Summary

Oppervlakte-enhanced resonantie Raman verstrooiing nanosonde Ratiometry voor het opsporen van microscopische eierstokkanker via folaat Receptor gericht op

Published: March 25, 2019
doi:

Summary

Eierstokkanker vormen metastasen in de peritoneale holte. Hier presenteren we een protocol te maken en gebruik folaat-receptor gerichte oppervlak-enhanced resonantie Raman verstrooiing nanoprobes dat onthullen van deze letsels met hoge specificiteit via de beeldvorming van de ratiometric. De nanoprobes intraperitoneally zijn toegediend aan levende muizen, en de afgeleide beelden correleren goed met histologie.

Abstract

Eierstokkanker vertegenwoordigt de dodelijkste gynecologic maligniteit. De meeste patiënten presenteren in een vergevorderd stadium (FIGO fase III of IV), wanneer lokale metastatische verspreiden zich al heeft voorgedaan. Echter, ovariale kanker heeft een uniek patroon van metastatische verspreiding, tumor implantaten in eerste instantie zijn vervat in de peritoneale holte. Deze functie kan inschakelen, in principe de volledige resectie van de tumor implantaten met een curatieve intentie. Veel van deze metastatische letsels zijn microscopische, waardoor ze moeilijk te identificeren en behandelen. Neutraliseren van dergelijke micrometastasen wordt verondersteld te zijn een grote doel naar het elimineren van de herhaling van de tumor en het bereiken van voortbestaan op lange termijn. Raman imaging met oppervlakte verbeterde resonantie Raman verstrooiing nanoprobes kan worden gebruikt om af te bakenen microscopische tumoren met hoge gevoeligheid, als gevolg van hun heldere en bioorthogonal spectrale signatuur. Hier beschrijven we de synthese van twee ‘smaken’ van zo’n nanoprobes: antilichaam-matiemaatschappij een die zich richt op de receptor folaat — overexpressie in veel kanker van de eierstokken — en een niet-gerichte controle-nanosonde, met verschillende spectra. De nanoprobes zijn mede door de overheid gereguleerde intraperitoneally aan Muismodellen van metastatische menselijke ovariële adenocarcinoom. Alle dierlijke studies werden goedgekeurd door de institutionele Animal Care en gebruik Comité van Memorial Sloan Kettering Cancer Center. De peritoneale holte van de dieren is operatief blootgesteld gewassen en gescand met een Raman-microphotospectrometer. Vervolgens de Raman handtekeningen van de twee nanoprobes zijn ontkoppelde met behulp van een algoritme voor de montage van klassieke kleinste kwadraten, en hun respectievelijke scores verdeeld zodat een ratiometric signaal van folaat-gerichte over irrelevante sondes. Op deze manier worden de microscopische uitzaaiingen gevisualiseerd met hoge specificiteit. Het belangrijkste voordeel van deze aanpak is dat de lokale applicatie in de peritoneale holte — die kan gemakkelijk worden gedaan tijdens de chirurgische ingreep — tumoren kunt labelen zonder de patiënt te onderwerpen aan de systemische nanoparticle blootstelling. Valse positieve signalen die voortvloeien uit niet-specifieke binding van de nanoprobes op viscerale oppervlakken kan worden geëlimineerd door een ratiometric aanpak te volgen waarin gerichte en niet-doelgerichte nanoprobes met verschillende Raman handtekeningen worden toegepast als een mengsel. De procedure is momenteel nog beperkt door het ontbreken van een commerciële breed-gebied Raman imaging camerasysteem, waarmee één keer beschikbaar voor de toepassing van deze techniek in de operationele theater.

Introduction

Raman imaging met ‘Oppervlakte verbeterde Raman verstrooiing’ (SERS) nanodeeltjes heeft aangetoond grote belofte in uitgezet laesies in een verscheidenheid van instellingen en voor vele verschillende tumor type1,2,3,4 . Het belangrijkste voordeel van SERS nanodeeltjes is hun vingerafdruk-achtige spectrale signatuur, bieden ze onbetwistbaar opsporen die niet door biologische achtergrond signalen5is verward. Bovendien, de intensiteit van het uitgezonden signaal wordt verder versterkt met het gebruik van verslaggever moleculen (kleurstoffen) met absorptie maxima in overeenstemming met de excitatie-laser, die aanleiding geven tot het ‘oppervlakte verbeterde resonantie Raman verstrooiing’ (SERRS) nanodeeltjes met nog grotere gevoeligheid6,7,8,9,10,11,12.

