Summary

ヒト大網を用いた卵巣癌腹膜転移の Ex vivo モデル

Published: January 26, 2024
doi:

Summary

このプロトコルは癌の細胞大網の相互作用の三次元(3D) ex vivo モデルの確立を記述する。このモデルは、脂肪ニッチ内の腫瘍誘発メカニズムを解明し、新しい治療法をテストするためのプラットフォームを提供します。

Abstract

卵巣がんは、最も致命的な婦人科悪性腫瘍です。大網は、転移性卵巣がん細胞に支持的な微小環境を提供するだけでなく、腫瘍耐性を可能にする免疫調節シグナルを提供する上で重要な役割を果たします。 しかし、卵巣がん細胞と脂肪に富む組織との相互作用を厳密に模倣したモデルは限られています。大網が腫瘍誘発性の微小環境を提供する細胞および分子メカニズムをさらに理解するために、私たちは癌細胞と大網の相互作用の独自の3D ex vivo モデルを開発しました。ヒト大網を用いて、この脂肪に富む微小環境の中で卵巣がん細胞を増殖させ、腫瘍の増殖や免疫調節に関与する因子をモニターすることができます。このモデルは、この脂肪に富む腫瘍微小環境を研究するためのプラットフォームを提供することに加えて、このニッチな転移性がん細胞を標的とする新しい治療アプローチの開発と評価のための優れたプラットフォームを提供します。提案モデルは、生成が容易で安価であり、トランスレーショナル調査に適用できます。

Introduction

卵巣がんは、世界で最も致命的な婦人科悪性腫瘍です1。このがんを発症する生涯リスクは約70人に1人で、診断年齢の中央値は63歳です2。原発性卵巣悪性腫瘍は、組織学的に上皮性または非上皮性のいずれかに分類される。上皮性卵巣がん(EOC)は腫瘍の90%以上を占め、最も一般的なサブタイプは高悪性度漿液性がん(HGSC)であり、EOCの約70%〜80%を占めています。現在、病気を早期に発見するための有効なスクリーニング方法はありません。そのため、ほとんどの患者は、がんが腹膜腔全体に拡がった後、進行した病期(すなわち、国際婦人科産科[FIGO]ステージIIIまたはIV)で診断されます2。

標準的な最前線治療は、目に見える肉眼的病変をすべて切除する細胞縮小手術と、その後、残存する顕微鏡的病変を破壊するための補助プラチナ製剤ベースの化学療法です。過去20年間で卵巣がんの治療には多くの進歩がありましたが、進行した疾患の患者の約70%が治療後3年以内に再発します3。これらの患者の全体的な予後不良を考えると、EOCにおける進行中および将来のトランスレーショナルリサーチの取り組みは、早期発見のためのバイオマーカーの特定、転移の予防、耐性を回避するための現在の治療法の改善、および新しい個別化がん治療法の開発を目的としています。

腹腔内の全身性転移とそれに関連する化学療法抵抗性は、卵巣癌患者の治療を改善するための主要な制限の2つです4,5。大網は、胃から腸に垂れ下がる脂肪質のエプロンのような構造で、卵巣がん転移の主な部位です6,7。大網は、物理的なバリアとしての機能に加えて、再生能力と血管新生能力を持ち、免疫活性を持っていることが示されており、これらが一緒になって血管新生を促進し、創傷治癒を促進し、感染を制限します8。さまざまな細胞タイプに分化できる幹細胞を高濃度で含み、損傷した組織の修復に役立ちます。大網は、損傷や感染に反応して炎症を起こすことがあり、それが免疫細胞の損傷部位への移動を引き起こす9。これらの免疫細胞は、損傷した組織の修復と再生を促進するのに役立つ成長因子やその他の分子を放出します。大網に局在するマクロファージ、リンパ球、形質細胞などの免疫細胞は「乳白色の斑点」と呼ばれる構造で、病原体を検出して攻撃し、腹膜免疫を調節する役割を担っています。また、大網は免疫寛容10(自己抗原に耐え、健康な組織を攻撃しない免疫系の能力)を誘導する役割も担っていることが示されている。しかし、同じ免疫関連活動は、大網腫瘍の増殖、転移、免疫監視の脱出などの病理学的反応にも関与しています9,11。私たちの研究室や他の研究による以前の研究は、抗腫瘍免疫応答の阻害と化学療法抵抗性の獲得における脂肪微小環境のユニークで積極的な役割を示しています12,13,14。残念ながら、大網が腫瘍誘発性の微小環境を提供する細胞および分子メカニズムに関する情報は限られています。

