Phormidium lacuna 는 해양 암석에서 분리 된 필라멘트 성 시아 노 박테리움입니다. 이 기사에서는 천연 공급원으로부터의 필라멘트의 분리, DNA 추출, 게놈 시퀀싱, 자연 변형, sfGFP의 발현, 냉동 보존 및 운동성 방법에 대해 설명합니다.
시아 노 박테리아는 태양 에너지가 바이오 매스 생산에 사용되는 기본 연구 및 생명 공학 프로젝트의 초점입니다. Phormidium lacuna는 새로 분리 된 필라멘트 성 시아 노박테리움입니다. 이 논문은 새로운 필라멘트 시아 노 박테리아가 해양 암석에서 어떻게 분리 될 수 있는지 설명합니다. 또한 필라멘트에서 DNA를 추출하는 방법과 게놈을 시퀀싱하는 방법을 설명합니다. 많은 단세포 종에 대해 형질전환이 확립되지만, 필라멘트성 시아노박테리아에 대해서는 덜 빈번하게 보고된다. P. lacuna의 자연 변형을위한 단순화 된 방법이 여기에 설명되어 있습니다. P. lacuna는 자연 변형이 확립 된 Oscillatoriales 주문의 유일한 구성원입니다. 이 논문은 또한 자연 변형이 수퍼 폴더 녹색 형광 단백질 (sfGFP)을 발현하는 데 어떻게 사용되는지를 보여줍니다. 내인성 cpcB 프로모터는 Synechocystis sp. PCC6803으로부터의 cpc560, A2813, 또는 psbA2 프로모터보다 약 5배 더 강한 발현을 유도하였다. 또한, P. lacuna 및 Synechocystis sp.CPP 6803의 동결보존을 위한 방법이 확립되었고, 액체 매질 및 한천 및 플라스틱 표면에서의 운동성을 평가하는 방법이 기재되어 있다.
시아노박테리아는 광합성을 에너지원으로 활용하는 원핵생물이다1,2. 연구는 시아 노 박테리아 종에 점점 더 초점을 맞추고 있습니다. 몇몇 시아노박테리아는 DNA3으로 형질전환될 수 있다. 유전자는 이들 종에서 녹아웃되거나 과발현될 수 있다. 그러나, 형질전환은몇몇 종 4,5,6,7,8,9,10,11 로 제한되며, 배양 수집 또는 야생 8로부터의 균주에서 형질전환을 확립하는 것은 어려울 수 있다. 필라멘트 종 Phormidium lacuna (그림 1)의 균주는 염 농도 또는 온도와 같은 환경 조건이 시간이 지남에 따라 변동하는 해양 암석 풀에서 분리되었습니다. 이 필라멘트 시아 노 박테리아는 그들이 속한 Oscillatoriales12 순서에 대한 모델 유기체로 사용될 수 있습니다.
전기천공에 의한 유전자 전달을 시험하는 시험 동안 13,14는 P. lacuna가 자연 형질전환(15)에 의해 형질전환될 수 있다는 것을 발견하였다. 이 과정에서 DNA는 일부 세포에 의해 자연적으로 흡수됩니다. 변환16,17의 다른 방법과 비교할 때, 자연 변환은 절차를 복잡하게 만들 수있는 추가 도구가 필요하지 않다는 장점이 있습니다. 예를 들어, 전기 천공에는 적절한 큐벳, 손상되지 않은 와이어 및 적절한 전압의 선택이 필요합니다. P. lacuna는 현재 자연 변형에 취약한 유일한 Oscillatoriales 회원입니다. 원래 프로토콜은 전기 천공 프로토콜을 기반으로하기 때문에 여전히 불필요 할 수있는 몇 가지 세척 단계가 포함되어 있습니다. 프로토콜을 단순화하기 위해 다양한 접근 방식을 테스트하여 여기에 제시된 변환 프로토콜로 이어졌습니다.
