Summary

超音波増強原発性成人線維芽細胞分離

Published: July 29, 2019
doi:

Summary

我々は、初心者(例えば、学生)が実行可能な、簡単で迅速かつ信頼性の高い方法で原発性成人線維芽細胞を分離するためのプロトコルを提示する。この手順は、酵素組織の消化と機械的撹拌を超音波と組み合わせて、一次線維芽細胞を得ます。プロトコルは、特定の実験要件(例えば、ヒト組織)に容易に適合させることができる。

Abstract

原発性成人線維芽細胞は、すべての体組織における線維症、線維芽細胞相互作用および炎症を研究するための重要なツールとなっている。一次線維芽細胞は筋線維芽細胞分化または老化誘導のために無期限に分裂することができないため、新しい培養物を定期的に確立する必要があります。しかし、信頼性の高い分離プロトコルと一次線維芽細胞分離自体を開発する過程で克服すべきいくつかの障害があります:方法の難易度(特に初心者向け)、細菌汚染のリスク、一次線維芽細胞が実験に使用されるまでに必要な時間、およびその後の細胞品質と生存率。本研究では、酵素消化と超音波攪拌を組み合わせた、マウス心臓、肺、肝臓および腎臓から原発性成人線維芽細胞を分離および培養するための、迅速で信頼性が高く、学習しやすいプロトコルが提供される。

Introduction

線維芽細胞は、複数のステラプロセスと広範な大まかな小平性網膜1、2を持つ平らな、紡錘形の細胞である。平均線維芽細胞は30 – 100 μmを測定し、57 ±3日1、3の寿命を有する。ヒト線維芽細胞の平均細胞周期持続時間は、培養条件4に応じて16〜48時間の範囲である。培養された原発性線維芽細胞の複製能力と機能的品質がドナー年齢と否定的に相関するという証拠があり、可能であれば若いドナー(動物または患者)が好ましいことを示唆している5、6.

線維芽細胞は、ほとんどの哺乳類の体組織の主要な細胞型を構成する。彼らのユビキタスな存在にもかかわらず、線維芽細胞の分子同定はまだ挑戦7である。線維芽細胞は、胚発生時に異なるソースから組織や臓器を開発するために移行します 8.このため、線維芽細胞に見られるマーカータンパク質は多数存在しますが、すべての線維芽細胞集団に存在し、線維芽細胞に排他的なユニークなマーカータンパク質がまだ欠落しています。したがって、いくつかの認識されたマーカーの発現パターンは、通常、線維芽細胞を同定するために使用される。最も認識されたマーカーの中には、ビメンチン、ヒト線維芽細胞表面タンパク質(hFSP)、ディスコイジンドメイン受容体2(DDR2)およびα平滑筋アクチン(αSMA)がある。

線維芽細胞は、主要な細胞外マトリックス(ECM)産生細胞型である。それにより、線維芽細胞は整然とした組織構造を維持し、隣接する細胞1に機械的支持を提供する。ECM合成と分解のバランスは、よく規制されたプロセスです。合成に向かうシフトは、過度のECM沈着の始まりをマークし、終了しない場合は線維化を引き起します。線維症は、分子および異型的な変化を受けている活性化線維芽細胞に由来する筋線維芽細胞によって媒介される。筋線維芽細胞の1つの特徴は、ECMおよびサイトカインの分泌を増強し、整然と配置されたαSMAマイクロフィラメント9の発現である。

一次線維芽細胞は、線維症、組織炎症および線維芽細胞癌細胞相互作用10、11に焦点を当てた最近の研究のスポットライトを浴びている。しかしながら、健康および疾患における線維芽細胞特性を効果的に研究するためには、生存可能な原発性成人線維芽細胞を定期的に単離する必要がある。線維芽細胞12、13、14を分離するために利用可能ないくつかの方法があります。線維芽細胞単離の3つの主要な方法は、組織チャンク12、酵素組織消化15、および中空器官9、13、16の酵素灌流からの成長である。成長の利点は、酵素細胞の分解のない穏やかな単離プロセスである。一方、成長培養は通常、細胞が実験に使用されるまで長期間培養期間を必要とします。一般的な酵素消化は速いが、組織を機械的に溶解するために必要な攪拌過程における他の細胞タイプ(例えば、内皮細胞)または細菌との汚染のリスクを負う。さらに、これらの方法は、多くの場合、精巧であり、学ぶために時間とスキルを必要とします。

研究における一次線維芽細胞の重要性に関しては、迅速性、簡易性、信頼性の面で既存の細胞分離アプローチを最適化する必要があります。ここでは、高品質の細胞を提供する新規な超音波系酵素線維芽細胞分離法が提供される。

Protocol

以下のプロトコルは、ドイツのテクニッシュ大学ドレスデン(ファイル番号:T 2014/4)および国際的に受け入れられている動物ケアガイドライン(FELASA)17の制度的な動物ケアガイドラインに従っています。図 1は、セルの分離プロセスを視覚化します。 1. セットアップ、マテリアル、メディアの準備 細胞培養培地、PBS溶液、コラ?…