がん細胞と大網の相互作用をよりよく理解するために、ヒト卵巣がん細胞と患者由来の大網外植片からなる3D培養システムを開発しました。ここに記述されているプロトコルは腹膜の癌腫症の新しい 生体外 モデルを表す。このモデルは、この脂肪が豊富な組織における卵巣がん腫瘍形成の自然な進行を模倣しています。提案されたモデルは、生成が容易で安価であり、卵巣癌研究におけるトランスレーショナル研究に適用できる可能性があります。

Protocol

以下の研究プロトコルは、ウェイン州立大学治験審査委員会(IRB)によってレビューされ、承認されました。手術前にすべての患者からインフォームドコンセントが得られました。 図 1 は、このプロトコルの 3 つの一般的な手順を示しています。 1. ヒト大網組織の調製 大網培養培地(DMEM/F12 + 10%ウシ胎児血清 + 1%ペニシリン-ストレ?…

Representative Results

大網標本への卵巣がん細胞の正常な定着は、約14日目までに明らかになりました(図3A-C)。少なくとも 24 回の繰り返しを調製し、さらなる実験を可能にするために、収集した検体ごとに注入しました。蛍光画像を撮影することにより、腫瘍の成長をモニターしました(図3D、E)。画像は、大網に付着していない各?…

Discussion

このプロトコルを使用して、卵巣癌の腹膜癌腫症の前臨床モデルが、基本的な in vitro 技術と ex vivo 技術の組み合わせを使用して開発されました。大網標本にmCherry+ OCSC1-F2ヒト卵巣がん細胞を播種した後、50日間の共培養で進行性の腫瘍増殖が観察されました。この方法は、さまざまな大網標本を使用したいくつかの実験的試験で開発され、最適化されました。腫瘍増殖が成功す?…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この研究は、ジャネット・バロス記念財団から一部資金提供を受けています。大網サンプルの収集について、患者とカルマノスがん研究所婦人科腫瘍科に感謝します。また、カルマノスがん研究所のバイオバンクと相関科学コアが、患者の募集と病理学スライドの作成を調整してくれたことにも感謝しています。バイオバンクと相関科学コアは、ウェイン州立大学カルマノスがん研究所へのNIHセンターの助成金P30 CA22453によって部分的にサポートされています。

Materials

0.05% Trypsin-EDTA (1x) Gibco 25300054
1 mL Insulin Syringe with 26 G detachable needle BD 329652
10 mL Serological Pipets CELLTREAT 229010B
100 mm Tissue Culture Dish Fisherbrand FB012924
15 mL Centrifuge Tube CELLTREAT 229411
24 Well Cell Culture Plate Costar 3524
50 mL Centrifuge Tube CELLTREAT 229421
75 cm2 Tissue Culture Flask CELLTREAT 229341
Corning Cell Counter Corning 9819000
Cytation 5 imager Biotek
DMEM/F12 (1:1) (1x), +L-Glutamine, +2.438 g/L Sodium Bicarbonate Gibco 11320033
Fetal Bovine Serum, Qualified Gibco 1043028
Matrigel Corning 356230 Basement membrane matrix
No. 10 Stainless Steel Disposable Scalpel Integra-Miltex 4410
Penicillin Streptomycin Gibco 15140122
Phosphate Buffered Saline, pH 7.4 (1x) Gibco 10010023
Revolve microscope Echo