Een barrière die moet worden aangepakt voor de aanneming van SE(R)RS nanodeeltjes13 en vele andere nanoparticle constructies14,15 voor klinisch gebruik is hun wijze van toediening, zoals intraveneuze injectie systemische veroorzaakt blootstelling van de agent, en vereist uitgebreide testen als u wilt uitsluiten van mogelijke bijwerkingen. In dit artikel presenteren wij een ander paradigma gebaseerd op de toepassing van nanodeeltjes lokaal in vivo, direct in de peritoneale holte tijdens chirurgie, gevolgd door een wassen stap voor verwijderen van een niet-afhankelijke nanodeeltjes1. Deze aanpak is in overeenstemming met de nieuwe therapeutische benaderingen die momenteel onderzochte waardoor ook gebruik van een lokale toediening van agenten in de peritoneale Holte, genaamd hyperthermic intraperitoneaal chemotherapie (HIPEC). Aldus, het principe zelf moet zijn relatief eenvoudig te integreren in een klinische werkstroom. We hebben het ook van de nanodeeltjes onderzocht na intraperitoneale toediening, en eventuele detecteerbare absorptie in de systemische circulatie1niet in acht genomen. Daarnaast omzeilt de lokale toepassing aanpak de inbeslagneming van nanodeeltjes door het reticuloendotheliaal-systeem, dus de nummers van nanodeeltjes vereist zijn aanzienlijk verminderd. Echter, wanneer toegepast topicaal, antilichaam-matiemaatschappij nanodeeltjes neiging te houden op de viscerale oppervlakken zelfs in de afwezigheid van hun doel. Oog op het minimaliseren van valse positieve signalen als gevolg van niet-specifieke nanoparticle hechting, wij streven naar een benadering van de ratiometric, waar een moleculair gerichte nanosonde zorgt voor het specifieke signaal en een niet-gerichte controle-nanosonde, met verschillende Raman spectrum, accounts voor niet-specifieke achtergrond16,17. We hebben aangetoond dat deze methode van topisch toegepast oppervlakte verbeterde resonantie ratiometric Ramanspectroscopie onlangs in een muismodel van diffuse eierstokkanker1.

Het algemene doel van deze methode is het ontwikkelen van twee SERRS nanoprobes, een gerichte en één niet-specifieke, moeten lokaal worden toegepast in muismodellen, om het beeld van de prevalentie/overexpressie van kanker gerelateerde biomerker met behulp van ratiometric detectie van de twee sondes via Raman imaging. In dit werk, werd de folaat receptor (FR) gekozen als de doelgroep, zoals dit een upregulated van de markering in vele ovariële kanker18,19 is. Raman microimaging met nanodeeltjes SERS gebaseerde is ook aangetoond voor kanker cel identificatie20. Twee verschillende “flavors” van Raman nanodeeltjes worden gesynthetiseerd, elk die haar vingerafdruk voortvloeien uit een verschillende organische kleurstof. De nanodeeltjes bestaan uit een ster-vormig gouden kern omgeven door een silica omhulsel en tonen oppervlakte plasmon resonantie op ongeveer 710 nm. De verslaggever Raman (organische kleurstof) wordt gelijktijdig met de vorming van silica shell gestort. Ten slotte is de silica shell voor de FR-gerichte nanoprobes (αFR-NPs) geconjugeerd met antilichamen, overwegende dat de niet-gerichte nanoprobes (nt-NPs) zijn gepassiveerd met een enkelgelaagde van polyethyleenglycol (PEG).

Deze techniek werd met succes gebruikt om de kaart van microscopische tumoren in een muismodel van xenograft van diffuse metastatische ovariale kanker (SKOV-3), demonstreren de toepasbaarheid ervan voor in vivo gebruik. Het kan ook worden uitgebreid voor gebruik in het verwijderde weefsel, voor tumor fenotypering of marge vaststelling na debulking zoals in een cognaat studie21.

