Summary

En 3D System for dyrking Menneskelig artikulære chondrocytes i synovialvæsken

Published: January 31, 2012
doi:

Summary

En 3D-system for dyrking menneskelig artikulære chondrocytes i høye nivåer av synovial væske er beskrevet. Leddvæsken reflekterer den mest naturlige mikromiljøet for leddbrusk, og kan lett innhentes og lagres. Dette systemet kan dermed brukes til å studere brusk regenerering og for screening legemiddelselskap for behandling av leddgikt.

Abstract

Brusk ødeleggelse er et sentralt patologisk trekk ved slitasjegikt, en ledende årsak til uførhet i USA. Brusk i den voksne ikke regenerere ikke veldig effektivt in vivo, og som et resultat fører slitasjegikt til irreversible brusk tap og er ledsaget av kroniske smerter og immobilitet 1,2. Brusk tissue engineering tilbyr lovende potensial til å fornye og gjenopprette vev funksjon. Denne teknologien innebærer vanligvis seeding chondrocytes i naturlige eller syntetiske stillaser og dyrking den resulterende 3D ​​konstruere en balansert medium over en tidsperiode med et mål av engineering en biokjemisk og biomekanisk modne vev som kan transplanteres inn i en defekt område in vivo 3-6 . Oppnå en optimal forutsetning for chondrocyttransplantasjon vekst og matrise deponering er avgjørende for å lykkes med brusk tissue engineering.

I de innfødte felles cavity, brusk på arktiskeular overflaten av benet er badet i synovialvæsken. Dette klar og tyktflytende væske gir næringsstoffer til avascular leddbrusk og inneholder vekstfaktorer, cytokiner og enzymer som er viktige for chondrocyttransplantasjon metabolisme 7,8. Videre letter synovialvæsken lav friksjon bevegelse mellom cartilaginous flater hovedsakelig gjennom sekresjon to viktige komponenter, hyaluronan og lubricin 9 10. I kontrast er vevet utviklet brusk oftest dyrket i kunstige medier. Mens disse mediene er trolig i stand til å gi mer definerte vilkår for å studere chondrocyttransplantasjon stoffskifte, synovialvæsken mest presist reflekterer naturen som artikulære chondrocytes bor i.

Har faktisk leddvæsken fordelen av å være lett å få tak og lagre, og kan ofte fornyes jevnlig av kroppen. Flere grupper har supplert den kulturen medium med synovialvæsken i voksende menneske, storfe, kanin og hund chondrocytes, men for det meste brukes kun lave nivåer av leddvæske (under 20%) 11-25. Mens kylling, hest og menneske chondrocytes har vært dyrket i medium med høyere prosentandel av synovialvæsken, ble disse kultur systemene todimensjonal 26-28. Her presenterer vi vår metode for dyrking menneskelig artikulære chondrocytes i et 3D-system med en høy andel av leddvæske (opp til 100%) over en periode på 21 dager. Ved å gjøre det, overvant vi et stort hinder presentert av den høye viskositeten på synovialvæsken. Dette systemet gir mulighet for å studere menneskelig chondrocytes i synovialvæsken i et 3D miljø, som kan videre kombineres med to andre viktige faktorer (oksygen spenninger og mekanisk belastning) 29,30 som utgjør det naturlige miljø for brusk å etterligne de naturlige miljø for brusk vekst. Videre kan dette systemet også brukes for å analysere synovialvæsken aktivitet på chondrocytes og gi en plattform for utviklingbrusk regenerering teknologier og behandlingsalternativer for leddgikt.

Protocol

En 3D-system for dyrking human artikulære chondrocytes i synovialvæsken I dette arbeidet, innkapslet vi menneskelige artikulære chondrocytes i alginat perler ved hjelp av en modifisert produksjon-foreslo innkapsling protokoll (Lonza, og 31). Ved hjelp av disse 3D-konstruksjoner, har vi utviklet et system for dyrking celler i en kultur medium som inneholder varierte prosenter av menneskelig synovialvæsken og har vurdert disse 3D konstruksjoner for brusk genuttrykk. <p class…

