Ce protocole est conçu pour fournir des informations pédagogiques pour la propagation clonale de Cannabis sativa L. en mettant en œuvre des systèmes aéroponiques. La méthode décrite ici comprend toutes les fournitures et tous les protocoles nécessaires pour reproduire avec succès les propriétés morphologiques et chimiques souhaitables dans le genre Cannabis.
Ce protocole décrit la normalisation d’une technique de propagation clonale efficace du chanvre en utilisant des systèmes aéroponiques. Les boutures de pousses primaires ont été excisées de deux variétés de chanvre, nommées « Cherry Wine » et « Red Robin » (17-20% p / p CBD), qui servaient de « plante mère ». Un précurseur de l’auxine (acide indole-3-butyrique) a été appliqué pour stimuler le développement des racines dans la partie basale des boutures excisées avant leur placement dans le système. Les boutures ont été légèrement brumisées avec la solution de brouillard nutritif tous les trois jours pour fournir un soutien nutritionnel car la solution contient les macronutriments essentiels, y compris l’azote, le phosphore et le potassium. Le réservoir d’eau du système aéroponique maintenait une plage de pH comprise entre 5,0 et 6,0 et une température de l’eau comprise entre 20 et 22 °C. Une pompe à eau submersible a été utilisée pour fournir de l’eau aux boutures. Les boutures de la pointe des pousses ont été alimentées avec 24 heures de lumière par jour pendant 10 jours jusqu’à ce que le développement des racines se produise, sur lequel les boutures enracinées ont été transplantées à des fins de recherche. Ces systèmes aéroponiques se sont avérés générer des résultats souhaitables pour la propagation du cannabis . La méthode décrite ici allège les contraintes de temps potentielles qui découlent des méthodes traditionnelles pour permettre un moyen plus efficace de propagation asexuée du cannabis.
Cannabis sativa L. est une plante annuelle à fleurs dioïque classée dans la famille des Cannabaceae. Les cannabinoïdes, produits principalement dans les trichomes glandulaires situés sur la couche épidermique externe des tissus bractétiques sur les inflorescences féminines1, deviennent un sujet de recherche de plus en plus populaire, principalement en raison de leurs propriétés médicinales progressivement reconnues. Le cannabidiol (CBD) est le deuxième cannabinoïde le plus important trouvé dans le cannabis après le Δ9-tétrahydrocannabinol (THC) et est attribué à une foule d’avantages médicinaux, y compris les propriétés analgésiques2, les propriétés antiépileptiques3, les propriétés antidépressives4, la réduction du risque de diabète5 et le traitement de divers troubles du sommeil6. En raison de la multitude d’avantages pour la santé associés aux métabolites de la plante de cannabis, il existe une demande croissante pour sa production à l’échelle commerciale7. Pour répondre à cette demande, les méthodes de culture sont constamment améliorées et réinventées pour fournir en permanence du matériel végétal cohérent et de haute qualité à l’industrie émergente du cannabis.
La propagation du cannabis peut être facilitée de deux façons : la reproduction sexuée ou asexuée. Un exemple de reproduction sexuée est la pollinisation d’un ovule femelle avec le pollen de l’étamine d’un mâle, ce qui donne une graine qui peut germer. La germination des graines est une méthode de culture fiable qui a été utilisée à des fins de sélection et de culture où des traits phénotypiques souhaitables sont sélectionnés dans les lignées parentales pour améliorer la qualité de la progéniture Des plantes de cannabis , y compris des caractéristiques telles que la tolérance à la sécheresse, la résistance aux insectes, l’augmentation du rendement et l’augmentation de la puissance8 . Cependant, la pollinisation croisée involontaire est un risque inhérent lors de la reproduction sexuée, provoquant une progéniture indésirable, ce qui entraîne la perte potentielle de traits souhaitables ou l’introduction de traits indésirables. Un exemple de cette pollinisation involontaire est mis en évidence par les producteurs de chanvre recevant des graines de chanvre pollinisées avec du pollen producteur de THC, ce qui entraîne une perte économique importante en raison des plantes non conformes (>0,3% de THC total p / p) 9. De plus, pour générer une culture composée uniquement de femelles, une graine féminisée doit être semée au lieu d’une graine non féminisée, ce qui peut entraîner un hermaphrodisme et d’autres traits indésirables entraînant une perte économique. Pour surmonter la limitation de la reproduction sexuée du cannabis, la reproduction asexuée a été largement pratiquée dans les modèles de production commerciale de l’industrie du cannabis10.
La reproduction asexuée du cannabis ne nécessite qu’une seule plante, ce qui permet la multiplication d’un seul génotype qui permet la production commerciale de plantes portant des caractères agronomiques et pharmaceutiques souhaitables. Une forme courante de reproduction asexuée du cannabis consiste à couper et à insérer de petites portions d’une plante femelle dans un substrat sans sol11 qui est recouvert d’un dôme d’humidité pour induire la formation de racines. Bien que cette méthode se soit avérée efficace, un inconvénient commun est l’accumulation d’un niveau élevé d’humidité (généralement 80% ou plus) à l’intérieur du dôme, offrant un environnement de croissance idéal pour les agents pathogènes fongiques, ce qui peut nuire aux nouvelles boutures sensibles. Une autre forme de propagation asexuée est la micropropagation par culture tissulaire, où des techniques stériles permettent la propagation de matériel végétal de cannabis exempt d’insectes, de microbes et de virus dans un espace limité12. Ce processus, cependant, est coûteux, prend beaucoup de temps et nécessite des techniciens de laboratoire formés qui sont généralement inaccessibles pour les installations de cannabis à grande échelle.
