Summary

저항 동맥의 세포 문화 모델

Published: September 08, 2017
doi:

Summary

저항 동맥의 세포 문화 모델, 신호 경로 내 피, 평활 근, 또는 피와 부드러운 근육 (myoendothelial 교차점) 사이 해 부에 대 한 수 있도록 설명 되어 있습니다. 이 셀 문화 모델을 사용 하 여 면역 형광 검사, 전자 현미경, 또는 단백질 격리, 촉진제의 선택적 응용 프로그램을 활용할 수 있습니다.

Abstract

Myoendothelial 접합 (MEJ), 작은 직경 저항 동맥에 독특한 신호 microdomain 특정 단백질과 혈관 음색 및 혈압을 제어할 수 있는 신호 프로세스의 지역화를 전시 한다. 그것에서 프로젝션 내 피 또는 부드러운 근육 세포와 그것의 작은 때문에 MEJ (평균에, ~ 1 µ m2의 영역), 크기 격리에서 공부 하기 어렵습니다. 그러나, 우리는 MEJ 대형 생체 외에서 내 피 세포의 양극 화, 그리고 신호 단백질 및 프로세스의 저항 혈관 벽에의 해 부에 대 한 있도록 혈관 세포 공동 문화 (VCCC) 라는 세포 문화 모델 개발 동맥입니다. VCCC 다양 한 응용 프로그램 있으며 서로 다른 세포 유형에 맞게 적용할 수 있습니다. 0.4 µ m 모 공에는 생체 외에서 MEJs를 형성할 수 있습니다와 필터의 반대 측에 2 개의 세포 유형 모델에 의하여 이루어져 있다. 여기 우리가 설명 셀의 도금 및 절연의 내 피, 통해 VCCC 만드는 방법을 MEJ, 및 단백질 격리 또는 활동에 사용할 수 있습니다 부드러운 근육 분수 분석 실험. 포함 된, 그리고 immunofluorescent 분석 sectioned에 그대로 셀 레이어 필터를 해결할 수 있습니다. 중요 한 것은,이 모델에서 발견의 많은 생리 적인 관련성을 강조 하는 그대로 저항 동맥을 사용 하 여 확인 되었습니다.

Introduction

작은 직경 저항 동맥, 얇은 내부 탄력 있는 lamina (IEL) 내 피 (EC)와 평활 근 세포 (SMC)를 분리합니다. 셀이 탄성 매트릭스에 구멍을 통해 프로젝트 하 고 갭 정션 채널1,2를 통해 직접 세포질 연결을 만들 수 있습니다. 이 독특한 구조는 myoendothelial 접합 (MEJ) 이라고 불린다. MEJ 작은 (약 0.5 µ m 혈관 침대에 따라 0.5 µ m x), 셀룰러 투영 하지만 내 피 세포의 주로 구성3,4뿐만 아니라 부드러운 근육에서 발생 한 수 있습니다. 수 사관의 수 신호 그것은 피와 부드러운 근육5 사이의 양방향 신호 촉진을 위한 특히 중요 한 위치를 렌더링 MEJ에 선택적으로 발생 하는 네트워크의 엄청난 복잡성을 증명 하고있다 ,6,,78,,910.

그러나,는 MEJ에 신호 통로의 기계 해 부 그대로 동맥에서 어렵습니다. MEJ 셀룰러 프로젝션 때문에 그것 불가능 현재는 비보에 MEJ 혈관 벽에서 분리 합니다. 이러한 이유로 VCCC 모델1 개발 되었다. VCCC 생리 내 피 형태11 와 양극 화는 꼭대기 사이 신호를 복제 하는 중요 한 것은, 셀12MEJ 부분. 그것을 발견 알파 헤모글로빈에에서 있는 내 피 세포는 MEJ에 편광이 독특한 모델 이었습니다. 이것은 알파 헤모글로빈13를 표현 하지 않는 전통적으로 교양된 내 피 세포와 달리 이다. Microvascular 내 피에 관심이 연구원에 대 한 더 작은 직경 저항 동맥에서 발생 하는 신호 경로 해 부 하는 것입니다 의도 하는 경우에 특히 VCCC에서 경작 된 내 피 세포를 사용 하 여 적절 한 수 있습니다.

