Summary

De Plant infectie Test: Spray en wond-gemedieerde inoculatie met de Plant Pathogen Magnaporthe Grisea

Published: August 04, 2018
doi:

Summary

Hier presenteren we een protocol om te testen van de virulentie van de plant met de plant pathogen Magnaporthe grisea. Dit verslag zal bijdragen tot de grootschalige screening van de biotypen van schimmels isolaten en dienen als een uitstekend uitgangspunt voor het begrijpen van de resistente mechanismen van planten tijdens de moleculaire veredeling.

Abstract

Planten bezitten een krachtig systeem om zich te verdedigen tegen potentiële bedreigingen door pathogene schimmels. Voor agrarisch belangrijke planten, echter het is gebleken dat huidige maatregelen ter bestrijding van deze ziekteverwekkers te conservatief en, dus, niet voldoende effectief, en ze kunnen potentieel vormen milieurisico’s. Daarom is het uiterst noodzakelijke host-weerstand factoren bij het controlerende plantenziektes natuurlijk door de identificatie van resistente kiemplasma, de isolatie en karakterisatie van resistentiegenen en de moleculaire veredeling te identificeren van resistente cultivars. In dit verband is er nodig om een nauwkeurige, snelle en grootschalige beëntingsmethode om te fokken en ontwikkelen van resistentiegenen plant. De rijst blast schimmel pathogeen Magnaporthe grisea oorzaken ernstige ziekte symptomen en verliezen opleveren. Onlangs, M. grisea heeft ontpopt als een modelorganisme voor het bestuderen van de mechanismen van plant-schimmel pathogeen interacties. Vandaar, rapporteren we de ontwikkeling van een plant virulentie testmethode die specifiek is voor M. grisea. Deze methode biedt voor zowel spray inoculatie met een conidial suspensie en verwonden inoculatie met mycelium kubussen of druppels van conidial schorsing. De belangrijkste stap van de verwonding beëntingsmethode voor vrijstaande rijst bladeren is om wonden op de bladeren van de plant, die elke storing die wordt veroorzaakt door gastheer penetratieweerstand vermeden. Deze spray/verwonden protocol draagt bij aan de snelle, nauwkeurige en grootschalige screening van de biotypen van M. grisea isolaten. Dit geïntegreerd en systematische plant infectiemethode zal dienen als een uitstekend uitgangspunt voor het verkrijgen van een breed perspectief van onderwerpen in de fytopathologie.

Introduction

Rijst blast, veroorzaakt door M. grisea, is een van de ernstigste ziekten voor rijst variëteiten wereldwijd1,2. Het proces waarmee M. grisea gastheerplanten infecteert omvat een conidiën productie als oppervlakte gehechtheid, een conidiën kieming en de vorming van appressorium, een formatie van de penetratie peg en besmettelijke schimmeldraad differentiatie, en een ziekte verspreid 3. al deze fasen zijn gebruikelijk in vele andere plant plantpathogene schimmels en, inderdaad, een blokkade van alle ééntraps voorkomt dat de besmetting van waardplanten. Als gevolg van zijn economische belang en de genetische werkwillig, heeft M. grisea ontpopt als een modelorganisme voor het bestuderen van de mechanismen van de plant-schimmel pathogeen interacties1,4. Dus, het bestuderen van de moleculaire basis van deze ontwikkelingsstadia in M. grisea zal helpen ophelderen van de moleculaire mechanismen die ten grondslag liggen aan de schimmel pathogeniteit en de identificatie van kandidaat-doelgenen voor screening en ontwerpen roman fungiciden5.

Recente verslagen over M. grisea infectie hebben gericht op de moleculaire mechanismen van de stadia van de pre-penetratie, met name de conidiation, de appressorium-vorming, de penetratie pinnen en de besmettelijke groei3, 6. het is daarom essentieel voor de ontwikkeling van een gedetailleerd protocol om te testen van M. grisea infectie. Hierin presenteren wij een gedetailleerde methode voor een infectie-test die maakt gebruik van de spray-gemedieerde infectie testen met een conidial vering en de inoculatie van wonden met mycelial stekkers van M. grisea. In dit verslag, het protocol is gericht op de cultuur van stammen, de voorbereiding van de conidiation oplossing voor het spuiten, en de mycelial plug-gemedieerde inoculatie van planten met M. grisea. Deze stappen worden beschreven in detail hieronder, en een schematische weergave van de volledige workflow van de methode en een typische laesie worden weergegeven in de figuren 1 en 2, respectievelijk.

Protocol

1. spray inoculatie met een suspensie van M. grisea conidiën Schimmel cultuur voor M.grisea Het kweekmedium havermout tomaat agar (OTA) voorbereiden op schimmel stammen. Weeg 30-50 g havermout, voeg dit toe aan 800 mL gedestilleerd/gedeïoniseerd water (ddH2van O) en kook het mengsel gedurende 30 minuten in de elektrische pot. Filtreer het gekookte havermout SAP in het bekerglas door een stuk van gaas. 150 mL tomatensap e…

Representative Results

De volledige werkstroom voor de techniek is afgebeeld in Figuur 1. De plant infectie testen werden uitgevoerd op 14-dag oude gevoelig rijst zaailingen (O. sativa cv CO-39) of gevoelig 7 dagen oude gerst verlaat (H. vulgare cv Golden beloof)7,8,9. Om te testen voor een infectie op de rijst bladeren, een conidial suspensie (1.0 x 105 sporen…

Discussion

Plant ziekte resistentiegenen spelen een essentiële rol bij het voorkomen van infecties door ziekteverwekkers, met inbegrip van schimmel ziekteverwekkers1,12. Rijst blast is gebruikt als een model te begrijpen van de aard van pathogen bevolking structuren en genen4van de weerstand van de plant. Daarom is het noodzakelijk de ziekte weerstand genotype en avirulentie genotypen van de belangrijkste soorten vezelgewassen op grote schaal om zie…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd gesteund door de speciale wetenschappelijke onderzoeksproject van de Universiteit van Peking landbouw (YQ201603) en het Wetenschappelijk Project van de educatieve Commissie van Peking (KM201610020005).

