Summary

O método de cultura de embriões de roedores inteiro usando o Rotator do tipo Sistema de Cultura Garrafa

Published: August 28, 2010
doi:

Summary

Técnica de cultura todo embrião de rato permite-nos cultura e embriões de ratos<em> Ex vivo</em> Condição durante períodos limitados, correspondendo a fases midgestation. Neste protocolo de vídeo, demonstramos nossos procedimentos padrão de cultura de embriões de ratos após toda E12.5 usando o rotator-tipo de sistema de cultura de garrafa.

Abstract

Todo embrião cultura técnica (WEC) foi desenvolvido em 1950 pela Nova e seus colegas, e aplicadas em biologia do desenvolvimento 1. Embora o desenvolvimento e crescimento de embriões de mamíferos dependem criticamente a função da placenta, WEC técnica nos permite rato cultura e embriões de ratos condição de ex vivo durante períodos limitados, correspondendo a fases midgestation durante o dia embrionário (E) 6,5 E12.5 na mouse ou E8.5-E14.5 no rato 2, 3, 4. No WEC, nós podemos diretamente alvo desejado áreas de embriões utilizando capilares de vidro fina porque os embriões podem ser manipulados sob o microscópio. Portanto, WEC roedores é uma técnica muito útil quando queremos estudar processos dinâmicos de desenvolvimento de embriões de mamíferos postimplanted. Até à data, vários tipos de sistemas têm sido desenvolvidos WEC 1. Entre estes, o rotator-tipo de sistema de cultura de garrafa é mais popular e adequada para longo prazo de cultura de embriões em midgestation, ou seja, após E9.5 e E11.5 em camundongos e ratos, respectivamente 1. Neste protocolo de vídeo, demonstramos nossos procedimentos padrão de WEC ratos após E12.5 usando um modelo refinado do sistema original rotador, que foi desenhado por New Cockroft e 5, 6, e introduzir várias aplicações da técnica do CME para estudos em desenvolvimento de mamíferos biologia.

Protocol

1. Configurando o sistema WEC Conjunta de uma membrana M 0,22 filtro para o tubo de silicone de entrada no sistema um WEC). Abrir a válvula de um cilindro de gás contendo O 2 (95%) e CO 2 (5%). Fluxo da mistura de gases no cilindro através da garrafa borbulhando contendo água esterilizada. Ajustar o volume do fluxo de mistura gasosa a 50 cc. Insira o tubo de silicone para deixar em uma garrafa de água e verificar o fluxo de mistura gasosa. </…

Discussion

Existem dois passos críticos no WEC roedores para o sucesso. Primeiro, o procedimento de dissecção deve ser preciso para não danificar embriões, especialmente os vasos sanguíneos. Segundo, o procedimento deve ser o mais rápido possível, porque o oxigênio e nutrientes não são mais fornecidos através da placenta após o isolamento do útero. Isto é crítico para os embriões mais velhos. No caso do WEC de ratos após E12.5, devemos transferir embriões dissecado em garrafas de cultura em 30 minutos.

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Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nós agradecemos o Sr. Hajime Ichijo conselhos para a gravação de vídeo e útil para editar o vídeo. Agradecemos também Drs.Yuji Tsunekawa e Kaichi Yoshizaki para assistente de tipo para gravação de vídeo. Este trabalho é apoiado por KAKENHI em B Jovem Cientista ea prioridade Ciência Cérebro Áreas-Molecular de MEXT do Japão. Agradecemos o apoio da Global COE Programa "Centro de Investigação Básica e translacional para a Ciência do Cérebro Global" a partir MEXT do Japão e de Pesquisa Núcleo de Ciência e Tecnologia Evolutiva (CREST) ​​de Ciência japonês e Corporação de Tecnologia de Ciência do Japão e Agência de Tecnologia (JST) .

