 중재자) 제공 3 , 11 , 12 , 13. 동안 종양 증진 효과 암 관련 된 MSCs의 수많은 암 모델에서 조사 되어, 종양 세포는 암 홍보 틈새를 형성 하는 MSCs 재 설 정할 메커니즘 제대로 이해 하는. 여기는 orthotopic이 종이 식 모델을 구체적으로 extracellular 소포 (EVs) 통해 뼈 암 세포와 MSCs의 프로 tumorigenic 상호작용 연구의 생성에 설명 합니다.

EVs는 종양과 stromal 세포14사이 세포 커뮤니케이션의 중요 한 중개자. EVs의 원산지, 단백질, 지질, 및 규제 RNAs를 포함 하 여 세포의 기능 생체 나. 일단 세포 외 공간에서 발표,이 소포 주변 세포에 의해 채택 될 수 있다 또는 혈액 이나 림프 순환 통해 먼 사이트에 고 뿌리깊은 대상 셀 동작에 영향을 미칠 수 있습니다. 15 , 16 , 17 예를 들어, stromal 섬유 아 세포에 의해 암 EVs의 신생을 지원 하 고 종양 성장 을 vivo에서18,19, 내 피에 의해 국제화 가속 myofibroblast 차별화에 발생할 수 있습니다. 셀 수 있는 종양 혈관 신생을 자극 하 고 증가 혈관 침투성16,20, 그리고 면역 세포와의 상호 작용21antitumor 면역 반응 억제로 이어질 수도 있습니다.

우리는 최근 시연, 종양 세포 tumorigenic 프로 및 프로-전이성 형 얻으려고 MSCs 프롬프트 EVs의 높은 금액을 출시, 다리의 발광 orthotopic이 종이 식 마우스 모델을 사용 하 여. 이 효과 MSC cytokine 식 프로 파일 (“MSC 교육” 라고도 함)에 있는 극적인 변화 때문 이며 치료 인터 루 킨-6 수용 체 (IL-6R) 항 체7의 행정에 의해 방지 될 수 있다. 우리의 일 암 EVs 다리 진행 중단 microenvironment 대상 접근에 대 한 근거를 제공 하는 MSC 행동의 중요 한 변조기는 설명 했다. 여기, 우리는 EV 중재 종양-MSC 상호 작용에서 vivo에서조사 하는 단계별 프로토콜을 설명 합니다. 이 모델을 것입니다: 1) 특히 종양 microenvironment 암 EV 유도 변경 MSC 행동의 정의 2) 어떻게이 상호 작용에 기여 뼈 종양 성장 및 전이 형성, 그리고 연구 3) 방해 하는 여부를 평가 vivo에서 EV 중재 누화 암 진행을 방지합니다.

Protocol

중간 엽 줄기 세포 분리에 대 한 인간의 지방 조직 기관 윤리 위원회에 의해 승인 후 Tergooi 병원 (쉼, 네덜란드)의 성형 수술의 부서에서 얻은 고 서 면 통지 해준 동의. GFP-긍정적인 많은 MSCs는 어린이 성인 (모 데 나 대학와 레지오 에밀리 아)에 대 한 부의 의료 및 외과 과학에서 얻은 했다. 동물 실험, 동물 실험에 네덜란드 법률에 따라 수행 하 고 프로토콜 VU 대학 의료 센터, ?…

Representative Results

이 연구에서 우리는 tumorigenic 프로 및 프로-전이성 형으로 MSCs 교육 다리 분 비 EVs 수 탐험. 우리 다리 셀 MSCs에 의해 내 면화는 exosome 같은 EVs 릴리스 보여줍니다. 우리 암 EVs에 의해 유도 된 MSC cytokine 식 프로필의 변경을 측정 하 고 종양 성장 및 전이 형성에 EV 교육 MSCs의 효과 평가. 연구 디자인의 일반적인 표현은 그림 1에 나와 있습니다. <p class="j…

Discussion

종양-분 비 세포 외 소포 (EVs) 종양 지원 환경 생성 하 현지와 먼 중간 엽 세포의 생리학을 변경할 수 있습니다. 여기 우리가 종양 세포 간의 EV 중재 한 상호 작용의 해 부를 수 있는 다리의 전 임상 마우스 모델의 생성을 설명 하 고 중간 엽 줄기 세포 (MSCs) vivo에서. 우리는 인간의 종양 마우스 다리 xenografts 강하게 베어링의 EV 교육 MSCs의 조직의 주입7일-6/STAT3 신호 통로 활성…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

S.R. 발리는 유럽 연합에 의해 Cancro (AIRC) 공동 투자 라 검색 술 당 예술 우승에 의해 친교에 의해 지원 되었다. 또한,이 프로젝트 자금 유럽 연합의 지평선 2020 연구와 혁신 프로그램에서 마리 Sklodowska 퀴리 부여 계약 아무 660200 (S.R. 발리) 받았습니다.