Il existe très peu de rapports de recherche publiés sur la propagation clonale du cannabis. Afin de fournir une base pour la compréhension de la reproduction asexuée du cannabis à des fins de recherche et de production industrielle, cette étude visait à démontrer la facilité et l’accessibilité de l’utilisation de systèmes aéroponiques pour la propagation clonale du cannabis. Les systèmes aéroponiques sont idéaux pour la propagation asexuée du cannabis, fournissant constamment de l’eau riche en nutriments aux boutures, induisant la formation précoce de racines en temps opportun et permettant à une plante d’être maintenue indéfiniment si nécessaire.
Avec la demande croissante de plantes de cannabis avec une teneur constante en cannabinoïdes, diverses méthodes de propagation clonale ont été exploitées dans l’industrie du cannabis . La propagation asexuée montre plusieurs avantages par rapport aux méthodes sexuelles pour une production à grande échelle et cohérente. Un système de propagation aéroponique est une version modifiée d’un système hydroponique qui utilise un brouillard d’eau aéré riche en nutriments pour assurer un dé…
The authors have nothing to disclose.
Cette recherche a été soutenue par l’Institut de recherche sur le cannabis de la Colorado State University-Pueblo et le ministère des Sciences et des TIC (2021-DD-UP-0379), et Chuncheon City (R & D et industrialisation du chanvre, 2020-2021), Les auteurs souhaitent également remercier Justin Henderson à Summit CBD pour le don généreux pour les graines de « Cherry Wine ».
1-part Fox Farm | Fox Farm | Soil Mix | |
1-part Promix | Promix | Soil Mix | |
1-part Roots Organic Original | Auora Innovations | Soil Mix | |
1-part Wiggle Worm Earth Worm Castings | UNCO Industries | Soil Mix | |
Algae and Bacterial Cleaning Solution (Clear Rez) | EZ Clone | SKU#: 225 | 8 fl. Oz. |
Artificial Lighting | AgroBrite | SKU#: 1399 | T5 324W 4' 6-Tube Fixture with Lamps |
Cannabis Mother plant 1 (Cherry Wine) | Summit CBD | N/A | Donated material |
Cannabis Mother Plant 2 (Red Wine) | Trilogene | SKU: 0101RR | |
Corresponding Plastic Lid | Office Depot | N/A | 38.1 cm x 25.4 cm |
Drill Bit 1 | Dewalt | DW1586 | 38.1 mm spade drill bit |
Drill Bit 2 | Dewalt | DW1308 | 3.175 mm drill bit |
Flora/Bloom (Nutrient Solution)-5 mL | General Hydroponics | SKU#: 726 | 946 mL (1 Quart) 2.43 lbs. (1.1 kg) (Available Phosphate 5.0%, Soluble Potash 4.0%, Magnesium 1.5%, Sulfur 1.0%) |
FloraGrow (Nutrient Solution)- 5 mL | General Hydroponics | SKU#: 724 | 946 mL (1 Quart) 2.43 lbs. (1.1 kg) ((Total Nitrogen 2.0% (0.25% Ammoniacal Nitrogen, 1.75% Nitrate Nitrogen), Available Phosphate 1.0%, Soluble Potash 6.0%, Magnesium 0.5%)) |
FloraMicro (Nutrient Solution)- 5 mL | General Hydroponics | SKU#: 759 | 946 mL (1 Quart) 2.43 lbs. (1.1 kg) ((Total Nitrogen 5.0% (0.3% Ammoniacal Nitrogen, 4.7% Nitrate Nitrogen), Soluble Potash 1.0%, Calcium 5.0%, Boron 0.01%, Cobalt 0.0005%, Copper 0.01%, Iron 0.1%, Manganese 0.05%, Molybdenum 0.0008%, Zinc 0.015%)) |
Horticultural Scissors | Shear Perfection | SKU#: 12620 | Platinum Stainless Steel Bonsai Scissors (2.4") |
Isopropyl Alcohol | Equate | Walmart # 574133562 | 70% concentration |
Nutrient Mist Solution (Clonex Mist) | Growth Technology | SKU#: 4889 | 10.14 fl. Oz (300 ml) (Total Nitrogen: 5.9 × 10-4 %, Available Phosphate: 4.0 × 10-4 %, Soluble Potash: 5.0 × 10-4 %) |
pH Down | General Hydroponics | SKU#: 733 | 946 ml (1 Quart) 2.43 lbs. (1.1 kg) |
pH Up | General Hydroponics | SKU#: 730 | 946 ml (1 Quart) 2.43 lbs. (1.1 kg) |
Plastic Container | Office Depot | N/A | 38.1 cm x 25.4 cm x 30.48 cm |
Power Drill | Dewalt | DCD709B | 20-Volt Max ½” Drill |
Rockwool Cubes | Grodan | SKU#: 830 | 38.1 mm |
Rooting Solution (Clonex Rooting Gel) | Growth Technology | SKU#: 939 | 3.4 fl. Oz. (100 ml) (Indolebutyric Acid – 0.31%) |
Statistic Software (Prism) | GraphPad Inc. | ||
Submersible Water Pump | ActiveAQUA | SKU: AAPW250 | Model: AAPW250, Voltage 120V, Power 16W |