Summary

تحديد وتحليل الأسلاف محمر ماوس باستخدام CD71/TER119 التدفق cytometric الفحص

Published: August 05, 2011
doi:

Summary

وهناك طريقة التدفق cytometric لتحديد وتحليل الجزيئي للتمايز في مرحلة معينة الأسلاف محمر الفئران والسلائف ، ومباشرة في طازجة تحصد الماوس نخاع العظم والطحال أو الكبد الجنين. في مقايسة يعتمد على سطح الخلية علامات CD71 ، Ter119 ، وحجم الخلية.

Abstract

دراسة تكون الكريات الحمر يهدف إلى فهم الكيفية التي تتشكل الخلايا الحمراء من الأسلاف في وقت سابق للدم ومحمر. على وجه التحديد ، وينظم معدل تكوين الخلايا الحمراء التي إرثروبويتين هرمون (EPO) ، التي يتم تشغيلها بواسطة التوليف نقص الأكسجة الأنسجة. وثمة تهديد لائق نتائج الأوكسجين في الأنسجة من الزيادة السريعة في المكتب ، والقيادة زيادة في معدل الكريات الحمر ، وهي عملية تعرف باسم الاجهاد استجابة الكريات الحمر. الزيادة الناتجة في عدد خلايا الدم الحمراء المنتشرة يحسن نسيج تسليم الأوكسجين. فعال الاجهاد استجابة الكريات الحمر وبالتالي حاسمة بالنسبة لبقاء والتعافي من الظروف الفسيولوجية والمرضية مثل علو شاهق ، وفقر الدم ، والنزف ، والعلاج الكيميائي أو زرع الخلايا الجذعية.

الفأر هو مفتاح نموذجا لدراسة تكون الكريات الحمر وردها الإجهاد. تكون الكريات الحمر الماوس النهائي (للبالغين من نوع) يأخذ مكان في كبد الجنين بين أيام الجنينية 12.5 و 15.5 ، في الطحال حديثي الولادة ، والكبار في الطحال ونخاع العظام. الطرق التقليدية لتحديد الأسلاف محمر في الأنسجة تعتمد على قدرة هذه الخلايا أن يؤدي إلى نشوء مستعمرات الخلايا الحمراء في وسائل الاعلام عندما مطلي شبه الصلبة المحتوية على المكتب. ويتم تحديد ذريتها السلائف محمر على أساس معايير شكلية. أيا من هذه الأساليب الكلاسيكية تسمح بالوصول إلى أعداد كبيرة من الخلايا محمر تمايز في مرحلة محددة للدراسة الجزيئية. نقدم هنا طريقة تدفق cytometric لتحديد ودراسة التمايز المرحلة الخاصة الأسلاف محمر والسلائف ، ومباشرة في سياق نسيج الماوس معزولة حديثا. في مقايسة يعتمد على علامات سطح الخلية CD71 ، Ter119 ، وعلى تدفق cytometric المعلمة 'إلى الأمام مبعثر" ، والتي هي وظيفة من حجم الخلية. يمكن استخدام مقايسة CD71/Ter119 لدراسة الأسلاف محمر خلال استجابتها لإجهاد الكريات الحمر في الجسم الحي ، على سبيل المثال ، أو فقر الدم في الفئران الفئران الموجودة في ظروف انخفاض الأكسجين. ويمكن أيضا أن تستخدم لدراسة الأسلاف محمر مباشرة في أنسجة الفئران المعدلة وراثيا أو الأجنة ، بغية تقييم الدور المحدد للمسار الجزيئية تكون الكريات الحمر في تعديل.

Protocol

1. حصاد الأنسجة إعداد أنابيب تحتوي على 2-5 العازلة مل تلطيخ الباردة (الفوسفات مخزنة المالحة (PBS) مع جيش صرب البوسنة وأضاف 0.2 ٪ والجلوكوز 5mM). إبقاء الأنابيب على الجليد قبل الحصاد الأنسجة. اعدام ا?…

Discussion

منهجية تدفق cytometric التحقيق في وقت واحد يسمح لأي وظيفة الخلوية التي قد يتم الكشف عن الأجسام المضادة مع مضان ، مترافق محددة أو يجند ، بما في ذلك علامات سطح الخلية ، والتعبير من البروتين ، وبقاء الخلية ، مما يشير إلى الخلية باستخدام الفوسفات محددة الأجسام المضادة (3)

