Summary

Культура человека плюрипотентных стволовых клеток на поливинилового спирта Co Итаконовая кислоты гидрогели с различной жесткости Xeno свободных условиях

Published: February 03, 2018
doi:

Summary

Протокол представлен подготовить поливинилового спирта co Итаконовая кислоты гидрогели с различной жесткости, которые были привиты с и без Олигопептиды, исследовать эффект жесткости биоматериалов на дифференциацию и распространение Стволовые клетки. Жесткость гидрогели контролировался сшивки времени.

Abstract

Исследовано влияние физических сигналов, таких как жесткость биоматериалов на распространение и дифференцирования стволовых клеток, несколько исследователей. Однако большинство этих исследователей использовали Полиакриламидные гидрогели для стволовых клеток культуры в их исследованиях. Таким образом их результаты неоднозначны, поскольку эти результаты могут исходить от конкретных характеристик полиакриламида, а не из физической cue (жесткость) биоматериалов. Здесь мы описываем протокол для подготовки гидрогели, которые не основаны на полиакриламида, где различные стволовых клеток, включая клетки человеческих эмбриональных стволовых (ES) и человеческое индуцированных плюрипотентных стволовых (iPS) клеток, может быть культивировали. Гидрогели с различной жесткости были подготовлены биоинертный поливинилового спирта co Итаконовая кислоты (P-IA), с жесткостью, контролируется степень сшивки, изменяя время сшивки. P-IA гидрогели, привитый с и без Олигопептиды, производный от внеклеточного матрикса были исследованы как будущей платформы для стволовых клеток культуры и дифференциации. Культура и прохождение амниотической жидкости стволовых клеток, жировой производные стволовых клеток, клеток человека ES и клетки человека iPS это подробно описано здесь. Пальмитоила P-IA гидрогели показали Улучшенный спектакли, которые были вызваны их свойства жесткости. Этот протокол сообщает синтез биоматериала, их поверхности манипуляции, а также контролировать жесткость свойства и, наконец, их влияние на судьбу стволовых клеток с использованием условий xeno свободной культуры. Основываясь на последних исследованиях, такое изменение подложки могут выступать в качестве будущих платформ поддержки и направлять судьбу различных стволовых клеток линии для различных связей; и далее, регенерации и восстановления функции утраченных органа или ткани.

Introduction

Судьба дифференцировку стволовых клеток в конкретной линии клеток и долгосрочного распространения стволовых клеток, особенно человеческое индуцированных плюрипотентных (iPS) клетки и клетки человеческих эмбриональных стволовых (ES), как известно, регулироваться ингибиторы, факторы роста, и / или мелких биоактивных молекул в культуре средств массовой информации. Недавно физические сигналы биоматериалов, особенно жесткость биоматериалов культуры клеток, были признаны важным фактором руководящих судьба клеточной пролиферации и дифференцировки1,2, 3,4,5,6. Таким образом некоторые исследователи начали расследовать судьбу стволовых клеток, которые выращиваются на гидрогели, на дифференциации, главным образом с помощью Полиакриламидные гидрогели с разной жесткости.

Жесткость биоматериалов могут управлять фокуса спайки, морфологию клеток, клеток фенотипа и адгезии стволовых клеток, особенно в двумерные (2-D) выращивания1,2,3,5. Механо зондирования биоматериалов, стволовые клетки обычно контролируется фокуса адгезии сигнализации через Интегрин рецепторов. NMMIIA, nonmuscle миозин МИС зависимых сократительную способность Цитоскелет актина играет решающую роль в процессе mechanosensing стволовых клеток в клетки 2-D культивирования систем3,4,5, 7,8,9,10,11.

