Summary

Antigenspecifikt In Vivo Killing analysen med CFSE Märkta målceller

Published: November 09, 2010
doi:

Summary

Många infektioner framkalla ett starkt CTL svar, men ibland, inte mängden svarar cellerna inte korrelerar till kontroll av den sjukdomsalstrande<sup> 1</sup>. Ett mått på CTL kvalitet är deras förmåga att döda specifikt<sup> 2</sup>. CFSE märkning av målceller kan användas för att undersöka CTL svar kvalitet<em> In vivo</em<sup> 3,4</sup>.

Abstract

Carboxyfluorescein diacetat succinimidyl ester (CFSE) kan användas för att enkelt och snabbt märka en cellpopulationen för in vivo utredning. Denna märkning har klassiskt använts för att studera spridning och migration. I den metod som presenteras här har vi förkortat tidslinjen efter adoptiv transfer för att titta på överlevnad och dödandet av epitop specifika märkta celler CFSE mål 4-6. Nivån av specifika dödandet av ett CD8 + T-cell klon kan indikera kvaliteten på svaret, eftersom deras kvantitet får vara vilseledande. Särskilda CD8 + T celler kan bli funktionellt utmattad över tiden med en nedgång i cytokinproduktionen och dödar 7,8. Dessutom kan vissa CD8 + T cells kloner dödar inte lika bra som andra med olika TCR särdrag 9. För effektiv cellmedierad immunitet (CMI), måste antigen identifieras som producerar inte bara tillräckligt många svarar T-celler, men också funktionellt robust svarar celler T. Här har vi utvärdera procent cellspecifik dödandet av två peptid specifika kloner T-cell i BALB / c möss.

Protocol

1. Ta fram målspecifik Effektenheter CTL genom immunisering (Dag 0) Innan du börjar, besluta om en specifik effektor: målsystemet. I detta exempel på en klassisk in vivo CTL-analysen kommer vi att använda ett renat peptid immunisering för att framkalla specifika CD8 + T-celler. Samma peptid kommer att användas för puls på syngena målceller, inrätta en särskild effektor: målsystemet. Alternativt kan du välja att använda hela patogen eller protein för att få dina specifika effektenhete…

Discussion

Denna analys kan modifieras för att undersöka proliferativ kapacitet i celler, inklusive klonal expansion, eftersom CFSE delar relativt lika mellan avkomma 10,11. Det är också möjligt att använda CFSE märkning för att undersöka cell migration 6,12, men det finns andra celler spåra metoder som kan vara mer lämpliga beroende på din hypotes, exempelvis tetramers och mareld 13, som också kan kombineras med CFSE märkning.

Det är viktigt att notera a…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Jag vill tacka Bianca Mothe, Carla Oseroff, och Marie-France DelGuercio för att införa mig att immunologiska analyser och mus hantering. Arbetet i labbet GA Splitter finansieras av NIH bevilja 1-RO1-AI-073.558, GLRCE bevilja 1-U54-AI-057.153, and Bard USA-3829-06.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
1 mm glass beads   Biospec Products 11079110  
70 μm cell strainer   BD Falcon 352350  
96-well plate   Costar 3799  
Adjulite Incomplete Freund’s Adjuvant   Pacific Immunology n/a  
DMSO   Sigma D-5879  
FBS   GIBCO 16000-077  
FC 500 Flow Cytometer   Beckman Coulter n/a  
Kontes glass tissue grinder   Kontes 885300-0015  
Mini Beadbeater   Biospec Products n/a  
Needle   B-D 305175  
Parafilm “M”   Pechiney Plastic Packaging PM992  
Paraformaldehyde   Electron Microscopy Sciences 157-8  
PBS   GIBCO 10010-023  
PharmLyse lysing reagent   BD Biosciences 555899  
RPMI 1640   GIBCO 11875-093  
Syringe   B-D 309602  
Vybrant CFSE Kit   Invitrogen (Molecular Probes) V12883  

References

  1. Blattman, J. N., Wherry, E. J., Ha, S. J., van der Most, R. G., Ahmed, R. Impact of epitope escape on PD-1 expression and CD8 T-cell exhaustion during chronic infection. J Virol. 83 (9), 4386-4394 (2009).
  2. Jenkins, M. R., Tsun, A., Stinchcombe, J. C., Griffiths, G. M. The strength of T cell receptor signal controls the polarization of cytotoxic machinery to the immunological synapse. Immunity. 31 (4), 621-631 (2009).
  3. Ingulli, E. Tracing tolerance and immunity in vivo by CFSE-labeling of administered cells. Methods Mol Biol. 380, 365-376 (2007).
  4. Durward, M. A., Harms, J., Magnani, D. M., Eskra, L., Splitter, G. A. Discordant Brucella melitensis antigens yield cognate CD8+ T cells in vivo. Infect Immun. 78 (1), 168-176 (2010).
  5. Lyons, A. B., Parish, C. R. Determination of lymphocyte division by flow cytometry. J Immunol Methods. 171 (1), 131-137 (1994).
  6. Weston, S. A., Parish, C. R. New fluorescent dyes for lymphocyte migration studies. Analysis by flow cytometry and fluorescence microscopy. J Immunol Methods. 133 (1), 87-97 (1990).
  7. Akondy, R. S. The yellow fever virus vaccine induces a broad and polyfunctional human memory CD8+ T cell response. J Immunol. 183 (12), 7919-7930 (2009).
  8. Wallace, P. K. Tracking antigen-driven responses by flow cytometry: monitoring proliferation by dye dilution. Cytometry A. 73 (11), 1019-1034 (2008).
  9. Labadi, A., Balogh, P. Differential preferences in serosal homing and distribution of peritoneal B-cell subsets revealed by in situ CFSE labeling. Int Immunol. 21 (9), 1047-1056 (2009).
  10. Suffner, J. Dendritic cells support homeostatic expansion of Foxp3+ regulatory T cells in Foxp3.LuciDTR mice. J Immunol. 184 (4), 1810-1820 .

Play Video

Citer Cet Article
Durward, M., Harms, J., Splitter, G. Antigen Specific In Vivo Killing Assay using CFSE Labeled Target Cells. J. Vis. Exp. (45), e2250, doi:10.3791/2250 (2010).

View Video