Materials

Equipment
Ultra Centrifuge Beckman Optima L-90K
Rotor SW32Ti Beckman 369650 Referred to in the manuscript as ultra-swinging bucket rotor
Transmission electron microscope Zeiss EM109 Or similar TEM
Digital camera Nikon DMX 1200F Or similar camera
Imaging software TEM  Nikon ACT-1
Fluorescence microscope Zeiss Imager.D2 Or similar Fluorescence microscope
Imaging software FM Zeiss ZEN Blue
Incubator Nuaire 4750E
Centrifuge Hettick ROTANTA 460R
-80 Freezer Thermo electro corporation n.a.
FACS BD BD FACScalibur Or similar flow cytometer
Drill Ferm FCT-300 With 0.8 mm drill
HSS micro twist drills, 0.8 mm Proxxon 28 852 0.8 mm drill
IVIS camera Xenogen Ivis Lumina Referred to in the manuscript as bioluminescence camera. Xenogen is now part of Perkin Elmer
Living image software2.60 Xenogen / Igor Por n.a Xenogen is now part of Perkin Elmer
10 µL Syringe Hamilton Neuros Model 1701 RN
Needle: Hamilton RN Needle for Syringe, 26 Gauge, Pointstyle AS, custom length 2 cm Hamilton n.a.
Caliper Mitutoyo G08004463
Autoclave Astell n.a.
Heat Lamp Philips n.a.
Culture media
Fetal Bovine Serum Hyclone RYG35912
Platelet Lysate n.a. n.a.
IMDM medium Lonza BE12-722F
alpha-MEM medium Lonza BE02-002F
DMEM medium Lonza BE12-614F
pen/strep/glutamine GIBCO 10378-016
heparin LEO 012866-08
Trypsin/EDTA (10x) GIBCO 15400-054
Cells
adipose deriverd MSCs n.a. n.a.
GFP-positive MSCs n.a. n.a.
human fibroblasts n.a. n.a.
143B cells ATCC CRL-8303
FLUC-143B cells ATCC CRL-8303 Transduced
Disposables
Culture flasks 175 cm2 CELLSTAR 660175
50 mL tubes Greiner bio-one 210261
Freeze tubes Thermoscientific 377224
Ultra-Clear tubes Beckman 344058 Referred to in the manuscript as ultra-centrifuge tubes
0,22 µm filter Millex SLGV033RS
200 mesh Formvar-carbon-coated nickel grids EMS (Electron Microscopy Sciences)
0.5 mL insulin syringes with 29G Needle Terumo U-100 
Petri dish Sigma – Aldrich P7612
Filter paper  Thermo fisher Scientific 50363215
Reagents / kits
paraformaldehyde Alfa Aeser 43368.9M
PBS Braun 220/12257974/110
glutaraldehyde EMS (Electron Microscopy Sciences) 16300
uranyl oxalate EMS (Electron Microscopy Sciences) 22510
urany acetate EMS (Electron Microscopy Sciences) 22400
methyl cellulose EMS (Electron Microscopy Sciences) 1560
PKH67 Sigma mini67-1kt Referred to in the manuscript as GFLD
BSA Sigma A8412
CBA – human inflammatory cytokine kit BD 551811
Formaldehyde 37% VWR 104003100
Carbon Steel surgical blades Swann-Morton 206 Referred to in the manuscript as surgical knife
anti-human vimentin antibody Santa Cruz sc-6260 Clone V9
Antibody diluent DAKO S0809
HRP-labeled anti mouse IgG antibody Life Technologies 32230
DAB-kit DAKO K500711
hematoxyllin Sigma GHS232
EDTA-buffer n.a. n.a.
Citrate buffer n.a. n.a.
rabbit polyclonal anti-GFP antibody Abcam n.a. Ab290
DAPI  Life Technologies D1306
Paracetamol, 120 mg / 5 ml syrup Bayer n.a. Sinaspril, paracetamol solution for kids
Isoflurane 1000 mg/g Vumc pharmacy n.a.
buprenofine hydrochloride, 0.3 mg/ml Indivior UK Limited n.a.
lidocaine-HCL 2% Vumc pharmacy n.a.
70% ethanol VWR 93003.1006
Tissue glue Derma+Flex, formulated medical cyanoacrylate Vygon LB604060
Eyedrops: Vidisec Carbogel, 2 mg/ml Bausch+Lomb n.a.
D-luciferin, potassium salt Gold Biotechnology LUCK-1
Glass slides Thermo scientific 630-0954
Stainless steel loops  n.a. n.a.
Mice experiments
Mice, Hsd:Athymic Nude-Foxn1nu,  female, 6 weeks at arrival, bacterial status conform FELASA ENVIGO n.a.
Paper-pulp smart home (cage enrichment) Bio Services n.a.
Alpha-dri bedding material Shepperd Speciality Papers n.a.
Mouse food: Teklad global 18% protein rodent diet ENVIGO 2918-11416M
Sutures Ethicon V926H
Scissors Sigma-Aldrich S3146-1EA (or similar)
Tweezers Sigma-Aldrich F4142-1EA (or similar)

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Diesen Artikel zitieren
Lagerweij, T., Pérez-Lanzón, M., Baglio, S. R. A Preclinical Mouse Model of Osteosarcoma to Define the Extracellular Vesicle-mediated Communication Between Tumor and Mesenchymal Stem Cells. J. Vis. Exp. (135), e56932, doi:10.3791/56932 (2018).

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