공동 문화 2 가지 종류를 튼튼한 플라스틱 삽입을 포함 하는 직경이 작은 숨 구멍 (직경에서 0.4 µ m)와 필터를 사용 하 여 계층 간의 마이그레이션에서 세포를 방지 합니다. 그것은 크게 비보, 보다 긴 하지만 여전히 많은 MEJs, 단백질 지 방화, 두 번째 메신저1 신호 등의 비보에 특성의 복제 세포 사이의 10 µ m 거리에서 결과 , 14. 또한는 VCCC 셀 주 작동 근 또는 특정 세포 구획에 적의 추가 통해 신호 유형 특정의 대상에 대 한 수. 예를 들어 BAPTA-킬레이트 칼슘, 오전으로 EC를 로드 하 고 phenylephrine14SMC를 자극. 이 제공 하는 공동 문화 모델15,,1617,18,19,20,21의 다른 설명, 달리 지침에 mRNA와 단백질, 필터 모 공 내의 별개 MEJ 분수를 포함 하 여 독특한 분수를 분리. VCCC에이 기술 추가 mRNA 현지화 또는 전사22,23, 단백질의 인 산화12,및 단백질 활동12변화의 특정 조사 수 있습니다. 이 기사 다른 conformations11,,1824두 세포 유형 문화 수도 있지만 아래에 필터와 SMC EC의 도금 설명 합니다.

Protocol

1. 도금 셀은 VCCC 문화 큰 225 cm 2 플라스 크 EC 및 SMC의 70-90% 합칠 때까지 37 ° C에서 살 균 조건 하에서. SMC 보다 더 많은 EC는 사용; 기본 인간 EC 및 SMC, SMC의 1 큰 플라스 크를 EC의 일반적으로 3 큰 플라스 크를 사용 하 여 경우. 낮은 구절에서 1 차 셀을 사용 하 고 통로 10 과거 사용 하지 마십시오. 문화 미디어 기반 공동 경작 될 셀을 선택 하십시오. 기본 인간 관상 …

Representative Results

필터 삽입 사용 VCCC는 있다 작은, 0.4 µ m 구멍. 그림 1A, VCCC 필터 삽입의 en 얼굴 보기는 MEJ 생체 외에서형성할 수 있다 숨 구멍을 보여줍니다. 회로도 1 일 내 피 세포는 반대 측 (그림 1B)에 도금 하기 전에 필터의 더 낮은 측에 도금 하는 평활 근 세포를 묘사 한다. 일단 세포는 도금 EC, MEJ, 및 SMC 분수 3 일 후에 격리 ?…

Discussion

VCCC는 다양 한 MEJs에서 생체 외에서업과 측면에서 이점 하지만 토론의 경우는 VCCC 특정 응용 프로그램에 대 한 이용 될 수 있다 결정할 때. 예를 들어 다른 세포 유형이이 모델 사용할 수 있다면, 그것은 최적화가 필요 합니다. 우리는 기본 인간 세포 사용 하지만 소 aortas24또는 wildtype 또는 녹아웃 쥐에서 세포를 분리 하 여 사용 VCCC1,5<…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 작품은 국가 심 혼에 의해 지원 되었다, 폐 및 혈액 학회 R01088554, T32HL007284 및 미국 심 혼 협회 predoctoral 친목 14PRE20420024 부여 합니다. 우리는 특히 세인트 주드 세포 이미징 공유 연구 핵심, 랜달 웨이크필드와 전자 현미경 이미지에 대 한 린다 Horner, 아담 스트로브를 통해 대표적인 면역 형광 이미지, 및 그녀에 대 한 Pooneh Bagher를 포함 하 여 감사 합니다. 원고 프로토콜에 귀중 한 피드백입니다.