Энглер и его коллеги разработали интересный понятие, что взрослые стволовые клетки, таких как клетки костного стволовых (BMS), культивируемых на культуры клеток биоматериалов с аналогичными жесткость, конкретных тканей, склонны дифференцироваться в клетки, происходит от конкретные ткани5. BMS клетки инкубировали на 2-D мягкой Полиакриламидные гидрогели, покрытые коллаген типа I (с жесткость сравнима с тканей мозга) в расширении СМИ спонтанно склоняли дифференцироваться в начале нейрон линий, в то время как БМС клетки культивировали на гидрогели с жесткостью, похож на мышцы или коллагеновых костных тканей были найдены побудить дифференцировке в начале миоцитов и остеобластов, соответственно, на 2-D Полиакриламидные гидрогели3,5. Многие исследователи провели расследование судьбы дифференцировки стволовых клеток культивированный на Полиакриламидные гидрогели, прикол с коллагеном типа12,13,14,,1516 , 17 , 18 , 19 , 20 , 21. Однако, следует отметить, что некоторые противоречивые доклады1,18,22,,2324 существуют хорошо известные идеи, предложенные Энглер и др. 5 это потому что Энглер идея5 была разработана исключительно на Полиакриламидные гидрогели и их результаты, возникла из специфических характеристик биоматериала (Полиакриламид), а не только от физической кий (жесткость) биоматериал. Таким образом важно разработать другой тип гидрогеля, из которых жесткость может управляться сшивки гидрогелей. Для этой цели были разработаны биоинертный гидрогели, которые были подготовлены из поливинилового спирта co Итаконовая кислоты (P-IA) с различными жесткость, который контролировался степени сшивки с меняющейся сшивки время25, 26 , 27 , 28 , 29 , 30 , 31 , 32. Стволовые клетки можно выращивать на nonmodified P-IA гидрогели, а также P-IA гидрогели, привитый с внеклеточной матрицы (ECMs) и олигопептиды. В предыдущем исследовании25гемопоэтических стволовых клеток человека (hHSCs) из пуповинной крови выращивали на P-IA гидрогели с различными жесткость значения от 3 кПа до 30 кПа модуль хранения где фибронектин или пальмитоила, производный от P-IA гидрогели был привитым фибронектина (CS1, EILDVPST). Высокая ex vivo раз расширение hHSCs наблюдалось в P-IA гидрогели, привитый с CS1 или фибронектин, которого отображаются промежуточные жесткость, начиная от 12 кПа до 30 кПа25.

Человека iPS и клетки ES не может культивироваться на обычных культуры ткани из полистирола (TCP) блюда33,34 потому что человека ES и ИПК клетки требуют конкретной привязки к ECMs, например vitronectin или Ламинин поддерживать их плюрипотентности в ходе долгосрочного культуры. Таким образом несколько структур пальмитоила привитые P-IA гидрогелей с оптимальной жесткости характеристиками были разработаны и подготовлен в формирования единой цепи, единую цепь с совместного сегмента, двойная цепь с совместного сегмента и типа разветвленных цепь32. Пальмитоила последовательности были отобраны из Интегрин и Глюкозаминогликан связывания доменов ECMs. P-IA гидрогели, привитый с vitronectin производные Олигопептиды с двойной цепи или совместного сегмента, которые имеют модуль хранения примерно 25 кПа, поддерживает долгосрочные культуры человека ES и ИПК клетки для более чем 12 отрывков под xeno свободно и химических определенных условиях32. Совместный сегмент и двойной цепи с молекулы адгезии клеток на гидрогели способствовали распространению и плюрипотентности человека ES и iPS клетки32. Здесь протокол для подготовки P-IA гидрогели (с хранения модуль из 10 кПа до 30 кПа, который измерялся в влажных условиях в воздухе) привиты с и без Олигопептиды или ECMs описан. Показано, как культура и проход несколько стволовых клеток (включая амниотической жидкости стволовые клетки, жировой, полученных стволовые клетки, человеческие клетки ES и клетки человека iPS).

Protocol

Эксперименты в этом исследовании были утверждены комитетов по этике госпиталя Landseed Тайвань (СИБ-13-05) и Национальный центральный университет. Все эксперименты проводились в соответствии с все соответствующие и применимые правительственные и институциональные руководящие принципы и п…

Representative Results

P-IA гидрогели привитый с ECM-производные пальмитоила (oligoECM) или ECM с различными эластичности были подготовлены, следуя схеме реакции, как показано на рисунке 1A, с использованием различных видов oligoECM (рис. 1B). Эластичности гидрогели регулиру…

Discussion

P-IA-oligoECM и гидрогели P-IA-ECM с различной жесткости были разработаны для долгосрочного расширения человеческих ES и клетки iPS, поддержание их плюрипотентности более десяти проходов в xeno свободных условиях, а также для культуры клеток человека АСПО, объявления клетки, и гемопоэтических ствол…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Частично это исследование было поддержано Министерством науки и технологии, Тайвань под номера грантов-003 106-2119-M-008, 105-2119-M-008-006 и 104-2221-E-008-107-MY3. Это исследование также поддержали проект строительства больницы Landseed Тайвань (НКГ-LSH-105-A-001). Целевые субсидии для проведения научных исследований (номер 15K 06591) от министерства образования, культуры, спорта, науки и технологии Японии также признал. A. Хигути хотели бы признать для вице ректорате международного научного партнерства (ISPP-0062) для обучения и научных исследований, Университет короля Сауда, Эр-Рияд 11451, Королевство Саудовской Аравии.