Materials

Name Type Company Catalog Number Comment
Setting up WEC
WEC system (10-0310) Tool Ikemoto Rika 010-0310 Another small model is also available.
Silicon plug without a hole Tool Ikemoto Rika 010-032-08  
Gas mixture cylinder Tool Nikko Sanso Containing 95% oxygen & 5% carbon dioxide. Custom order.
Gas regulator Tool Ono Seisakusho WR-11  
0.22 μm filter Millex GS Tool Millipore SLGS033SS  
Anesthesia and isolation of the uterus
Large scissors Tool Napox B-7H  
Forceps Tool Napox A-3-2  
Disposal Petri dish
(90 mm x 15 mm)
Tool Iwaki SH90-15 Deep-type dish is the best for dissection.
Isoflurane Reagent Abbott B506 For anesthesia
Pentobarbital sodium Reagent Schering-Plough Animal Health For anesthesia
Tyrode’s saline Reagent According as the protocol in Ref. 2. Save at 4°C.
Timed-pregnant Sprague-Dawley rat Animal Charles Rivers Laboratories Japan  
Preparation of culture medium
Culture glass bottle Tool Ikemoto Rika 010-032-05  
Disposal culture bottle Tool Ikemoto Rika 010-032-06  
Silicon plug with hole Tool Ikemoto Rika 010-032-07  
Aluminum foil Tool Any company  
Autoclaving bag Tool Hogy HM-26 For culture bottles
Autoclaving bag Tool Hogy HM-14A For silicon plugs
0.45 μm filter Millex HA Tool Millipore SLHA033SS  
50 ml conical tube Tool Becton Dickinson 352070  
100 ml beaker Tool Iwaki TE-32  
Rat IC serum Reagent Charles Rivers Laboratories Japan Refer to: Mr. Kunihiko Morisaki,
TEL: +81-(0) 45-474-9336; FAX: +81-(0) 45-474-9340
D(+)-Glucose Reagent Wako 041-00595  
Antibiotic-antimyotic liquid Reagent Gibco 15240  
Dissection of embryos
Ophthalmic straight scissors Tool Napox MB50-7 For cutting the uterine wall
Ophthalmic curved scissors Tool Napox MB54-2 For cutting the yolk sac
Forceps #5 Tool Vigor T6715  
Forceps #5F Tool Regine T6819  
Glass pipette Tool Made by hand using Pasteur pipette.
Autoclaving bag Tool Hogy HM-4 For glass pipettes
Binocular microscope Tool Leica Mz7s  
Light Tool Leica CLS 150XD  
Oil stone Tool Uchida Yoko 833-2000 For sharpening of forceps
Machine oil Tool Uchida Yoko 835-0000 For sharpening of forceps

References

  1. New, D. A. T., Copp, A. J., Cockroft, D. L. Intoroduction. In mammalian postimplantation embryos. In Mammalian Postimplantation Embryos A Practical Approach. , 1-14 (1990).
  2. Cockroft, D. L., Copp, A. J., Cockroft, D. L. Dissection and culture of post implantation embryos. In Mammalian Postimplantation Embryos A Practical Approach. , 15-40 (1990).
  3. Morris-Kay, G. M. Postimplantation mammalian embryos. Essential Developmental Biology A Practical Approach. , 55-66 (1993).
  4. Fujinaga, M., Tuan, R. S., Lo, C. W. In vitro culture of rodent embryos during the early postimplantation period. Developmental Biology Protocols. , 53-76 (2000).
  5. Eto, K., Takakubo, F. Improved development of rat embryos in culture during the period of craniofacial morphogenesis. J. Craniofac. Genet. Dev. Biol. 5, 351-355 (1985).
  6. New, D. A., Cockroft, D. L. A rotating bottle culture method with continuous replacement of the gas phase. Experientia. 35, 138-140 (1979).
  7. Osumi-Yamashita, N., Ninomiya, Y., Eto, K. Mammalian craniofacial embryology in vitro. Int. J. Dev. Biol. 41, 187-194 (1997).
  8. Inoue, T., Nakamura, S., Osumi, N. Fate mapping of the mouse prosencephalic neural plate. Dev. Biol. 219, 373-383 (2000).
  9. Nomura, T., Holmberg, J., Frisen, J., Osumi, N. Pax6-dependent boundary defines alignment of migrating olfactory cortex neurons via the repulsive activity of ephrin A5. Development. 133, 1335-1345 (2006).
  10. Inoue, Y. U., Asami, J., Inoue, T. Genetic labeling of mouse rhombomeres by Cadherin-6::EGFP-BAC transgenesis underscores the role of cadherins in hindbrain compartmentalization. Neurosci. Res. 63, 2-9 (2009).
  11. Calegari, F., Huttner, W. B. An inhibition of cyclin-dependent kinases that lengthens, but does not arrest, neuroepithelial cell cycle induces premature neurogenesis. J. Cell Sci. 116, 4947-4955 (2003).
  12. Osumi, N., Inoue, T. Gene transfer into cultured mammalian embryos by electroporation. Methods. 24, 35-42 (2001).
  13. Arai, Y. Role of Fabp7, a downstream gene of Pax6, in the maintenance of neuroepithelial cells during early embryonic development of the rat cortex. J. Neurosci. 25, 9752-9761 (2005).
  14. Takahashi, M., Nomura, T., Osumi, N. Transferring genes into cultured mammalian embryos by electroporation. Dev. Growth Differ. 50, 485-497 (2008).
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Citer Cet Article
Takahashi, M., Osumi, N. The Method of Rodent Whole Embryo Culture using the Rotator-type Bottle Culture System. J. Vis. Exp. (42), e2170, doi:10.3791/2170 (2010).

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