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Artículo de método

Montaje y caracterización de micelas complejas de polielectrolitos

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DOI:

10.3791/60894

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2 de marzo de 2020

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En este artículo

Resumen

Proporcionamos protocolos y datos representativos para diseñar, ensamblar y caracterizar micelas complejas de polielectrolitos, nanopartículas de carcasa central formadas por polielectrolitos y copolímeros de bloques hidrofílicos sin carga.

Resumen

Las micelas complejas de polielectrolitos (PCM), las nanopartículas de carcasa central formadas por el autoensamblaje de polímeros cargados en solución acuosa, proporcionan una potente plataforma para explorar la física de las interacciones de polielectrolitos y también ofrecen una solución prometedora para el problema apremiante de la administración de oligonucleótidos terapéuticos in vivo. El desarrollo de relaciones estructura-propiedad predictivas para PCM ha resultado difícil, en parte debido a la presencia de fuertes trampas cinéticas durante el autoensamblaje de nanopartículas. En este artículo se describen los criterios para la elección de polímeros para la construcción de PCM y se proporcionan protocolos basados en el recocido de sal que permiten el montaje de nanopartículas repetibles de baja polidispersidad. También discutimos la caracterización de PCM mediante dispersión de luz, dispersión de rayos X de ángulo pequeño y microscopía electrónica.

Introducción

Cuando los polielectrolitos cargados de forma opuesta se mezclan en solución acuosa, la ganancia de entropía por la liberación de sus contraiones provoca la desmezcla de la solución en una fase condensada rica en polímeros y un sobrenadante agotado por polímeros1,2,3,4,5, un fenómeno conocido como complejo de polielectrolitos. Si un bloque hidrófilo neutro se conjuga con uno o ambos polielectrolitos, se produce una separación de fase a nanoescala en su lugar(Figura 1A

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Protocolo

1. Preparación de materiales

  1. Pesar el polímero dibloque liofilizado y añadir agua hasta casi el volumen necesario para una solución en stock de 10 mg/ml de concentración final. Vórtice a máxima velocidad durante 2 min.
  2. Sonicato durante 5 min. Los bloques muy largos pueden requerir sonicación adicional. La solución en stock debe parecer completamente transparente y homogénea.
  3. Ajuste el pH a 7.4 usando NaOH o HCl según sea necesario. Agregue agua al volumen final. Las soluciones pLys-PEG son bastante estables, pero deben refrigerarse para un almacenamiento a largo plazo y el pH debe comprobarse antes de su uso. La liofilización es preferibl....

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Resultados

Con el fin de ilustrar los métodos de caracterización descritos anteriormente, mostramos resultados típicos para los PCM ensamblados a partir de oligonucleótidos y copolímeros de bloque sin varias longitudes y químicas(Figura 1). La Figura 2 proporciona un ejemplo de cómo el tamaño del núcleo PCM (según lo determinado a partir de SAXS y TEM, Figura 4 y Figura 5)varió con la longitud de bloque cargada. <.......

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Discusión

Como se mencionó anteriormente, los protocolos presentados aquí están escritos con un enfoque en oligonucleótidos como el componente de polianión y pLys-PEG como el copolímero de bloque catiónico-neutral, pero los hemos probado con una variedad de polímeros, tales como poli(ácido acrílico), poliglutamato, y PEG-poly(trimetilamonio de vinilo-vinilobenzil), y creemos que serán generalmente aplicables para la mayoría de los pares de polielectrolitos. Un parámetro que puede necesitar ser optimizado es la concentración de sal.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Agradecemos a Phil Griffin y Tera Lavoie de soft Matter Characterization Facility y Advanced Electron Microscopy Facility, respectivamente, en la Universidad de Chicago. También agradecemos a Xiaobing Zuo y Soenke Seifert de la Fuente de Fotones Avanzados en el Laboratorio Nacional de Argonne y el Centro NIST para el Diseño de Materiales Jerárquicos (CHiMaD) por su apoyo. Agradecemos a Jeff Ting y Michael Lueckheide por sus contribuciones a este trabajo.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Papel de filtro circular de 70 mmWhatman1001-070 Papel defiltro para la absorción durante la preparación de la rejilla
Película de carbono Rejilla TEMCiencias de la Microscopía ElectrónicaCF200-CuRejilla TEM
DAWN Tecnología WyattDAWNMALS
Oligonucleótido de ADNADN integrado Nanotechnologies IncOligonucleótido
personalizado Lacey Carbon Rejilla TEMCiencias de la Microscopía ElectrónicaLC200-CuRejilla TEM
Metoxi-poli(etilenglicol)-bloque-poli(clorhidrato de l-lisina) PEG5k - PLKC50Alamanda Polymers IncmPEG5K-b-PLKC50Ejemplo de copolímero
en bloque Milli-QMillipore SigmaAgua ultrapura
NanoDropThermo ScientificPara medir la concentración
pinzas de acción negativaDumontN7Pinzas para la preparación de la rejilla
Parafilm "M"Bemis Company IncPM996Película de laboratorio
Quantifoil Holey Carbon Rejilla TEMde carbono Ciencias de la Microscopía Electrónica Q210CR1.3Rejilla TEM
Goniómetro de investigación y sistema de dispersión de luz láserBrookhaven Instruments InstrumentoBI-200SMDLS/MALS
Slide-A-Lyzer G2 2K 0.5 mLThermo Scientific Pierce Protein Biology87723Cartucho de diálisis
cubeta de pequeño volumenBrookhaven InstrumentsBI-SVCCubeta para DLS/MALS
Sistema de plasma avanzado Solarus 950GatanSolarus 950Sistema de plasma para rejillas TEM Talos
TEM FEITalosTEM utilizado para muestras criogénicas
Tecnai Spirit TEMFEISpiritTEM utilizado para muestras secas
Formiato de uraniloSPI-Chem16984-59-1Para muestras de tinción negativas para TEM
VitrobotFEIVitrobot Robotvitrificación para la preparación de rejillas criogénicas
de ácidos nucleicos de

Referencias

  1. Spruijt, E., Westphal, A. H., Borst, J. W., Cohen Stuart, M. A., van der Gucht, J. Binodal compositions of polyelectrolyte complexes. Macromolecules. 43 (15), 6476-6484 (2010).
  2. van der Gucht, J., Spruijt, E., Lemmers, M., Cohen Stuart, M. A. Polyelectrolyte complexes: bulk ph....

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Reimpresiones y permisos

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