게놈 서열은 유전자 녹아웃 또는 과발현에 기초한 추가 분자 연구에 필수적이다. 게놈 서열은 단기간 내에 차세대 시퀀싱 기계로 얻을 수 있지만, DNA의 추출은 어려울 수 있으며 종에 따라 다릅니다. P. lacuna를 사용하면 몇 가지 프로토콜이 테스트되었습니다. 그런 다음 변형된 세틸트리메틸암모늄 브로마이드(CTAB) 기반 방법이 확립되어 실험실에서 계속 작업하기 위해 각 정제주기의 DNA 순도 및 DNA 수율을 수용할 수 있게 되었습니다. 다섯 균주의 게놈은 이 프로토콜로 시퀀싱될 수 있었다. 다음 논리적 형질전환 단계는 P. lacuna에서 단백질 발현을 확립하는 것이었다.
이 프로토콜에서 마커 단백질로서 사용된 sfGFP는 임의의 형광 현미경으로 검출될 수 있다. 시험된 모든 프로모터는 P. lacuna sfGFP 발현을 위해 사용될 수 있었다. 형질전환으로부터 발생하는 균주의 수가 증가함에 따라 배양물을 저장하는 방법이 필요하게 되었다. 이러한 방법은 에스케리치아 콜라이 및 다른 많은 박테리아(18)에 대해 확립된다. 표준 프로토콜에서, 글리세롤 배양물을 제조하고, 액체 질소로 옮기고, -80°C에서 저장한다. 이 방법은 몇 단계 만 거치면 되며 확립 된 종에 대해 매우 신뢰할 수 있습니다. P. lacuna에 대한 표준 프로토콜은 살아있는 세포가 모든 경우에 회복 될 수 없었기 때문에 실현 가능하지 않았습니다. 그러나 해동 후 글리세롤을 제거했을 때 모든 시험의 세포는 생존했습니다. P. lacuna의 운동성 분석을 위해 간단한 방법이 제시되며, 이는 IV 형 필리 또는 광수용체의 역할을 조사하기 위해 녹아웃 돌연변이 유발과 결합 될 수 있습니다. 이들 검정은 단세포 시아노박테리아19,20,21의 분석과 다르며 또한 다른 오실라토리아에 유용할 수 있다.
시아노박테리아의 많은 균주가 배양 컬렉션32,33,34,35,36으로부터 이용가능하지만, 이들 종들이 특정 특성에 적응하기 때문에 야생으로부터 새로운 시아노박테리아에 대한 요구가 여전히 존재한다. P. lacuna는 암석 풀에서 수집되었으며 소금 농도 및 온도30…
The authors have nothing to disclose.
이 작업은 Karlsruher Institute of Technology의 지원을 받았습니다.
Autoclave 3870 ELV | Tuttnauer | 3870 ELV | |
Bacto Agar | OttoNorwald | 214010 | |
BG-11 Freshwater Solution | Sigma Aldrich | C3061 | |
BG-11 medium | Merck | 73816-250ML | |
Boric acid | Merck | 10043-35-3 | H3BO3 |
Calcium chloride dihydrate | Carl Roth | 10035-04-8 | CaCl2 · 2 H2O |
Cell culture flasks Cellstar with filter screw cap, sterile, 250 mL | Greiner | 658190 | |
Cell culture flasks Cellstar with filter screw cap, sterile, 50 mL | Greiner | 601975 | |
Centrifuge LYNX 4000 | Thermo Scientific | 75006580 | and rotor |
Centrifuge microstar 17 | VWR International | N/A | for up to 13,000 rpm |
Cetyltrimethylammonium Bromide (CTAB) | PanReac AppliChem | 57-09-0 | C19H42BrN |
Chloroform : Isoamyl Alcohol 24 : 1 | PanReac AppliChem | A1935 |
|
Cobalt(II) chloride hexahydrate | Merck | 7791-13-1 | CoCl2 · 6 H2O |
Copper(II) sulphate pentahydrate | Merck | 7758-99-8 | CuSO4 · 5 H2O |
D(+)-Biotin | Carl Roth | 58-85-5 | C10H16N2O3S |
DNA ladder 1 kb | New England Biolabs | N3232 | |
DNA ladder 100 bp | New England Biolabs | N3231 | |
Electrical pipetting help accujet-pro S | Brand GmbH | 26360 | for pipetting 1-25 mL |
Ethanol | VWR | 64-17-5 | C2H6O |
Ethylenediamine tetraacetic acid disodium salt dihydrate | Carl Roth | 6381-92-6 | EDTA-Na2 · 2 H2O |
Fluorescence microscope ApoTome | Zeiss | ||