SERRS nanoprobes zorgen voor een robuust platform voor het creëren van meerdere gerichte labels voor biomarkers, gesynthetiseerd met eenvoudige chemische reacties, zoals schematisch aangegeven in Figuur 1. Hier presenteren we het protocol voor de synthese van de twee soorten SERRS nanoprobes (secties 1-3), de ontwikkeling van een geschikt eierstokkanker muismodel (punt 4), het beheer van nanoprobes en beeldvorming (sectie 5) en ten slotte de data-analyse en Visualisatie (punt 6).

Protocol

Alle dierlijke studies werden goedgekeurd door de institutionele Animal Care en gebruik Comité van Memorial Sloan Kettering Cancer Center (#06-07-011). 1. gouden Nanostar Core synthese Opmerking: Gouden nanostars worden gebruikt als kernen voor beide smaken van de SERRS nanoprobes gebruikt in dit experiment. 800 mL van 60 mM ascorbinezuur (C6H8O6) oplossing in gedeïoniseerd water (DI) en 8 mL van 20 mM te…

Representative Results

Oog op kwaliteitscontrole kan de nanodeeltjes worden gekarakteriseerd met behulp van een verscheidenheid van methoden tijdens het proces van synthese, met inbegrip van TEM, Distributielijsten, nanoparticle bijhouden analyse en UV/Vis Absorptie spectroscopie, zoals weergegeven in Figuur 2. Op deze manier de grootte van de kern van de gouden nanostar (beschreven in sectie 1), de vorming van de silica …

Discussion

Voorziet het protocol beschreven hier instructie voor de synthese van twee “flavors” van SERRS nanoprobes, en hun werkgelegenheid in muizen Raman imaging van ovariële tumor overexpressing de Receptor van folaat, een ratiometric algoritme gebruikt. Het belangrijkste voordeel van Raman imaging over andere optische beeldvormende technieken (zoals fluorescentie) is de hoge specificiteit van het nanosonde signaal dat niet kan worden verward met alle signalen van biologische oorsprong. In deze belichaming van Raman imaging, w…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De volgende financieringsbronnen (naar MFK) zijn erkend: NIH R01 EB017748, R01 CA222836 en K08 CA16396; Damon Runyon-Rachleff innovatie Award DRR-29-14, Pershing Square Sohn prijs door de Alliantie voor energieonderzoek van Pershing Square Sohn kanker, en MSKCC centrum voor moleculaire beeldvorming & nanotechnologie (CMINT) en technologieontwikkeling verleent. Bevestigingen zijn ook uitgebreid tot de subsidiefinanciering ondersteuning die wordt geboden door de MSKCC NIH Core subsidie (P30-CA008748).

Materials

Name of Reagent
Ascorbic acid Sigma-Aldrich A5960
3-MPTMS Sigma-Aldrich 175617
Ammonium hydroxide (28%) Sigma-Aldrich 338818
Anti-Folate Receptor antibody [LK26]  AbCam ab3361
Dimethyl sulfoxide Sigma-Aldrich 276855
Dimethyl sulfoxide (anhydrous) Sigma-Aldrich 276855
Ethanol Sigma-Aldrich 792780
IR140 Sigma-Aldrich 260932
IR780 perchlorate* Sigma-Aldrich 576409 Discontinued*
Isopropanol Sigma-Aldrich 650447
N.N.Dimethylformamide Sigma-Aldrich 227056
PEG crosslinker Sigma-Aldrich 757853
PEG-maleimide Sigma-Aldrich 900339
Tetrachloroauric Acid Sigma-Aldrich 244597
Tetraethyl Orthosilicate Sigma-Aldrich 86578
*IR792 Sigma-Aldrich 425982 *Alternative
Name of Equipment
Dialysis cassette (3,500 MWCO) ThermoFIsher 87724
Centrifugal filters Millipore UFC510096
inVia confocal Raman microscope Renishaw
MATLAB (v2014b) Mathworks
PLS Toolbox (v8.0) Eigenvector research

