Summary

Astrositler Plazma Membran ve Küresel Hücre içi kalsiyum Dynamics civarında Ölçüm

Published: April 26, 2009
doi:

Summary

Biz toplam iç yansıma ve Epifloresans mikroskopi kullanılarak kültürlü astrositler membran ve küresel hücre içi kalsiyum dinamikleri yakın ölçmek için nasıl açıklar.

Abstract

Beyin glial hücreler içerir. Astrositler, glial hücre tipi, uzun nöronlar için pasif bir destekleyici bir rol sağlamak için bilinmektedir. Ancak, artan kanıtlar astrositler nöronlar ile fonksiyonel etkileşim yoluyla da aktif beyin fonksiyonu katılmak olabileceğini düşündürmektedir. Ancak, birçok temel yönleri astrosit biyoloji, tartışmalı, belirsiz ve / veya deneysel keşfedilmemiş kalır. Bir önemli konu astrositlerde hücre içi kalsiyum Transientlerin dinamikleri. Kalsiyum önemli bir ikinci haberci olarak iyi kurulmuş ve çünkü astrosit kalsiyum yükselmeler astrositler gelen vericileri serbest bırakılması tetikleyebilir ileri sürülmektedir çünkü bu geçerlidir. Ancak, yakın plazma membranı kalsiyum astrositler sinyal herhangi bir ayrıntılı ve tatmin edici bir açıklama olmamıştır. Toplam iç yansıma floresan (TIRF) mikroskopi canlı hücrelerinin plazma membranı yaklaşık 100 nm içinde önemli fizyolojik sinyalleme olaylarını analiz etmek için güçlü bir araçtır. Burada, TIRF mikroskobu kullanımı ve neredeyse aynı anda, plazma membranı ve küresel hücre içi kalsiyum dinamikleri yakın izlemek nasıl tarif. Bu yaklaşımın daha rafine ve sistematik bir uygulama astrosit kalsiyum sinyal kesin detaylar hakkında bilgi potansiyeline sahiptir. Astrosit kalsiyum dinamiklerinin ayrıntılı bir anlayış, nasıl, ne zaman ve neden astrositler ve nöron kalsiyum-bağımlı fonksiyonel etkileşimleri tabi anlamak için bir temel sağlayabilir.

Protocol

DENEYSEL PROSEDÜRLER Deneysel işlemin bir adım daha akıllıca bir şekilde aşağıda açıklanan iki ana bölümden oluşmaktadır. Bölüm 1: HAZIRLAMA hipokampal astrosit KÜLTÜRLER Kısaca, karışık, hipokampal astrosit nöron kültürleri iyi kurulmuş bir protokol 1,2,3 kullanılarak hazırlanmıştır. Prosedürü, sağlıklı kültürlü astrositler verim için optimize edilmiş. Aşağıda listelenen tüm işlem…

Discussion

Astrositler hücre içi kalsiyum yükselmeler görüntüler çok iyi kurulmuştur. Bu, kendiliğinden meydana gelen nöronal aktivite veya 11 astrosit yüzey reseptörleri aktive agonistleri uygulama tarafından tetiklenebilir. Bir önemli ve tartışmalı bir konu olmadığını astrosit hücre içi kalsiyum yükselmeleri, nöronlar 11, 12 reseptörleri aktive sinyal molekülleri serbest bırakılması tetikleyebilir. Yorum Haydon 7, 13 ve McCarthy 11 laboratuvarları tarafından vurgulanan bu g?…