Discussion

I denne rapporten har vi utviklet en metode som gjør det mulig for kulturen av menneskelig artikulære chondrocytes i et 3D miljø i medium som inneholder høye konsentrasjoner av menneskelig leddvæske. Synovialvæsken er en av de viktigste komponentene som utgjør det naturlige miljøet i det felles hulrom, hvor artikulær chondrocytes bor. Imidlertid har viskositet synovialvæsken vært en stor utfordring for tredimensjonale langsiktig dyrking av chondrocytes. For å overvinne utfordringen med å opprettholde selv n…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi ønsker å takke Robin Nye (Tufts Medical Center), Tomoya Uchimura og Dana Cairns (Tufts University) for å gi hjelp til synovialvæsken lagring og sentrifugering. Dette arbeidet ble finansiert av NIH (1R01AR059106-01A1) for LZ

Materials

Table of specific reagents and equipment:

Name of the Reagent Company Catalogue Number Comments
Alginate (Alginic Acid sodium salt) Sigma A2158-250G 2.4% solution stored at 40°C
Calcium Chloride Dihydrate, Granular J.T. Baker A19339
Chondrogenic Growth media Lonza CC-3156 (base media)  
CC-4409 (supplement)
Chondrogenic Differentiation Media Lonza CC-3226 (base media)  
CC-4408 (supplement)
Human articular chondrocytes Lonza CC-2550
Dapi (4′,6-Diamidino-2-phenylindole dihydrochloride) Sigma-Aldrich D9542
RNeasy mini kit (for RNA extraction) Qiagen 74104
PCR reagents: SYBR-green Quanta 95053-500
12 ml syringe Tyco-Kendall-Monoject 512852
22-Gague Hypodermic Needle Tyco-Kendall-Monoject 8881
Microscope Olympus IX71
Platform rocker Thermoscientific thermolyne Vari-mix
       
Primers sequences
Collagen IIa-forward 5′-TTC ATC CCA CCC TCT CAC AGT-3′
Collagen IIa-reverse 5′-CCTCTGCCTTGACCCGAA-3′
MMP13-forward 5′-TGT GCC CTT CTT CAC ACA GAC ACT-3′
MMP13-reverse 5′-GAG AGC AGA CTT TGA GTC ATT GCC-3′
Caspase 3-forward 5′-TCA TTA TTC AGG CCT GCC GTG GTA-3′
Caspase 3-reverse 5′-TGG ATG AAC CAG GAG CCA TCC TTT -3′

