Summary

在现场的斑马鱼胚胎的基于双光子Photoactivati​​on

Published: December 24, 2010
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Summary

多光子显微镜允许控制与深厚的光学渗透和减少光毒性低能量的光子。我们描述了使用这项技术在斑马鱼胚胎活细胞标记。该协议可以很容易地适应各种光反应的分子的光感应。

Abstract

Photoactivati​​on一个活的有机体中的目标化合物已被证明是一个有价值的方法,调查各种生物,如胚胎发育,细胞信号和成人的生理过程。在这方面,多光子显微镜的使用,使深部组织的一个给定的光反应剂在单细胞分辨率定量photoactivati​​on。由于斑马鱼的胚胎是透明的,其发展可以监测体内。这些特点使斑马鱼的一个完美的模式生物,用于控制各种化学制剂和聚焦光线的蛋白质的活动。在这里,我们描述双光子显微镜的使用,以诱导荧光,化学笼激活,从而允许我们按照活的斑马鱼胚胎细胞的命运。我们使用表达一个活的遗传具有里程碑意义的(GFP)的定位和精确瞄准任何利益细胞的胚胎。此过程同样可以用于精确的光诱导活化蛋白质,激素类,小分子和其他笼化合物。

Protocol

我们描述了一个协议使用笼荧光标记的细胞,但是,其他照片激活的染料和蛋白质可以同样使用。 1。注射笼荧光准备5%的股票,共轭葡聚糖4,5 – 二甲氧基- 2 – 硝基苯(DMNB)笼荧光素(10,000兆瓦右旋糖酐,阴离子,Invitrogen公司,分子探针,卡尔斯巴德,加利福尼亚的解决方案(5毫克笼荧光素/ 100μL0.2M氯化钾)猫没有D – 3310)。分装和储存在-20 ° C。注意DMNB笼荧光是?…

Discussion

光激活的化合物分子,其功能被屏蔽,直到它们与特定波长(通常是紫外线)诱导光化学反应转换成一种生物或化学活性状态的分子,照亮。这些探头在细胞生物学研究提供了非常强大的工具,因为激活可精确控制时间和空间限制了其暴露在光线下。

多光子显微镜的显着优点是比较深的光学穿透和减少非特异性光毒性。激活过程中,必须吸收低能量的两个光子的光激活化合?…

Acknowledgements

感谢由于热尼亚图图形布罗德斯基;请提供neurogenin1记者一行乌韦Strahle和维亚切斯拉Kalchenko,道格拉斯卢茨和列昂尼德Roitman两个光子uncaging的技术咨询和援助; Maayan Tahor提供技术援助和Suliman Elsadin阿莫斯Gutnick本书稿的意见。在Levkowitz实验室的研究是由德国和以色列基金会(批准数二千〇七分之一百八十三);以色列科学基金会(批准号928/08)和哈里特马塞尔德克尔基金会的支持。 GL Tauro的职业生涯中的生物医学研究的发展主席是现任。

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Dextran-conjugated 4,5-dimethoxy-2-nitrobenzyl (DMNB) caged fluorescein (10,000 MW dextran, anionic)   Invitrogen D-3310 molecular probes
Agarose for injection trough and coated plates   Sigma A9539  
Thin Wall Glass Capillaries with filament   World Precision Instruments TW100F-6  
Micropipette puller   Sutter Instrument P-97  
Microloader tip   Eppendorf 5242 956.003  
Pneumatic picopump   World Precision Instruments PV820  
Phenylthiourea (PTU)   Sigma 22290-9  
Low melting point agarose for embryo mounting   Ultra Pure LMP agarose 16520100  
Anti-Fluorescein- alkaline phosphatase (AP) Fab fragments   Roche 11426338910  
Fast Red   Roche 11496549001  

References

  1. Westerfield, M. The Zebrafish Book: Guide for the Laboratory Use of Zebrafish (Brachydanio rerio. , (1995).
  2. Russek-Blum, N., Nabel-Rosen, H., Levkowitz, G. High resolution fate map of the zebrafish diencephalon. Dev Dyn. 238, 1827-1835 (2009).
  3. Russek-Blum, N. Dopaminergic neuronal cluster size is determined during early forebrain patterning. Development. 135, 3401-3413 (2008).
  4. Kozlowski, D. J., Murakami, T., Ho, R. K., Weinberg, E. S. Regional cell movement and tissue patterning in the zebrafish embryo revealed by fate mapping with caged fluorescein. Biochem Cell Biol. 75, 551-562 (1997).
  5. Staudt, N., Houart, C. The Prethalamus Is Established during Gastrulation and Influences Diencephalic Regionalization. PLoS Biol. 5, e69-e69 (2007).
  6. Ando, R., Hama, H., Yamamoto-Hino, M., Mizuno, H., Miyawaki, A. An optical marker based on the UV-induced green-to-red photoconversion of a fluorescent protein. Proc Natl Acad Sci U S A. 99, 12651-12656 (2002).
  7. Hatta, K., Tsujii, H., Omura, T. Cell tracking using a photoconvertible fluorescent protein. Nat Protoc. 1, 960-967 (2006).
  8. Boyden, E. S., Zhang, F., Bamberg, E., Nagel, G., Deisseroth, K. Millisecond-timescale genetically targeted optical control of neural activity. Nat Neurosci. 8, 1263-1268 (2005).
  9. Bulina, M. E. Chromophore-assisted light inactivation (CALI) using the phototoxic fluorescent protein KillerRed. Nat Protoc. 1, 947-9453 (2006).
  10. Adams, S. R., Tsien, R. Y. Controlling cell chemistry with caged compounds. Annu Rev Physiol. 55, 755-784 (1993).
  11. Wieboldt, R. Photolabile precursors of glutamate: synthesis, photochemical properties, and activation of glutamate receptors on a microsecond time scale. Proc Natl Acad Sci U S A. 91, 8752-8756 (1994).
  12. Marque, J. J. Using caged neurotransmitters. Nature. 337, 583-584 (1989).
  13. Zucker, R. Photorelease techniques for raising or lowering intracellular Ca2. Methods Cell Biol. 40, 31-63 (1994).
  14. Neveu, P. A caged retinoic acid for one- and two-photon excitation in zebrafish embryos. Angew Chem Int Ed Engl. 47, 3744-3746 (2008).
  15. Shestopalov, I. A., Sinha, S., Chen, J. K. Light-controlled gene silencing in zebrafish embryos. Nat Chem Biol. 3, 650-651 (2007).
  16. Ando, H., Furuta, T., Tsien, R. Y., Okamoto, H. Photo-mediated gene activation using caged RNA/DNA in zebrafish embryos. Nat Genet. 28, 317-325 (2001).
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Citer Cet Article
Russek-Blum, N., Nabel-Rosen, H., Levkowitz, G. Two-Photon-Based Photoactivation in Live Zebrafish Embryos. J. Vis. Exp. (46), e1902, doi:10.3791/1902 (2010).

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