Fluorescence microscope Axio Imager 2 | Zeiss | ||
French Pressure Cell Press | American Instrument Company | N/A | |
Gel documation System Saffe Image | Invitrogen | ||
Gelelctrophoresis system Mupid-One/-exu | ADVANCED | ||
Glassware, different | |||
Glycerol | Carl Roth | 56-81-5 | C3H8O3 |
Iron(III) chloride hexahydrate | Merck | 10025-77-1 | FeCl3 · 6 H2O |
Kanamycin | Sigma-Aldrich | 25389-94-0 | |
Kanamycin sulphate | Carl Roth | 25389-94-0 | C18H36N4O11 · H2SO4 |
Lauroylsarcosine, Sodium Salt (Sarcosyl) | Sigma Aldrich | 137-16-6 | C15H28NO3 · Na |
LB Broth (Lennox) | Carl Roth | X964.4 | |
Light source, fluorescent tube L18W/954 daylight | OSRAM | cultivation of cyanobacteria | |
Light source, LED panel XL 6500K 140 W | Bloom Star | N/A | cultivation of cyanobacteria, up to 1,000 µmol m-2 s-1 |
Magnesium chloride hexahydrate | Carl Roth | 7791-18-6 | MgCl2 · 6 H2O |
Manganese(II) chloride tetrahydrate | Serva | 13446-34-9 | MnCl2 · 4 H2O |
Microscope DM750 | Zeiss | ||
Midi prep plasmid extraction kit NucleoBond Xtra Midi kit | Macherey-NAGEL GmbH & Co. KG | REF740410.50 | |
Minicomputer Raspberry Pi 4 + | Conrad Electronics | 2138863-YD | for time-lapse recording |
Ocular camera EC3 | Leica | for continuous recording up to 30 s | |
Ocular camera MikrOkular Full HD | Bresser | for time-lapse recordings, coupled to Raspberry Pi minicomputer | |
Petri dishes polystyrole, 100 mm x 20 mm | Merck | P5606-400EA | |
Petri dishes polystyrole, 60 mm x 15 mm | Merck | P5481-500EA | |
Photometer Nanodrop ND-1000 | Peqlab Biotechnologie | ||
Photometer Uvikon XS | Goebel Instrumentelle Analytik GmbH | ||
Pipetman 100-1,000 µL | Gilson | SKU: FA10006M | |
Pipetman 10-100 µL | Gilson | SKU: FA10004M | |
Plastic pipettes 10 mL, sterile | Greiner | 607107 | |
Plastic tube, sterile, 15 mL | Greiner | 188271 | |
Plastic tube, sterile, 50 mL | Greiner | 227261 | |
Potassium bromide | Carl Roth | 7758-02-3 | KBr |
Potassium chloride | Carl Roth | 7447-40-7 | KCl |
Power supply Statron 3252-1 | Statron Gerätetechnik GmbH | ||
Power supply Voltcraft PPS 16005 | Conrad Electronics | for LED | |
Proteinase K | Promega | MC500C | from Maxwell 16 miRNA Tissue Kit AS1470 |
Q5 polymerase | New England Biolabs | M0491S | |
Sequencing kit NextSeq 500/550 v2.5 | Illumina | ||
Sequencing system NextSeq 550 SY-415-1002 | Illumina | ||
Shaker Unimax 2010 | Heidolph Instruments | for cultivation | |