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

نشكر التدفق الخلوي UMass الأساسية : ريتشارد Konz ، Giehl تيد غوسلين باربرا ، قو أوجدتها وKrupoch تامي. وقد تم تمويل هذا العمل من قبل المعاهد الوطنية للصحة / NHLBI RO1 HL084168 (MS) ، والمعاهد الوطنية للصحة CA – T32 130807 (JRS). كما استخدمت الموارد الأساسية التي تدعمها أبحاث الغدد الصماء السكري DK32520 منح المركز.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number
Fas-biotin BD Pharmingen 554256
Streptavidin-APC Molecular Probes S868
40 μm sterile cell strainer Fisherbrand 22363547
Polystyrene round-bottom tubes for FACS staining BD Falcon 352008
U-bottom 96 well plate BD Falcon 353910
ChromePure Rabbit IgG Jackson ImmunoResearch 015-000-003
CD71-FITC (stock 0.5mg/ml) BD-Biosciences 553266
Ter119-PE (stock 0.2mg/ml) BD-Biosciences 553673
7AAD BD-Biosciences 559925
DAPI powder Roche 236276
FITC Rat Anti-Mouse CD41 MWReg30 BD Pharmingen 553848
FITC Rat Anti-Mouse CD45R/B220 RA3-6B2 BD Pharmingen 553087
FITC Rat Anti-Mouse CD411b/Mac-1 M1/70 BD Pharmingen 557396
FITC Rat Anti-Mouse Ly-6G and Ly-6C (Gr-1) RB6-8C5 BD Pharmingen 553126
FITC Hamster Anti-Mouse CD3e 145-2C11 BD Pharmingen 553061
APC BrdU Flow kit BD Pharmingen 557892
Annexin V-biotin BD Pharmingen 556418

References

  1. Liu, Y. Suppression of Fas-FasL coexpression by erythropoietin mediates erythroblast expansion during the erythropoietic stress response in. 108, 123-133 (2006).
  2. Socolovsky, M. Negative Autoregulation by FAS Mediates Robust Fetal Erythropoiesis. PLoS Biol. 5, e252-e252 (2007).
  3. Krutzik, P. O., Hale, M. B., Nolan, G. P. Characterization of the murine immunological signaling network with phosphospecific flow cytometry. J Immunol. 175, 2366-2373 (2005).
  4. Socolovsky, M. Ineffective erythropoiesis in Stat5a(-/-)5b(-/-) mice due to decreased survival of early erythroblasts. Blood. 98, 3261-3273 (2001).
  5. Guihard, S. The MAPK ERK1 is a negative regulator of the adult steady-state splenic erythropoiesis. Blood. 115, 3686-3694 (2010).
  6. Yu, X. An erythroid chaperone that facilitates folding of alpha-globin subunits for hemoglobin synthesis. J Clin Invest. 117, 1856-1865 (2007).
  7. Chen, M. L. Erythroid dysplasia, megaloblastic anemia, and impaired lymphopoiesis arising from mitochondrial dysfunction. Blood. 114, 4045-4053 (2009).
  8. Chen, K. Resolving the distinct stages in erythroid differentiation based on dynamic changes in membrane protein expression during erythropoiesis. Proc Natl Acad Sci U S A. 106, 17413-17418 (2009).
  9. McGrath, K. E., Bushnell, T. P., Palis, J. Multispectral imaging of hematopoietic cells: where flow meets morphology. J Immunol Methods. 336, 91-97 (2008).
  10. Pop, R. A key commitment step in erythropoiesis is synchronized with the cell cycle clock through mutual inhibition between PU.1 and S-phase progression. PLoS Biol. 8, (2010).
  11. Borsook, H., Lingrel, J. B., Scaro, J. L., Millette, R. L. Synthesis of haemoglobin in relation to the maturation of erythroid cells. Nature. 196, 347-350 (1962).
check_url/fr/2809?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Koulnis, M., Pop, R., Porpiglia, E., Shearstone, J. R., Hidalgo, D., Socolovsky, M. Identification and Analysis of Mouse Erythroid Progenitors using the CD71/TER119 Flow-cytometric Assay. J. Vis. Exp. (54), e2809, doi:10.3791/2809 (2011).

View Video