Acknowledgements

Bu çalışma, Japonya Uehara Memorial Foundation (ES) yanı sıra Whitehall Vakfı, Ulusal Nörolojik Bozukluklar ve İnme ve Stein-Oppenheimer Endowment Ödülü (BSK) Enstitüsü tarafından desteklendi.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
VWR® Micro Cover Slips, Round, No. 1 Tool VWR 48380-068  
Poly-D-lysine hydrobromide Reagent Sigma P0899  
Laminin from Engelbreth-Holm-Swarm murine sarcoma basement membrane Reagent Sigma L2020  
Earle’s Balanced Salt Solution (EBSS) (1X), liquid Reagent Invitrogen 14155-063  
Minimum Essential Medium (MEM) (1X), liquid Contains Earle’s salts, but no L-glutamine or phenol red Reagent Invitrogen 51200-038  
Penicillin-Streptomycin liquid Reagent Invitrogen 15140-122  
Sodium pyruvate solution Reagent Sigma S8636  
HEPES solution 1 M Reagent Sigma H0887  
N-2 Supplement (100X), liquid Reagent Invitrogen 17502-048  
Horse Serum, Heat-Inactivated Reagent Invitrogen 26050-088  
PAPAIN-022 Reagent Worthington LK003178  
Neurobasal™ Medium (1X) Liquid without Phenol Red Reagent Invitrogen 12348-017  
B-27 Serum-Free Supplement (50X), liquid Reagent Invitrogen 17504-044  
L-Glutamine-200 mM (100X), liquid Reagent Invitrogen 25030-149  
Cell Strainers Tool BD Biosciences 352350  
BD Falcon Multiwell Flat-Bottom Plates with Lids, Sterile Tool BD Biosciences 353046  
NaCl Reagent Sigma S7653  
KCl Reagent Sigma P3911  
CaCl2 hexahydrate Reagent Sigma 21108  
MgCl2 hexahydrate Reagent Sigma M2670  
HEPES free acid Reagent Sigma H3375  
D-(+)-glucose Reagent Sigma G7528  
Fluo-4, AM 1 mM solution in DMSO Reagent Invitrogen F-14217  
Pluronic® F-127 20% solution in DMSO Reagent Invitrogen P-3000MP  
Immersion Oil TYPE DF Microscope Cargille 16242  
Open chamber for 25 mm round coverslips, 100 μl volume Tool WARNER Instruments 64-0362 (RC-21BDW)  
P-2 platform for Series 20 chambers, non-heater Tool WARNER Instruments 64-0278 (P-2)  
FluoSpheres carboxylate-modified microspheres, 0.1 μm, yellow-green fluorescent (505/515) 2% solids Reagent Invitrogen F8803  

References

  1. Richler, E., Chaumont, S., Shigetomi, E., Sagasti, A., Khakh, B. S. An approach to image activation of transmitter-gated P2X receptors in vitro and in vivo. Nature Methods. 5, 87-93 (2008).
  2. Granseth, B., Odermatt, B., Royle, S. J., Lagnado, L. Clathrin-mediated endocytosis is the dominant mechanism of vesicle retrieval at hippocampal synapses. Neuron. 51, 773-786 (2006).
  3. Nunez, J. Primary culture of hippocampal neurons from P0 newborn rats. J Vis Exp. 19, (2008).
  4. Steyer, J. A., Almers, W. A real-time view of life within 100 nm of the plasma membrane. Nat Rev Mol Cell Biol. 2, 268-275 (2001).
  5. Jaiswal, J. K., Fix, M., Takano, T., Nedergaard, M., Simon, S. M. Resolving vesicle fusion from lysis to monitor calcium-triggered lysosomal exocytosis in astrocytes. Proc Natl Acad Sci U S A. 104, 14151-14156 (2007).
  6. Araque, A., Carmignoto, G., Haydon, P. G. Dynamic signalling between astrocytes and neurons. Annu Rev Physiol. 63, 795-813 (2001).
  7. Haydon, P. G. GLIA: listening and talking to the synapse. Nat Rev Neurosci. 2, 185-193 (2001).
  8. Bowser, D. N., Khakh, B. S. ATP excites interneurons and astrocytes to increase synaptic inhibition in neuronal networks. J Neurosci. 24, 8606-8620 (2004).
  9. Bowser, D. N., Khakh, B. S. Two forms of astrocyte single vesicle exocytosis imaged with total internal reflection fluorescence microscopy. Proc Natl Acad Sci U S A. 104, 4212-4217 (2007).
  10. Bowser, D. N., Khakh, B. S. Vesicular ATP is the predominant cause of intercellular calcium waves in astrocytes. J Gen Physiol. 129, 485-491 (2007).
  11. Agulhon, C. What is the role of astrocyte calcium in neurophysiology. Neuron. 59, 932-946 (2008).
  12. Barres, B. A. The mystery and magic of glia: a perspective on their roles in health and disease. Neuron. 60, 430-440 (2008).
  13. Lee, S. Y., Haydon, P. G. Astrocytic glutamate targets NMDA receptors. J Physiol. 581, 887-888 (2007).
  14. Shigetomi, E., Bowser, D. N., Sofroniew, M. V., Khakh, B. S. Two forms of astrocyte calcium excitability have distinct effects on NMDA receptor-mediated slow inward currents in pyramidal neurons. J Neurosci. 28, 6659-6663 (2008).
  15. Cahoy, J. D. A transcriptome database for astrocytes, neurons, and oligodendrocytes: a new resource for understanding brain development and function. J Neurosci. 28, 264-278 (2008).
check_url/fr/1142?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Shigetomi, E., Khakh, B. S. Measuring Near Plasma Membrane and Global Intracellular Calcium Dynamics in Astrocytes. J. Vis. Exp. (26), e1142, doi:10.3791/1142 (2009).

View Video