Sodium acetate | Carl Roth | 127-09-3 | NaCH3COO |
Sodium chloride | Carl Roth | 7647-14-5 | NaCl |
Sodium dihydrogen phosphate monohydrate | Carl Roth | 10049-21-5 | NaH2PO4 · H2O |
Sodium fluoride | Carl Roth | 7681-49-4 | NaF |
Sodium hydrogen carbonate | Carl Roth | 144-55-8 | NaHCO3 |
Sodium molybdate dihydrate | Serva | 10102-40-6 | Na2MoO4 · 2 H2O |
Sodium nitrate | Merck | 7631-99-4 | NaNO3 |
Sodium sulphate | Carl Roth | 7757-82-6 | Na2SO4 |
Strontium chloride hexahydrate | Carl Roth | 10025-70-4 | SrCl2 · 6 H2O |
Thiamine hydrochloride | Merck | 67-03-8 | C12H17ClN4OS · HCl |
TRIS | Carl Roth | 77-86-1 | C4H11NO3 |
Ultrasonic device UP100H with sonotrode MS3 | Hielscher Ultrasound Technology | UP100H | |
Ultraturrax Silent Crusher M | Heidolph Instruments | homogenizer | |
Urea | Carl Roth | 57-13-6 | CH4N2O |
Vitamin B12 | Sigma | 68-19-9 | C63H88CoN14O14P |
Vitamin solution | 0.3 µM thiamin-HCl, 2.1 nM biotin, 0.37 nM cyanocobalamin | ||
Water Stills, Water treatment | VEOLIA water technologies | ELGA_21001 | |
Zinc sulphate heptahydrate | Sigma | 7446-20-0 | ZnSO4 · 7 H2O |
software, URL | |||
gatb-minia program for DNA assembly | https://github.com/GATB/gatb-minia-pipeline | makes large scaffolds from short DNA reads, Linux based | |
ImageJ | software for immage processing (pixel intensities, circle diameter) | ||
RAST annotation server | https://rast.nmpdr.org | input: genome DNA sequence, detects open reading frames, lists protein sequences and their functions | |
Culture media | |||
Artificial seawater | 0.41 M NaCl , 53 mM MgCl2,28 mM Na2SO4, 10 mM CaCl2 , 9 mM KCl , 2.4 mM NaHCO3 ,0.84 mM KBr, 0.49 mM H3BO3, 90 µM SrCl2, 72 µM NaF | ||
f/2 -liquid medium | artificial seawater, 0.1 % (v/v) trace element solution, 0.05 % (v/v) vitamin solution, 0.88 mM NaNO3, 36 µM NaH2PO4 | ||
f/2+ liquid medium | f/2-medium, with 10 times increased NaNO3 and NaH2PO4 (0.88 mM NaNO3, 36 µM NaH2PO4 | ||
f/2+-agar | 3 % (w/v) bacto agar, artificial seawater, 0.1 % (v/v) trace element solution, 0.05 % (v/v) vitamin solution ,8.8 mM NaNO3, 0.36 mM NaH2PO4 | ||
f/2-agar | 3 % (w/v) bacto agar, artificial seawater, 0.1 % (v/v) trace element solution, 0.05 % (v/v) vitamin solution ,0.88 mM NaNO3, 36 µM NaH2PO4 | ||
Trace element solution | 0.36 mM NaH2PO4, 12 µM Na2EDTA, 39 nM CuSO4, 26 nM Na2MoO4 , 77 nM ZnSO4, 42 nM CoCl2, 0.91 µM MnCl2 | ||
Vitamin solution | 0.3 µM thiamin-HCl, 2.1 nM biotin, 0.37 nM cyanocobalamin |