Representative Results

固体マウス組織から成体線維芽細胞を分離するこのプロトコルの能力が実証された。免疫蛍光染色や増殖実験などの後続の実験に用いることができる生細胞芽細胞が得られた(図2D-F、図5A)。 成体線維芽細胞は、通常単層12、18で成長する複数の細胞プロセス?…

Discussion

不死線維芽細胞株と比較して、一次線維芽細胞はいくつかの利点を提供する。それらは高品質および量で費用を効果的に隔離することができる。さらに、一次培養は、複数の個体から細胞を研究する可能性を提供し、得られた結果の信頼性を高め、単に細胞培養アーティファクトを研究する可能性を減少させる。新しい一次培養の連続的な生成は、一般的に繰り返し通過後に発生する遺伝的?…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

ロミー・ケンペさんとアネット・オピッツ夫人の技術サポートに感謝します。また、ビョルン・ビンニューエルグ氏のITサポートにも感謝します。この研究は、フェルダークライス・ドレスラー・ヘルツ=クライスラウフ・テージe.V.、b)「ハビリテス・フェルダー・プログラム・フュール・フラウエン」、カール・グスタフ・カルス・ドレスデン医学部、その他クレーナー・フォルシュングスコレッグ(EKFK)の助成金によって支えられました。カス・ドレスデン私たちは、資金と支援に感謝しています。

Materials

0.25% Trypsin-EDTA Sigma-Aldrich, St. Louis, USA T4049-100ML
Antibiotics Gibco-Life Technologies, Carlsbad, USA Gibco LS15140148  Penicillin/ Streptomycin (10000 U/ml)
Cell culture hood Thermo Fisher Scientific, Waltham, USA 51023608 HeraSafe KSP15
Cell culture incubator Thermo Fisher Scientific, Waltham, USA 50049176 BBD 6220
Cell culture plates Thermo Fisher Scientific, Waltham, USA depends on vessel 6-, 12-, 24-wells Nunclon surface
Cell culture suction VACUUBRAND GMBH + CO KG, Wertheim, Germany 20727400 BVC professional suction
Cell strainer (mesh) Corning, Tewksbury, USA 431750 40 µm Nylon
Centrifuge Thermo Fisher Scientific, Waltham, USA 75007213 Megafuge 8R
Cordless pipetting controller Hirschmann, Eberstadt, Germany 9907200 Pipetus
Disposable pipette tips Sigma-Aldrich, St. Louis, USA depends on volume SafeSeal tips for pipettes (10 µl, 20 µl, 100 µl, 200 µl, 1000 µl)
Disposable plastic pipettes Sigma-Aldrich, St. Louis, USA depends on volume 5 ml, 10 ml, 25 ml, 50 ml
Disposable sterile scalpel Myco Medical, Cary, USA n.a. Techno cut
Dulbeccos Modified Eagle Medium (DMEM) Thermo Fisher Scientific, Waltham, USA 41965-062 High glucose
Eppendorf tubes Eppendorf, Hamburg, Germany  depends on volume 50 µl, 500 µl, 1.500µl, 2.000 µl
Fetal calf serum (FCS) Sigma-Aldrich, St. Louis, USA F2442-50ML
Collagenase blend Sigma-Aldrich, St. Louis, USA 5401020001 Liberase TL Research Grade
Petri dish 6 cm Sigma-Aldrich, St. Louis, USA P5481-500EA
Phosphate Buffered Saline (PBS) Sigma-Aldrich, St. Louis, USA D8537-500ML 500 ml
Senescence detection kit Abcam, Cambridge, UK ab65351
Shaker/ Vortex IKA, Staufen im Breisgau, Germany n.a. MS2 Minishaker (subsequent model: Ident-Nr.: 0020016017)
Sterile plastic tubes Thermo Fisher Scientific, Waltham, USA Falcon 352095 BD Falcon tubes (15 ml, 50 ml)
Ultrasonic water bath BANDELIN electronic GmbH & Co. KG, Berlin, Germany 312 Sonorex RK100H
Surgical scissors (atraumatic) Aesculap AG, Tuttlingen, Germany NR 82
Surgical scissors  Aesculap AG, Tuttlingen, Germany eq 1060.09
Surgical forceps Aesculap AG, Tuttlingen, Germany BD577