Referencias

  1. Oseledchyk, A., Andreou, C., Wall, M. A., Kircher, M. F. Folate-Targeted Surface-Enhanced Resonance Raman Scattering Nanoprobe Ratiometry for Detection of Microscopic Ovarian Cancer. ACS Nano. 11 (2), 1488-1497 (2017).
  2. Andreou, C., et al. Imaging of Liver Tumors Using Surface-Enhanced Raman Scattering Nanoparticles. ACS Nano. 10 (5), 5015-5026 (2016).
  3. Karabeber, H., et al. Guiding brain tumor resection using surface-enhanced Raman scattering nanoparticles and a hand-held Raman scanner. ACS Nano. 8 (10), 9755-9766 (2014).
  4. Kircher, M. F., et al. A brain tumor molecular imaging strategy using a new triple-modality MRI-photoacoustic-Raman nanoparticle. Nature Medicine. 18 (5), 829-834 (2012).
  5. Andreou, C., Kishore, S. A., Kircher, M. F. Surface-Enhanced Raman Spectroscopy: A New Modality for Cancer Imaging. Journal of Nuclear Medicine. 56 (9), 1295-1299 (2015).
  6. Harmsen, S., et al. Rational design of a chalcogenopyrylium-based surface-enhanced resonance Raman scattering nanoprobe with attomolar sensitivity. Nature Communications. 6, 6570 (2015).
  7. Harmsen, S., et al. Surface-enhanced resonance Raman scattering nanostars for high-precision cancer imaging. Science Translational Medicine. 7 (271), 271ra277 (2015).
  8. Harmsen, S., Wall, M. A., Huang, R., Kircher, M. F. Cancer imaging using surface-enhanced resonance Raman scattering nanoparticles. Nature Protocols. 12 (7), 1400-1414 (2017).
  9. Huang, R., et al. High Precision Imaging of Microscopic Spread of Glioblastoma with a Targeted Ultrasensitive SERRS Molecular Imaging Probe. Theranostics. 6 (8), 1075-1084 (2016).
  10. Iacono, P., Karabeber, H., Kircher, M. F. A "schizophotonic" all-in-one nanoparticle coating for multiplexed SE(R)RS biomedical imaging. Angewandte Chemie, International Edition in English. 53 (44), 11756-11761 (2014).
  11. Spaliviero, M., et al. Detection of Lymph Node Metastases with SERRS Nanoparticles. Molecular Imaging and Biology. 18 (5), 677-685 (2016).
  12. Nayak, T. R., et al. Tissue factor-specific ultra-bright SERRS nanostars for Raman detection of pulmonary micrometastases. Nanoscale. 9 (3), 1110-1119 (2017).
  13. Thakor, A. S., et al. The fate and toxicity of Raman-active silica-gold nanoparticles in mice. Science Translational Medicine. 3 (79), 79ra33 (2011).
  14. Liu, J., et al. Effects of Cd-based Quantum Dot Exposure on the Reproduction and Offspring of Kunming Mice over Multiple Generations. Nanotheranostics. 1 (1), 23-37 (2017).
  15. Wu, N., et al. The biocompatibility studies of polymer dots on pregnant mice and fetuses. Nanotheranostics. 1 (3), 261-271 (2017).
  16. Garai, E., et al. High-sensitivity real-time, ratiometric imaging of surface-enhanced Raman scattering nanoparticles with a clinically translatable Raman endoscope device. Journal of Biomedical Optics. 18 (9), 096008 (2013).
  17. Wang, Y. W., et al. Rapid ratiometric biomarker detection with topically applied SERS nanoparticles. Technology (Singap World Sci). 2 (2), 118-132 (2014).
  18. Lengyel, E. Ovarian cancer development and metastasis. American Journal of Pathology. 177 (3), 1053-1064 (2010).
  19. Vergote, I. B., Marth, C., Coleman, R. L. Role of the folate receptor in ovarian cancer treatment: evidence, mechanism, and clinical implications. Cancer and Metastasis Reviews. 34 (1), 41-52 (2015).
  20. Fasolato, C., et al. Folate-based single cell screening using surface enhanced Raman microimaging. Nanoscale. 8 (39), 17304-17313 (2016).