Materials

GTPGPQGIAGQRGVV PH Japan none Specification: Oligopeptide
Abbreviation: Cyclic RGD, cRGD
GACRGDCLGA PH Japan none Specification: Oligopeptide
Abbreviation: FN1
KGGAVTGRGDSPASS PH Japan none Specification: Oligopeptide
Abbreviation: CS1
EILDVPST PH Japan none Specification: Oligopeptide
Abbreviation: VN1
KGGPQVTRGDVFTMP PH Japan none Specification: Oligopeptide
Abbreviation: HBP1
GKKQRFRHRNRKG PH Japan none Specification: Oligopeptide
Abbreviation: HBP2C
CGGGKKQRFRHRNRKG PH Japan none Specification: Oligopeptide
Abbreviation: VN1G
GGGGKGGPQVTRGDVFTMP PH Japan none Specification: Oligopeptide
Abbreviation: VN2C
GCGGKGGPQVTRGDVFTMP PH Japan none Specification: Extracellular matrix
Abbreviation: rVN
Vitronectin Thermo Fisher scientific A14700 Specification: Extracellular matrix
Abbreviation: FN
Fibronectin Sigma-Aldrich F2006 Specification: Commercially available coating material
Abbreviation: Synthemax II
Synthemax II Corning 3535 Specification: Polymer
Polyvinylalcohol-co-itaconic acid Japan VAM & Poval AF-17 Specification: Chemical
Glutaraldehyde Sigma-Aldrich G5882 Specification: Chemical
Na2SO4 Sigma-Aldrich 239313 Specification: Chemical
H2SO4 Sigma-Aldrich 339741 Specification: Chemical
Abbreviation: EDC
N-(3-Dimethylaminopropyl)-N'-ethylcarbodiimide hydrochloride Sigma-Aldrich E7750 Specification: Chemical
Abbreviation: NHS
N-hydroxysuccinimide Sigma-Aldrich 56480 Specification: Chemical
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich P6148 Specification: Chemical
Triton-X100 Sigma-Aldrich T8787 Specification: Cell culture consumable
Cell scraper Corning 3008 Specification: Cell culture consumable
Dispase II Sigma-Aldrich SI-D4693 Specification: Cell culture medium
Essential 6 Thermo Fisher scientific A1516401 Specification: Cell culture medium
Essential 8 Thermo Fisher scientific A1517001 Specification: Cell culture medium
DMEM/F12 Thermo Fisher scientific 11330-032 Specification: Cell culture medium
DMEM Thermo Fisher scientific 12800-017 Specification: Cell culture medium
MCDB 201 Sigma-Aldrich M6770 Specification: ES cell
Human ES cell WiCell Research Institute, Inc.. WA09 Specification: iPS cell
Human iPS cell Riken Cell Bank HS0077 Specification: 35 mm
Abbreviation: TCP
TCP dish Corning 353001 Specification: 60 mm
Abbreviation: TCP
TCP dish Corning 353002 Specification: 24 well dish
24 well dish Corning 353047 Specification: Blocking agent
Bovine serum albumin Sigma-Aldrich A8806 Specification: Detection reagent
Alkaline phosphatase live stain Thermo Fisher scientific A14353 Specification: Detection reagent
Hematoxylin & eosin Sigma-Aldrich 1.05175 Specification: EB formation dish
6-well ultralow attachment dish Corning 3471 Specification: Coating material
gelatin Sigma-Aldrich G9391 Specification: Coating material
Matrigel Corning 354230 Specification: Mice
NOD-SCID mice National Applied Research Laboratories None Specification: Serum
Fetal bovine serum Biological Industries 04-001-1A Specification: Antibiotic
antimycotic antibiotic Thermo Fisher scientific 15240-062 Specification: Antibody
Antibody for Nanog Invitrogen MA1-017 Specification: Antibody
Antibody for SSEA4 Abcam ab16287 Specification: Antibody
Antibody for OCT3/4 Invitrogen PA5-27438 Specification: Antibody
Antibody for Sox2 Invitrogen 48-1400 Specification: Antibody
Antibody for Smooth Muscle Actin Invitrogen PA5-19465 Specification: Antibody
Antibody for AFP Invitrogen PA5-21004 Specification: Antibody
Antibody GFAP Invitrogen MA5-15086 Specification: Antibody
Alexa Fluor 555 – conjugated Goat anti-Mouse antibody Invitrogen A-21422 Specification: Antibody
Alexa Fluor 488 – conjugated Goat anti-Rabbit antibody Invitrogen A-11008 Specification: Antibody

