Summary

אפיון של אירועים קלציפיקציה שימוש אופטי חיה מיקרוסקופית אלקטרונים טכניקות בתוך ימית תולעת-שפופרת

Published: February 28, 2017
doi:

Summary

We demonstrate the use of various microscopy methods that are useful in observing the calcification of a tubeworm, Hydroides elegans, as well as locating and characterizing the first calcified material. Live microscopy and electron microscopy are used together to provide functional and material information that are important in studying biomineralization.

Abstract

Characterizing the first event of biological production of calcium carbonate requires a combination of microscopy approaches. First, intracellular pH distribution and calcium ions can be observed using live microscopy over time. This allows identification of the life stage and the tissue with the feature of interest for further electron microscopy studies. Life stage and tissues of interest are typically higher in pH and Ca signals.

Here, using H. elegans, we present a protocol to characterize the presence of calcium carbonate structures in a biological specimen on the scanning electron microscope (SEM), using energy-dispersive X-ray spectroscopy (EDS) to visualize elemental composition, using electron backscatter diffraction (EBSD) to determine the presence of crystalline structures, and using transmission electron microscopy (TEM) to analyze the composition and structure of the material. In this protocol, a focused ion beam (FIB) is used to isolate samples with dimension suitable for TEM analysis. As FIB is a site specific technique, we demonstrate how information from the previous techniques can be used to identify the region of interest, where Ca signals are highest.

Introduction

Biomineralization היא סדרה מורכבת של אירועים, אשר מגשרת חבילה של פעילות הסלולר וכתוצאה מכך הייצור של מינרלי הורה להפליא 1. האתגר הוא לאפיין הן את תהליך הסלולר הדינמי ואת המבנים מינרליים מתוחכמים באמצעות שילוב של שיטות מיקרוסקופיה אופטית האלקטרון. של העלאת ה- pH התוך-תאי מעדיף את היווצרות גבישים 3 קאקו, ומכאן, זיהוי שלב בחיים כי יש pH גדל מגלה בזמן הסתיידות עשוי להיות התרחשות 2, 3.

תולעי השפופרת ממשפחת Serpulidae הם calcifiers נפוץ בים 4. זהו גם מודל חסר חוליות פופולרי עבור מחקר ימי, במיוחד biofouling 5, 6. במחקר זה, התהליך של הסתיידות בתאי mineralizing דורותbiomineralization ng הוא ציין. התהליך המהיר של מטמורפוזה כולל את הופעתה של מבני סידן פחם 7, 8.

אנו מדגימים כיצד מדידות pH הפנימיות יכול להתבצע על תולעת-שפופרת, וכיצד שלבי חיים ורקמות רלוונטיות הסתיידות יכולים להיות מוקרנים. לאחר השלב של עניין החיים מזוהה, הרקמה האחראית הסתיידות ניתן לאפיין ברזולוציה גבוהה באמצעות שיטות מיקרוסקופיה אלקטרוניות. באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי, אנו קובעים את הזמן הדרוש סידן פחמתי להופיע לאחר אינדוקציה מותמרים. בשלב דומה של חיים לאחר מכן דמיין עם SEM-EDS להפצת רכב יסודות, ואת המינרלים שהופקדו נותחו באמצעות שתי שיטות מיקרוסקופיה אלקטרונית שונות, במיוחד SEM-EBSD ו FIB-TEM.