  21. Wang, Y. W., et al. Raman-Encoded Molecular Imaging with Topically Applied SERS Nanoparticles for Intraoperative Guidance of Lumpectomy. Investigación sobre el cáncer. 77 (16), 4506-4516 (2017).
  22. Andreou, C., Pal, S., Rotter, L., Yang, J., Kircher, M. F. Molecular Imaging in Nanotechnology and Theranostics. Molecular Imaging and Biology. 19 (3), 363-372 (2017).
  23. Chitgupi, U., Qin, Y., Lovell, J. F. Targeted Nanomaterials for Phototherapy. Nanotheranostics. 1 (1), 38-58 (2017).
  24. Choi, D., et al. Iodinated Echogenic Glycol Chitosan Nanoparticles for X-ray CT/US Dual Imaging of Tumor. Nanotheranostics. 2 (2), 117-127 (2018).
  25. Dubey, R. D., et al. Novel Hyaluronic Acid Conjugates for Dual Nuclear Imaging and Therapy in CD44-Expressing Tumors in Mice In Vivo. Nanotheranostics. 1 (1), 59-79 (2017).
  26. Gupta, M. K., et al. Recent strategies to design vascular theranostic nanoparticles. Nanotheranostics. 1 (2), 166-177 (2017).
  27. Huang, Y. J., Hsu, S. H. TRAIL-functionalized gold nanoparticles selectively trigger apoptosis in polarized macrophages. Nanotheranostics. 1 (3), 326-337 (2017).
  28. Pal, S., Harmsen, S., Oseledchyk, A., Hsu, H. T., Kircher, M. F. MUC1 Aptamer Targeted SERS Nanoprobes. Advanced Functional Materials. 27 (32), (2017).
  29. Zanganeh, S., et al. Iron oxide nanoparticles inhibit tumour growth by inducing pro-inflammatory macrophage polarization in tumour tissues. Nat Nanotechnol. 11 (11), 986-994 (2016).
  30. Lee, J., Lee, Y. M., Kim, J., Kim, W. J. Doxorubicin/Ce6-Loaded Nanoparticle Coated with Polymer via Singlet Oxygen-Sensitive Linker for Photodynamically Assisted Chemotherapy. Nanotheranostics. 1 (2), 196-207 (2017).
  31. Li, R., Zheng, K., Yuan, C., Chen, Z., Huang, M. Be Active or Not: the Relative Contribution of Active and Passive Tumor Targeting of Nanomaterials. Nanotheranostics. 1 (4), 346-357 (2017).
  32. Lin, S. Y., Huang, R. Y., Liao, W. C., Chuang, C. C., Chang, C. W. Multifunctional PEGylated Albumin/IR780/Iron Oxide Nanocomplexes for Cancer Photothermal Therapy and MR Imaging. Nanotheranostics. 2 (2), 106-116 (2018).
  33. Roberts, S., et al. Sonophore-enhanced nanoemulsions for optoacoustic imaging of cancer. Chemical Science (Royal Society of Chemistry: 2010). 9 (25), 5646-5657 (2018).
  34. Liu, L., Ruan, Z., Yuan, P., Li, T., Yan, L. Oxygen Self-Sufficient Amphiphilic Polypeptide Nanoparticles Encapsulating BODIPY for Potential Near Infrared Imaging-guided Photodynamic Therapy at Low Energy. Nanotheranostics. 2 (1), 59-69 (2018).
  35. Liu, R., Tang, J., Xu, Y., Zhou, Y., Dai, Z. Nano-sized Indocyanine Green J-aggregate as a One-component Theranostic Agent. Nanotheranostics. 1 (4), 430-439 (2017).
  36. Sneider, A., VanDyke, D., Paliwal, S., Rai, P. Remotely Triggered Nano-Theranostics For Cancer Applications. Nanotheranostics. 1 (1), 1-22 (2017).
  37. Wall, M. A., et al. Surfactant-Free Shape Control of Gold Nanoparticles Enabled by Unified Theoretical Framework of Nanocrystal Synthesis. Advanced Materials. 29 (21), (2017).
  38. Sonali, , et al. Nanotheranostics: Emerging Strategies for Early Diagnosis and Therapy of Brain Cancer. Nanotheranostics. 2 (1), 70-86 (2018).

Play Video

Citar este artículo
Andreou, C., Oseledchyk, A., Nicolson, F., Berisha, N., Pal, S., Kircher, M. F. Surface-enhanced Resonance Raman Scattering Nanoprobe Ratiometry for Detecting Microscopic Ovarian Cancer via Folate Receptor Targeting. J. Vis. Exp. (145), e58389, doi:10.3791/58389 (2019).

View Video