Referencias

  1. Baum, J., Duffy, H. S. Fibroblasts and myofibroblasts: what are we talking about. Journal of Cardiovascular Pharmacology. 57 (4), 376-379 (2011).
  2. Tallquist, M. D., Molkentin, J. D. Redefining the identity of cardiac fibroblasts. Nature Reviews. Cardiology. 14 (8), 484-491 (2017).
  3. Weissman-Shomer, P., Fry, M. Chick embryo fibroblasts senscence in vitro: pattern of cell division and life span as a function of cell density. Mechanisms of Ageing and Development. 4 (2), 159-166 (1975).
  4. Angello, J. C. Replicative potential and the duration of the cell cycle in human fibroblasts: coordinate stimulation by epidermal growth factor. Mechanisms of Ageing and Development. 62 (1), 1-12 (1992).
  5. Serra, V., von Zglinicki, T. Human fibroblasts in vitro senesce with a donor-specific telomere length. FEBS Letters. 516 (1), 71-74 (2002).
  6. Mateu, R., et al. Functional differences between neonatal and adult fibroblasts and keratinocytes: Donor age affects epithelial-mesenchymal crosstalk in vitro. International Journal of Molecular Medicine. 38 (4), 1063-1074 (2016).
  7. Ivey, M. J., Tallquist, M. D. Defining the Cardiac Fibroblast. Circulation Journal: Official Journal of the Japanese Circulation Society. 80 (11), 2269-2276 (2016).
  8. Kanisicak, O., et al. Genetic lineage tracing defines myofibroblast origin and function in the injured heart. Nature Communications. 7, 12260 (2016).
  9. Kuenzel, S. R., et al. Hypoxia-induced epigenetic silencing of polo-like kinase 2 promotes fibrosis in atrial fibrillation. bioRxiv. , 445098 (2018).
  10. Van Linthout, S., Miteva, K., Tschöpe, C. Crosstalk between fibroblasts and inflammatory cells. Cardiovascular Research. 102 (2), 258-269 (2014).
  11. Kalluri, R. The biology and function of fibroblasts in cancer. Nature Reviews Cancer. 16 (9), 582-598 (2016).
  12. Poulet, C., Künzel, S., Büttner, E., Lindner, D., Westermann, D., Ravens, U. Altered physiological functions and ion currents in atrial fibroblasts from patients with chronic atrial fibrillation. Physiological Reports. 4 (2), (2016).
  13. Gündüz, D., Hamm, C. W., Aslam, M. Simultaneous Isolation of High Quality Cardiomyocytes, Endothelial Cells, and Fibroblasts from an Adult Rat Heart. Journal of Visualized Experiments. (123), e55601 (2017).
  14. Weldrick, J. J., Abdul-Ghani, M., Megeney, L. A., Burgon, P. G. A rapid and efficient method for the isolation of postnatal murine cardiac myocyte and fibroblast cells. Canadian Journal of Physiology and Pharmacology. 96 (5), 535-539 (2018).
  15. Wang, H., Van Blitterswijk, C. A., Bertrand-De Haas, M., Schuurman, A. H., Lamme, E. N. Improved enzymatic isolation of fibroblasts for the creation of autologous skin substitutes. In Vitro Cellular & Developmental Biology. Animal. 40 (8-9), 268-277 (2004).
  16. El-Armouche, A., et al. Phosphatase inhibitor-1-deficient mice are protected from catecholamine-induced arrhythmias and myocardial hypertrophy. Cardiovascular Research. 80 (3), 396-406 (2008).
  17. Guillen, J. FELASA Guidelines and Recommendations. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 51 (3), 311-321 (2012).
  18. Seluanov, A., Vaidya, A., Gorbunova, V. Establishing primary adult fibroblast cultures from rodents. Journal of Visualized Experiments. (44), 2033 (2010).
  19. Masur, S. K., Dewal, H. S., Dinh, T. T., Erenburg, I., Petridou, S. Myofibroblasts differentiate from fibroblasts when plated at low density. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 93 (9), 4219-4223 (1996).
  20. Rohr, S. Cardiac fibroblasts in cell culture systems: myofibroblasts all along. Journal of Cardiovascular Pharmacology. 57 (4), 389-399 (2011).
  21. Cell lines: Valuable tools or useless artifacts. PubMed – NCBI Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22553484 (2019)
  22. Coppé, J. P., et al. Senescence-associated secretory phenotypes reveal cell-nonautonomous functions of oncogenic RAS and the p53 tumor suppressor. PLoS biology. 6 (12), 2853-2868 (2008).
  23. Childs, B. G., Durik, M., Baker, D. J., van Deursen, J. M. Cellular senescence in aging and age-related disease: from mechanisms to therapy. Nature Medicine. 21 (12), 1424-1435 (2015).
  24. Singh, M., Sharma, A. K. Outgrowth of fibroblast cells from goat skin explants in three different culture media and the establishment of cell lines. In Vitro Cellular & Developmental Biology. Animal. 47 (2), 83-88 (2011).
  25. Linge, C., Green, M. R., Brooks, R. F. A method for removal of fibroblasts from human tissue culture systems. Experimental Cell Research. 185 (2), 519-528 (1989).

Play Video

Citar este artículo
Künzel, S. R., Schaeffer, C., Sekeres, K., Mehnert, C. S., Schacht Wall, S. M., Newe, M., Kämmerer, S., El-Armouche, A. Ultrasonic-augmented Primary Adult Fibroblast Isolation. J. Vis. Exp. (149), e59858, doi:10.3791/59858 (2019).

View Video