Protocol

הקרנת 1. לחי שלב רקמות עניין עם הדמיה חיה תרבות הזחלים הימיים כדי כשירות על פי שיטות שדווחו בעבר 6, 7, 9. דגירת הזחלים תולעת-שפופרת ב 5 זחלים לכל צפיפות מיליליטר עם מי ים מ…

Representative Results

להלן כמה תצפיות של תהליך הסתיידות במהלך המטמורפוזה של תולעת-שפופרת. איור 1 מראה כי ערכי ה- pH ליד אזור צווארון גבוה ברקמות אחרות לאחר מטמורפוזה. 2i האיור מראה תולעת-שפופרת עם חלוקה הומוגנית של Ca, דבר מצביע נקבעה אירועי הסתיידות גדולים…

Discussion

דימות אופטי Live הוא שיטה יעילה עבור התבוננות אירועים הסלולר ב אורגניזם רב-תאי. הנה, יון pH וסידן פנימי אינדיקטורים שימשו למדידת השטף של יונים באתרי מינרליזציה. באזורים אלה, יון שאיבה פעילה נדרשה להעלות pH ו Ca 2 + ריכוז לאפשר הסתיידות 2, 3.</…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors would like to send a big thank you to Clemson Broadcast Productions, audio recording by J. Bright, Narration by A. D. McQuiston, Audio sweetening, K. Murphy, videography by G. Spake, Graphic arts by T. Messervy, Video editing by T. Messervy and E. Rodgers. Technical assistance and scientific advice was inspired by the advice of S. Kawada, S. Kubo, J. Hudson, T. Darroudi, D. Mulwee, H. Qian, Y. W. Lam, M. B. Johnstone, C. Campanati, A. C. Lane, and R. Dineshram. This study was funded by three GRF grants from the HKSAR-RGC (Grant Numbers: 705511P, 705112P, and 17304914).

Materials

Hexamethyldisilazane  Electron Microscopy Sciences 16700(EM)
Osmium Tetroxide 2% Aqueous Solution Electron Microscopy Sciences 19192
IBMX 3-Isobutyl-1-methylxanthine ThermoFisher Scientific PHZ1124
Nigericin, Free Acid ThermoFisher Scientific N7143-5MG
35-mm-diam dish, hole size 27 mm, Glass No.0, Non-coat ThermoFisher Scientific D110400
5-(and-6)-Carboxy SNARF-1, Acetoxymethyl Ester, Acetate ThermoFisher Scientific C-1271
BDH Potassium Chloride, ACS Grade VWR BDH0258-500G
Paraformaldehyde
reagent grade, crystalline
Sigma P6148
1 M Hydrochloric Acid for Volumetric Analysis Wako Pure Chemical Industries, Ltd 083-01095
0.05 M Sodium Hydroxide Solution for Volumetric Analysis Wako Pure Chemical Industries, Ltd 199-02185
Calcein Sigma C0875
FASW Iwaki Co. Ltd. Rei-sea Marine
Mixed Cellulose Ester Membranes; 47 mm dia, 0.45 µm ADVANTEC A045A047A
ethanol Wako Pure Chemical Industries, Ltd 051-00476
Artificial seawater for buffers by SOP06 of DOE (1994), cdiac.ornl.gov/ftp/cdiac74/sop06.pdf
Sodium Chloride Wako Pure Chemical Industries, Ltd 191-01665
Potassium Chloride Wako Pure Chemical Industries, Ltd 163-03545
Magnesium Chloride Hexahydrate Wako Pure Chemical Industries, Ltd 135-00165
Calcium Chloride Wako Pure Chemical Industries, Ltd 039-00475
Sodium Sulfate Wako Pure Chemical Industries, Ltd 197-03345
Hydrochloric Acid Wako Pure Chemical Industries, Ltd 089-08415
2-amino-2-hydroxymethyl-1,3-propanediol (tris) Wako Pure Chemical Industries, Ltd 207-06275
2-aminopyridine Wako Pure Chemical Industries, Ltd 011-02775
Orion 5-star Plus pH meter Thermo Scientific
PrpHecT ROSS Micro Combination pH Electrode 8220BNWP Thermo Scientific
Axiovision, Version 4.6, Axio Observer Z1 Zeiss
ImageJ NIH, Bethesda, MD, USA
HRTEM H500 Hitachi
SU6600 VPSEM Hitachi
NB5000 Focused Ion and Electron Beam (FIB-SEM) system Hitachi 