Materials

24mm diameter, 0.4µm Transwell Polyester membrane filter insert Corning 3450 This is one 6 well plate of inserts
225cm2 flask Corning 431082
6 well plates (without filter inserts) Corning 3506
Primary human coronary artery endothelial cells Lonza CC-2585
Primary human coronary artery smooth muscle cells Lonza CC-2583
EBM-2 EC Basal media Lonza CC-3156
EC growth factors (EGM2 MV Single quots) Lonza CC-4147 Add to basal media before use
SmBM SMC basal media Lonza CC-3181
SMC growth factors (SmGM-2 SingleQuot) Lonza CC-4149 Add to basal media before use
0.5% Trypsin-EDTA 10X Gibco 15400-054 Dilute to 2X with sterile dPBS
Hemocytometer VWR 15170-208
large petri dishes for SMC Plating (150mm) Corning 353025
Bovine gelatin Sigma G-9382
Human fibronectin Corning 356008 5µg/ml of fibronectin and store at -20
10X Hanks' Buffered salt solution (HBSS) Gibco 14065-056 Dilute to 1x with sterile water
10X Dulbecco's Phosphate buffered saline (dPBS) Gibco 14200-075 Dilute to 1x with sterile water
Disposable Curved Scalpel (30mm cutting edge) with handle Amazon MDS15210
Forceps Fisher 17-467-201
Cell lifter Corning 3008
Cell scraper BD Falcon 353085
50mL conical tube Corning 352070
10mm petri dishes Falcon 35-1008
Rneasy mini kit Qiagen 74104
RNA lysis reagent Qiagen 79306
Paraformaldehyde Sigma 158127 Make 4% solution with dPBS
70% ethanol Fisher 04-355-305
Cavicide disinfectant Fisher 131000
RIPA protein lysis buffer Sigma R0278
Sonic dismembranator Fisher Model 50
1X PBS for harvesting EC/SMC and immunocytochemistry Gibco 10010023 does not need to be sterile
Name Company Catalog Number Comments
Embedding/Sectioning/Staining
Paraffin Fisher P31-500
Automated tissue processer Excelsior ES
Embedding station + cold plate Leica HistoCore Arcadia
Tissue Tek Accu-Edge Microtome blade VWR 25608-961 or 25608-964
Microscope slides Thermo Fisher 22-230-900
Coverslips Thermo Fisher 12-548-5E
Prolong Gold mounting medium Thermo Fisher P36931
Name Company Catalog Number Comments
Other Solutions **Perform all steps in sterile conditions if using the solution on live cells
Sterile dPBS Autoclave water to sterilize. Using the sterile water make DPBS (450mL sterile water: 50mL 10X DPBS), mix and filter sterilize (0.2µm filter).
Final concentration: 1X
sterile HBSS Autoclave water to sterilize. Using the sterile water make HBSS (450mL sterile water: 50mL 10X HBSS), mix and filter sterilize (0.2µm filter).
Final concentration: 1X
Fibronectin stock solution Use 50mL of sterile water to fibronectin to make stock of 1mL aliquots, then freeze until needed
Final concentration: 100µg/mL
Fibronectin to coat SMC side of VCCC thaw one aliquot and add 1mL of fibronectin (100µg/mL) to 19mLs of 1X HBSS to reach a final concentration of 5µg/mL.
Final concentration: 5µg/mL
2x Trypsin EDTA solution Dilute the 10X 0.5% Trypsin-EDTA to 2X with 1X dPBS (40mL DPBS: 10mL 10X Trypsin) .
Final concentration: 2X
Blocking/antibody solution (9mL 1X PBS, 25mL Triton X100, 50mg bovine serum albumin, 500mL normal serum)
Bovine gelatin to coat EC VCCC Mix 0.5g bovine gelatin into 100mL distilled water. Autoclave prior to first use and store at room temperature. Keep in sterile conditions.
Final concentration: 0.50%
1X PBS for harvesting cells does not need to be sterile

Referencias

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Citar este artículo
Biwer, L. A., Lechauve, C., Vanhoose, S., Weiss, M. J., Isakson, B. E. A Cell Culture Model of Resistance Arteries. J. Vis. Exp. (127), e55992, doi:10.3791/55992 (2017).

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