Referenzen

  1. Higuchi, A., Ling, Q. D., Chang, Y., Hsu, S. T., Umezawa, A. Physical cues of biomaterials guide stem cell differentiation fate. Chem. Rev. 113, 3297-3328 (2013).
  2. Higuchi, A., et al. Physical cues of cell culture materials lead the direction of differentiation lineages of pluripotent stem cells. J. Mater. Chem. B. 3, 8032-8058 (2015).
  3. Wen, J. H., et al. Interplay of matrix stiffness and protein tethering in stem cell differentiation. Nat Mater. 13, 979-987 (2014).
  4. Murphy, W. L., McDevitt, T. C., Engler, A. J. Materials as stem cell regulators. Nat. Mater. 13, 547-557 (2014).
  5. Engler, A. J., Sen, S., Sweeney, H. L., Discher, D. E. Matrix elasticity directs stem cell lineage specification. Cell. 126, 677-689 (2006).
  6. Higuchi, A., et al. Polymeric design of cell culture materials that guide the differentiation of human pluripotent stem cells. Prog. Polym. Sci. 65, 83-126 (2017).
  7. Chen, W. Q., et al. Nanotopography Influences Adhesion, Spreading, and Self-Renewal of Human Embryonic Stem Cells. ACS Nano. 6, 4094-4103 (2012).
  8. Chowdhury, F., et al. Material properties of the cell dictate stress-induced spreading and differentiation in embryonic stem cells. Nat. Mater. 9, 82-88 (2010).
  9. McBeath, R., Pirone, D. M., Nelson, C. M., Bhadriraju, K., Chen, C. S. Cell shape, cytoskeletal tension, and RhoA regulate stem cell lineage commitment. Dev. Cell. 6, 483-495 (2004).
  10. Li, D., et al. Integrated biochemical and mechanical signals regulate multifaceted human embryonic stem cell functions. J. Cell Biol. 191, 631-644 (2010).
  11. Yang, M. T., Fu, J. P., Wang, Y. K., Desai, R. A., Chen, C. S. Assaying stem cell mechanobiology on microfabricated elastomeric substrates with geometrically modulated rigidity. Nat. Protoc. 6, 187-213 (2011).
  12. Shih, Y. R. V., Tseng, K. F., Lai, H. Y., Lin, C. H., Lee, O. K. Matrix Stiffness Regulation of Integrin-Mediated Mechanotransduction During Osteogenic Differentiation of Human Mesenchymal Stem Cells. J. Bone Miner. Res. 26 (4), 730-738 (2011).
  13. Du, J., et al. Integrin activation and internalization on soft ECM as a mechanism of induction of stem cell differentiation by ECM elasticity. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 108, 9466-9471 (2011).
  14. Xue, R., Li, J. Y., Yeh, Y., Yang, L., Chien, S. Effects of matrix elasticity and cell density on human mesenchymal stem cells differentiation. J. Orthop. Res. 31 (9), 1360-1365 (2013).
  15. Mao, A. S., Shin, J. W., Mooney, D. J. Effects of substrate stiffness and cell-cell contact on mesenchymal stem cell differentiation. Biomaterials. 98, 184-191 (2016).
  16. Witkowska-Zimny, M., et al. Effect of substrate stiffness on differentiation of umbilical cord stem cells. Acta Biochim. Pol. 59 (2), 261-264 (2012).
  17. Witkowska-Zimny, M., et al. Effect of substrate stiffness on the osteogenic differentiation of bone marrow stem cells and bone-derived cells. Cell Biol. Int. 37 (6), 608-616 (2013).
  18. Macri-Pellizzeri, L., et al. Substrate stiffness and composition specifically direct differentiation of induced pluripotent stem cells. Tissue Eng. Part A. 21 (9-10), 1633-1641 (2015).
  19. Cozzolino, A. M., et al. Modulating the Substrate Stiffness to Manipulate Differentiation of Resident Liver Stem Cells and to Improve the Differentiation State of Hepatocytes. Stem Cells Int. , 5481493 (2016).
