En 3D-system for dyrking menneskelig artikulære chondrocytes i høye nivåer av synovial væske er beskrevet. Leddvæsken reflekterer den mest naturlige mikromiljøet for leddbrusk, og kan lett innhentes og lagres. Dette systemet kan dermed brukes til å studere brusk regenerering og for screening legemiddelselskap for behandling av leddgikt.
Brusk ødeleggelse er et sentralt patologisk trekk ved slitasjegikt, en ledende årsak til uførhet i USA. Brusk i den voksne ikke regenerere ikke veldig effektivt in vivo, og som et resultat fører slitasjegikt til irreversible brusk tap og er ledsaget av kroniske smerter og immobilitet 1,2. Brusk tissue engineering tilbyr lovende potensial til å fornye og gjenopprette vev funksjon. Denne teknologien innebærer vanligvis seeding chondrocytes i naturlige eller syntetiske stillaser og dyrking den resulterende 3D konstruere en balansert medium over en tidsperiode med et mål av engineering en biokjemisk og biomekanisk modne vev som kan transplanteres inn i en defekt område in vivo 3-6 . Oppnå en optimal forutsetning for chondrocyttransplantasjon vekst og matrise deponering er avgjørende for å lykkes med brusk tissue engineering.
I de innfødte felles cavity, brusk på arktiskeular overflaten av benet er badet i synovialvæsken. Dette klar og tyktflytende væske gir næringsstoffer til avascular leddbrusk og inneholder vekstfaktorer, cytokiner og enzymer som er viktige for chondrocyttransplantasjon metabolisme 7,8. Videre letter synovialvæsken lav friksjon bevegelse mellom cartilaginous flater hovedsakelig gjennom sekresjon to viktige komponenter, hyaluronan og lubricin 9 10. I kontrast er vevet utviklet brusk oftest dyrket i kunstige medier. Mens disse mediene er trolig i stand til å gi mer definerte vilkår for å studere chondrocyttransplantasjon stoffskifte, synovialvæsken mest presist reflekterer naturen som artikulære chondrocytes bor i.
Har faktisk leddvæsken fordelen av å være lett å få tak og lagre, og kan ofte fornyes jevnlig av kroppen. Flere grupper har supplert den kulturen medium med synovialvæsken i voksende menneske, storfe, kanin og hund chondrocytes, men for det meste brukes kun lave nivåer av leddvæske (under 20%) 11-25. Mens kylling, hest og menneske chondrocytes har vært dyrket i medium med høyere prosentandel av synovialvæsken, ble disse kultur systemene todimensjonal 26-28. Her presenterer vi vår metode for dyrking menneskelig artikulære chondrocytes i et 3D-system med en høy andel av leddvæske (opp til 100%) over en periode på 21 dager. Ved å gjøre det, overvant vi et stort hinder presentert av den høye viskositeten på synovialvæsken. Dette systemet gir mulighet for å studere menneskelig chondrocytes i synovialvæsken i et 3D miljø, som kan videre kombineres med to andre viktige faktorer (oksygen spenninger og mekanisk belastning) 29,30 som utgjør det naturlige miljø for brusk å etterligne de naturlige miljø for brusk vekst. Videre kan dette systemet også brukes for å analysere synovialvæsken aktivitet på chondrocytes og gi en plattform for utviklingbrusk regenerering teknologier og behandlingsalternativer for leddgikt.
I denne rapporten har vi utviklet en metode som gjør det mulig for kulturen av menneskelig artikulære chondrocytes i et 3D miljø i medium som inneholder høye konsentrasjoner av menneskelig leddvæske. Synovialvæsken er en av de viktigste komponentene som utgjør det naturlige miljøet i det felles hulrom, hvor artikulær chondrocytes bor. Imidlertid har viskositet synovialvæsken vært en stor utfordring for tredimensjonale langsiktig dyrking av chondrocytes. For å overvinne utfordringen med å opprettholde selv n…
The authors have nothing to disclose.
Vi ønsker å takke Robin Nye (Tufts Medical Center), Tomoya Uchimura og Dana Cairns (Tufts University) for å gi hjelp til synovialvæsken lagring og sentrifugering. Dette arbeidet ble finansiert av NIH (1R01AR059106-01A1) for LZ
Table of specific reagents and equipment:
Name of the Reagent | Company | Catalogue Number | Comments |
---|---|---|---|
Alginate (Alginic Acid sodium salt) | Sigma | A2158-250G | 2.4% solution stored at 40°C |
Calcium Chloride Dihydrate, Granular | J.T. Baker | A19339 | |
Chondrogenic Growth media | Lonza | CC-3156 (base media) | |
CC-4409 (supplement) | |||
Chondrogenic Differentiation Media | Lonza | CC-3226 (base media) | |
CC-4408 (supplement) | |||
Human articular chondrocytes | Lonza | CC-2550 | |
Dapi (4′,6-Diamidino-2-phenylindole dihydrochloride) | Sigma-Aldrich | D9542 | |
RNeasy mini kit (for RNA extraction) | Qiagen | 74104 | |
PCR reagents: SYBR-green | Quanta | 95053-500 | |
12 ml syringe | Tyco-Kendall-Monoject | 512852 | |
22-Gague Hypodermic Needle | Tyco-Kendall-Monoject | 8881 | |
Microscope | Olympus | IX71 | |
Platform rocker | Thermoscientific thermolyne | Vari-mix | |
Primers sequences | |||
Collagen IIa-forward | 5′-TTC ATC CCA CCC TCT CAC AGT-3′ | ||
Collagen IIa-reverse | 5′-CCTCTGCCTTGACCCGAA-3′ | ||
MMP13-forward | 5′-TGT GCC CTT CTT CAC ACA GAC ACT-3′ | ||
MMP13-reverse | 5′-GAG AGC AGA CTT TGA GTC ATT GCC-3′ | ||
Caspase 3-forward | 5′-TCA TTA TTC AGG CCT GCC GTG GTA-3′ | ||
Caspase 3-reverse | 5′-TGG ATG AAC CAG GAG CCA TCC TTT -3′ |