Materials

 Agar AOBOX Biotechnology(China) 01-023
Filter paper GE Healthcare brand(Sweden)   10311387
50-mL tube CORNING(Amercia) 430290
Centrifuge Eppendorf(Amercia) 5804R
Tween-20 Coolaber(China) CT11551-100ml
Culture dish Thermofisher(Amercia) 150326
0.5-5 mL pipette Eppendorf  4920000105
100-1000uL pipette Eppendorf 4920000083
Vacuum pump Leybold D25B
Dissection needle FST 26000-35
Incubator MEMMERT PYX313
Inoculation ring Greiner Bio One 731175

Referenzen

  1. Li, W. T., et al. A natural allele of a transcription factor in rice confers broad-spectrum blast resistance. Cell. 170 (1), 114-126 (2017).
  2. Chi, M. H., Park, S. Y., Kim, S., Lee, Y. H. A novel pathogenicity gene is required in the rice blast fungus to suppress the basal defenses of the host. PLoS Pathogens. 5 (4), 1000401 (2009).
  3. Jia, Y., Valent, B., Lee, F. N. Determination of host responses to Magnaporthe grisea.on detached rice leaves using a spot inoculation method. Plant Disease. 87 (2), 129-133 (2003).
  4. Ebbole, D. J. Magnaporthe as a model for understanding host-pathogen interactions. Annual Review of Phytopathology. 45, 437-456 (2007).
  5. Hamer, J. E., Talbot, N. J. Infection-related development in the rice blast fungus Magnaporthe grisea. Current Opinion in Microbiology. 1 (6), 693-697 (1998).
  6. Howard, R. J., Valent, B. Breaking and entering: host penetration by the fungal rice blast pathogen Magnaporthe grisea. Annual Review of Microbiology. 50, 491-512 (1996).
  7. Chen, X. L., et al. N-Glycosylation of Effector Proteins by an α-1,3- Mannosyltransferase Is Required for the Rice Blast Fungus to Evade Host Innate Immunity. The Plant Cell. 26 (3), 1360-1376 (2014).
  8. Zhang, Y., et al. M.ARG1, MoARG5,6 and MoARG7 involved in arginine biosynthesis are essential for growth, conidiogenesis, sexual reproduction, and pathogenicity in Magnaporthe oryzae. Microbiological Research. 180, 11-22 (2015).
  9. Du, Y. X., et al. A serine/threonine-protein phosphatase PP2A catalytic subunit is essential for asexual development and plant infection in Magnaporthe oryzae. Current Genetics. 59 (1-2), 33-41 (2013).
  10. Yang, J., et al. A novel protein com1 is required for normal conidium morphology and full virulence in Magnaporthe oryzae. Molecular Plant-Microbe Interactions. 23 (1), 112-123 (2010).
  11. Cao, Z. J., et al. An ash1-like protein MoKMT2H null mutant is delayed for conidium germination and pathogenesis in Magnaporthe oryzae. BioMed Research International. 2016, 1575430 (2016).
  12. Bryan, G. T., et al. A single amino acid difference distinguishes resistant and susceptible alleles of the rice blast resistance gene Pi-ta. The Plant Cell. 12 (11), 2033-2045 (2000).
  13. Zhou, J. M. Plant pathology: a life and death struggle in rice blast disease. Current Biology. 26 (18), 843-845 (2016).
  14. Guo, M., et al. MoGrr1, a novel F-box protein, is involved in conidiogenesis and cell wall integrity and is critical for the full virulence of Magnaporthe oryzae. Applied Microbiology and Biotechnology. 99 (19), 8075-8088 (2015).
  15. Talbot, N. J. On the trail of a cereal killer: Exploring the biology of Magnaporthe grisea. Annual Review of Microbiology. 57, 177-202 (2009).
  16. Wilson, R. A., Talbot, N. J. Under pressure: investigating the biology of plant infection by Magnaporthe oryzae. Nature Reviews Microbiology. 7, 185-195 (2009).
  17. Jia, Y. L., Lee, F. N., McClung, A. Determination of Resistance Spectra of the Pi-ta and Pi-k Genes to U.S. Races of Magnaporthe oryzae Causing Rice Blast in a Recombinant Inbred Line Population. Plant Disease. 93, 639-644 (2009).
  18. Peng, Y. L., Shishiyama, J. Temporal sequence of cytological events in rice leaves infected with Pyricularia oryzae. Canadian Journal of Botany. 66 (4), 730-735 (1988).
check_url/de/57675?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Zhang, M., Sun, X., Cui, L., Yin, Y., Zhao, X., Pan, S., Wang, W. The Plant Infection Test: Spray and Wound-Mediated Inoculation with the Plant Pathogen Magnaporthe Grisea. J. Vis. Exp. (138), e57675, doi:10.3791/57675 (2018).

View Video