Referencias

  1. Siegel, R. L., Miller, K. D., Wagle, N. S., Jemal, A. Cancer statistics. CA Cancer J Clin. 73 (1), 17-48 (2023).
  2. Berek, J. S., Renz, M., Kehoe, S., Kumar, L., Friedlander, M. Cancer of the ovary, fallopian tube, and peritoneum: 2021 update. Int J Gynaecol Obstet. 155 (Suppl 1), 61-85 (2021).
  3. Ledermann, J. A., et al. Newly diagnosed and relapsed epithelial ovarian carcinoma: ESMO clinical practice guidelines for diagnosis, treatment and follow-up. Ann Oncol. 24 (Suppl 6), vi24-32 (2013).
  4. Jelovac, D., Armstrong, D. K. Recent progress in the diagnosis and treatment of ovarian cancer. CA Cancer J Clin. 61 (3), 183-203 (2011).
  5. Morgan, R. J., et al. Ovarian cancer. Clinical practice guidelines in oncology. J Natl Compr Canc Netw. 6 (8), 766-794 (2008).
  6. Nieman, K. M., et al. Adipocytes promote ovarian cancer metastasis and provide energy for rapid tumor growth. Nat Med. 17 (11), 1498-1503 (2011).
  7. Motohara, T., et al. An evolving story of the metastatic voyage of ovarian cancer cells: cellular and molecular orchestration of the adipose-rich metastatic microenvironment. Oncogene. 38 (16), 2885-2898 (2019).
  8. Di Nicola, V. Omentum a powerful biological source in regenerative surgery. Regen Ther. 11, 182-191 (2019).
  9. Meza-Perez, S., Randall, T. D. Immunological functions of the omentum. Trends Immunol. 38 (7), 526-536 (2017).
  10. Liu, M., Silva-Sanchez, A., Randall, T. D., Meza-Perez, S. Specialized immune responses in the peritoneal cavity and omentum. J Leukoc Biol. 109 (4), 717-729 (2021).
  11. Lee, W., et al. Neutrophils facilitate ovarian cancer premetastatic niche formation in the omentum. J Exp Med. 216 (1), 176-194 (2019).
  12. Cardenas, C., et al. Adipocyte microenvironment promotes Bclxl expression and confers chemoresistance in ovarian cancer cells. Apoptosis. 22 (4), 558-569 (2017).
  13. Wu, Q., et al. Cancer-associated adipocytes: key players in breast cancer progression. J Hematol Oncol. 12 (1), 95 (2019).
  14. Zhang, Z., Scherer, P. E. Adipose tissue: The dysfunctional adipocyte – a cancer cell’s best friend. Nat Rev Endocrinol. 14 (3), 132-134 (2018).
  15. Alvero, A. B., et al. TRX-E-002-1 Induces c-Jun-dependent apoptosis in ovarian cancer stem cells and prevents recurrence in vivo. Mol Cancer Ther. 15 (6), 1279-1290 (2016).
  16. Alvero, A. B., et al. Novel approach for the detection of intraperitoneal micrometastasis using an ovarian cancer mouse model. Sci Rep. 7, 40989 (2017).
  17. Craveiro, V., et al. Phenotypic modifications in ovarian cancer stem cells following Paclitaxel treatment. Cancer Med. 2 (6), 751-762 (2013).
  18. Sumi, N. J., et al. Murine model for non-invasive imaging to detect and monitor ovarian cancer recurrence. J Vis Exp. (93), e51815 (2014).
  19. Agarwal, R., et al. Macrophage migration inhibitory factor expression in ovarian cancer. Am J Obstet Gynecol. 196 (4), 348.e1-348.e5 (2007).
  20. Kelly, M. G., et al. TLR-4 signaling promotes tumor growth and paclitaxel chemoresistance in ovarian cancer. Cancer Res. 66 (7), 3859-3868 (2006).
  21. Li, J., et al. CBX7 binds the E-box to inhibit TWIST-1 function and inhibit tumorigenicity and metastatic potential. Oncogene. 39 (20), 3965-3979 (2020).
  22. Tedja, R., et al. Generation of stable epithelial-mesenchymal hybrid cancer cells with tumorigenic potential. Cancers (Basel). 15 (3), 15030684 (2023).
  23. Dauleh, S., et al. Characterisation of cultured mesothelial cells derived from the murine adult omentum. PLoS One. 11 (7), e0158997 (2016).

Play Video

Citar este artículo
Wong, T., Tedja, R., Chehade, H., Morris, R., Alvero, A. B., Mor, G. An Ex Vivo Model of Ovarian Cancer Peritoneal Metastasis Using Human Omentum. J. Vis. Exp. (203), e66031, doi:10.3791/66031 (2024).

View Video