Referencias

  1. Aizenberg, J., et al. Skeleton of Euplectella sp.: structural hierarchy from the nanoscale to the macroscale. Science. 309 (5732), 275-278 (2005).
  2. de Nooijer, L. J., Toyofuku, T., Oguri, K., Nomaki, H., Kitazato, H. Intracellular pH distribution in foraminifera determined by the fluorescent probe HPTS. Limnol Oceanogr Methods. 6 (11), 610-618 (2008).
  3. de Nooijer, L. J., Langer, G., Nehrke, G., Bijma, J. Physiological controls on seawater uptake and calcification in the benthic foraminifer Ammonia tepida. Biogeosciences. 6 (11), 2669-2675 (2009).
  4. Smith, A. M., Riedi, M. A., Winter, D. J. Temperate reefs in a changing ocean: skeletal carbonate mineralogy of serpulids. Mar Biol. 160 (9), 1-14 (2013).
  5. Carpizo-Ituarte, E., Hadfield, M. Stimulation of metamorphosis in the polychaete Hydroides elegans Haswell (Serpulidae). Biol. Bull. 194 (1), 14 (1998).
  6. Bryan, P. J., Kreider, J. L., Qian, P. Y. Settlement of the serpulid polychaete Hydroides elegans (Haswell) on the arborescent bryozoan Bugula neritina (L.): evidence of a chemically mediated relationship. J Exp Mar Biol Ecol. 220, 171-190 (1998).
  7. Chan, V. B. S., et al. Evidence of compositional and ultrastructural shifts during the development of calcareous tubes in the biofouling tubeworm, Hydroides elegans. J. Struct. Biol. 189 (3), 230-237 (2015).
  8. Dickson, A. G., Goyet, C. . Handbook of methods for the analysis of the various parameters of the carbon dioxide system in sea water. Version 2. , (1994).
  9. Chan, V. B. S., et al. Direct deposition of crystalline aragonite in the controlled biomineralization of the calcareous tubeworm. Front Mar Sci. 2, 97 (2015).
  10. Bond, J., Varley, J. Use of flow cytometry and SNARF to calibrate and measure intracellular pH in NS0 cells. Cytometry A. 64, 43-50 (2005).
  11. Lloyd, G. E. Atomic number and crystallographic contrast images with the SEM: a review of backscattered electron techniques. Mineral Mag. 51, 3-19 (1987).
  12. Perez-Huerta, A., Dauphin, Y., Cuif, J. P., Cusack, M. High resolution electron backscatter diffraction (EBSD) data from calcite biominerals in recent gastropod shells. Micron. 42 (3), 246-251 (2011).
  13. Bandli, B. R., Gunter, M. E. Electron backscatter diffraction from unpolished particulate specimens: examples of particle identification and application to inhalable mineral particulate identification. Am. Mineral. 97, 1269-1273 (2012).
  14. Hayat, M. A. . Principles and techniques of electron microscopy: biological applications. , (2000).
  15. Wirth, R. Focused Ion Beam (FIB) combined with SEM and TEM: Advanced analytical tools for studies of chemical composition, microstructure and crystal structure in geomaterials on a nanometre scale. Chem Geo. 261, 217-229 (2009).
  16. Volkert, C. A., Minor, A. M. Focused ion beam microscopy and micromachining. MRS Bull. 32, 389-399 (2007).
  17. Kudo, M., et al. Microtexture of larval shell of oyster, Crassostrea nippona: A FIB-TEM study. J. Struct. Biol. 169 (1), 1-5 (2009).

Play Video

Citar este artículo
Chan, V. B. S., Toyofuku, T., Wetzel, G., Saraf, L., Thiyagarajan, V., Mount, A. S. Characterization of Calcification Events Using Live Optical and Electron Microscopy Techniques in a Marine Tubeworm. J. Vis. Exp. (120), e55164, doi:10.3791/55164 (2017).

View Video