  20. Mattei, G., Ferretti, C., Tirella, A., Ahluwalia, A., Mattioli-Belmonte, M. Decoupling the role of stiffness from other hydroxyapatite signalling cues in periosteal derived stem cell differentiation. Sci. Rep. 5, 10778 (2015).
  21. Zouani, O. F., Kalisky, J., Ibarboure, E., Durrieu, M. C. Effect of BMP-2 from matrices of different stiffnesses for the modulation of stem cell fate. Biomaterials. 34 (9), 2157-2166 (2013).
  22. Ye, K., Cao, L., Li, S., Yu, L., Ding, J. Interplay of Matrix Stiffness and Cell-Cell Contact in Regulating Differentiation of Stem Cells. ACS Appl. Mater. Interfaces. 8 (34), 21903-21913 (2016).
  23. Hogrebe, N. J., Gooch, K. J. Direct influence of culture dimensionality on human mesenchymal stem cell differentiation at various matrix stiffnesses using a fibrous self-assembling peptide hydrogel. J. Biomed. Mater. Res. A. 104 (9), 2356-2368 (2016).
  24. Olivares-Navarrete, R., et al. Substrate Stiffness Controls Osteoblastic and Chondrocytic Differentiation of Mesenchymal Stem Cells without Exogenous Stimuli. PLoS One. 12, e0170312 (2017).
  25. Kumar, S. S., et al. The combined influence of substrate elasticity and surface-grafted molecules on the ex vivo expansion of hematopoietic stem and progenitor cells. Biomaterials. 34, 7632-7644 (2013).
  26. Higuchi, A., Iijima, T. DSC investigation of the states of water in poly(vinyl alcohol) membranes. Polymer. 26, 1207-1211 (1985).
  27. Higuchi, A., Iijima, T. DSC investigation of the states of water in poly(vinyl alcohol-co-itaconic acid) membranes. Polymer. 26, 1833-1837 (1985).
  28. Higuchi, A., et al. Long-term xeno-free culture of human pluripotent stem cells on hydrogels with optimal elasticity. Sci Rep. 5, 18136 (2015).
  29. Wang, P. Y., et al. Pluripotency maintenance of amniotic fluid-derived stem cells cultured on biomaterials. J Mater Chem B. 3, 3858-3869 (2015).
  30. Muduli, S., et al. Proliferation and osteogenic differentiation of amniotic fluid-derived stem cells. J Mater Chem B. 5, 5345-5354 (2017).
  31. Muduli, S., et al. Stem cell culture on polyvinyl alcohol hydrogels having different elasticity and immobilized with ECM-derived oligopeptides. JPoly Eng. 37, 647 (2017).
  32. Chen, Y. M., et al. Xeno-free culture of human pluripotent stem cells on oligopeptide-grafted hydrogels with various molecular designs. Sci Rep. 7, 45146 (2017).
  33. Higuchi, A., Ling, Q. D., Ko, Y. A., Chang, Y., Umezawa, A. Biomaterials for the feeder-free culture of human embryonic stem cells and induced pluripotent stem cells. Chem Rev. 111 (5), 3021-3035 (2011).
  34. Higuchi, A., et al. Design of polymeric materials for culturing human pluripotent stem cells: Progress toward feeder-free and xeno-free culturing. Prog Polym Sci. 39, 1348-1374 (2014).
  35. Higuchi, A., et al. Stem cell therapies for myocardial infarction in clinical trials: bioengineering and biomaterial aspects. Lab Invest. 97, 1167-1179 (2017).
  36. Higuchi, A., et al. Stem cell therapies for reversing vision loss. Trends Biotechnol. 35, 1102-1117 (2017).

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Sung, T., Li, H., Higuchi, A., Ling, Q., Yang, J., Tseng, Y., Pan, C. P., Alarfaj, A. A., Munusamy, M. A., Kumar, S., Hsu, S., Murugan, K. Human Pluripotent Stem Cell Culture on Polyvinyl Alcohol-Co-Itaconic Acid Hydrogels with Varying Stiffness Under Xeno-Free Conditions. J. Vis. Exp. (132), e57314, doi:10.3791/57314 (2018).

View Video