References

  1. Centers for Disease Control and P. Projected state-specific increases in self-reported doctor-diagnosed arthritis and arthritis-attributable activity limitations–United States, 2005-2030. MMWR. Morb. Mortal. Wkly. Rep. 56, 423-425 (2007).
  2. Theis, K. A., Murphy, L., Hootman, J. M., Helmick, C. G., Yelin, E. Prevalence and correlates of arthritis-attributable work limitation in the US population among persons ages 18-64: 2002 National Health Interview Survey Data. Arthritis Rheum. 57, 355-363 (2007).
  3. Chung, C., Burdick, J. A. Engineering cartilage tissue. Adv. Drug. Deliv. Rev. 60, 243-262 (2008).
  4. Glowacki, J. In vitro engineering of cartilage. J. Rehabil. Res. Dev. 37, 171-177 (2000).
  5. Chokalingam, K., Hunter, S. A., Gooch, C. 3D-In vitro Effects of Compression and Time in Culture on Aggregate Modulus and on Gene Expression and Protein content of Collagen Type II in Murine Chondrocytes. Tissue Eng. Part A. , (2009).
  6. Butler, D. L., Goldstein, S. A., Guilak, F. Functional tissue engineering: the role of biomechanics. J. Biomech. Eng. 122, 570-575 (2000).
  7. Goldring, M. B., Goldring, S. R. Osteoarthritis. J. Cell. Physiol. 213, 626-634 (2007).
  8. Zvaifler, N. J., Firestein, G. S. Cytokines in chronic inflammatory synovitis. Scand. J. Rheumatol. Suppl. 76, 203-210 (1988).
  9. Rhee, D. K., Marcelino, J., Baker, M. The secreted glycoprotein lubricin protects cartilage surfaces and inhibits synovial cell overgrowth. J. Clin. Invest. 115, 622-631 (2005).
  10. Campo, G. M., Avenoso, A., Nastasi, G. Hyaluronan reduces inflammation in experimental arthritis by modulating TLR-2 and TLR-4 cartilage expression. Biochim. Biophys. Acta. , (2011).
  11. van de Lest, C. H., van den Hoogen, B. M., van Weeren, P. R. Loading-induced changes in synovial fluid affect cartilage metabolism. Biorheology. 37, 45-55 (2000).
  12. Saxne, T., Heinegard, D., Wollheim, F. A. Human arthritic synovial fluid influences proteoglycan biosynthesis and degradation in organ culture of bovine nasal cartilage. Coll. Relat. Res. 8, 233-247 (1988).
  13. Lee, D. A., Salih, V., Stockton, E. F., Stanton, J. S., Bentley, G. Effect of normal synovial fluid on the metabolism of articular chondrocytes in vitro. Clin. Orthop. Relat. Res. , 228-238 (1997).
  14. Schalkwijk, J., Joosten, L. A., van den Berg, W. B., van de Putte, L. B. Chondrocyte nonresponsiveness to insulin-like growth factor 1 in experimental arthritis. Arthritis Rheum. 32, 894-900 (1989).
  15. Schalkwijk, J., Joosten, L. A., van den Berg, W. B., van Wyk, J. J., van de Putte, L. B. Insulin-like growth factor stimulation of chondrocyte proteoglycan synthesis by human synovial fluid. Arthritis Rheum. 32, 66-71 (1989).
  16. Joosten, L. A., Schalkwijk, J., van den Berg, W. B., van de Putte, L. B. Chondrocyte unresponsiveness to insulin-like growth factor-1. A novel pathogenetic mechanisms for cartilage destruction in experimental arthritis. Agents Actions. 26, 193-195 (1989).
  17. Schuerwegh, A. J., Dombrecht, E. J., Stevens, W. J. Synovial fluid and peripheral blood immune complexes of patients with rheumatoid arthritis induce apoptosis in cytokine-activated chondrocytes. Rheumatol. Int. 27, 901-909 (2007).
  18. Hegewald, A. A., Ringe, J., Bartel, J. Hyaluronic acid and autologous synovial fluid induce chondrogenic differentiation of equine mesenchymal stem cells: a preliminary study. Tissue Cell. 36, 431-438 (2004).
  19. Xu, Q. R., Dong, Y. H., Chen, S. L., Bao, C. D., Du, H. Degeneration of normal articular cartilage induced by late phase osteoarthritic synovial fluid in beagle dogs. Tissue Cell. 41, 13-22 (2009).
  20. Kruger, J. P., Endres, M., Neumann, K., Haupl, T., Erggelet, C., Kaps, C. Chondrogenic differentiation of human subchondral progenitor cells is impaired by rheumatoid arthritis synovial fluid. J. Orthop. Res. 28, 819-827 (2010).
  21. Steinhagen, J., Bruns, J., Niggemeyer, O. Perfusion culture system: Synovial fibroblasts modulate articular chondrocyte matrix synthesis in vitro. Tissue Cell. 42, 151-157 (2010).
  22. Yang, K. G., Saris, D. B., Verbout, A. J., Creemers, L. B., Dhert, W. J. The effect of synovial fluid from injured knee joints on in vitro chondrogenesis. Tissue Eng. 12, 2957-2964 (2006).
  23. Skoog, V., Widenfalk, B., Ohlsen, L., Wasteson, A. The effect of growth factors and synovial fluid on chondrogenesis in perichondrium. Scand. J. Plast. Reconstr. Surg. Hand. Surg.. 24, 89-95 (1990).
  24. Nuver-Zwart, I., Schalkwijk, J., Joosten, L. A., van den Berg, W. B., van de Putte, L. B. Effects of synovial fluid and synovial fluid cells on chondrocyte metabolism in short term tissue culture. J. Rheumatol. 15, 210-216 (1988).
  25. Beekhuizen, M., Bastiaansen-Jenniskens, Y. M., Koevoet, W. Osteoarthritic synovial tissue inhibits proteoglycan production in human osteoarthritic cartilage; Establishment and characterisation of a long-term coculture. Arthritis Rheum. , (2011).
  26. Rodrigo, J. J., Steadman, J. R., Syftestad, G., Benton, H., Silliman, J. Effects of human knee synovial fluid on chondrogenesis in vitro. Am. J. Knee. Surg. 8, 124-129 (1995).
  27. van den Hoogen, B. M., van de Lest, C. H., van Weeren, P. R. Loading-induced changes in synovial fluid affect cartilage metabolism. Br. J. Rheumatol. 37, 671-676 (1998).
  28. Webb, G. R., Westacott, C. I., Elson, C. J. Osteoarthritic synovial fluid and synovium supernatants up-regulate tumor necrosis factor receptors on human articular chondrocytes. Osteoarthritis Cartilage. 6, 167-176 (1998).
  29. Kook, S. H., Son, Y. O., Lee, K. Y. Hypoxia affects positively the proliferation of bovine satellite cells and their myogenic differentiation through up-regulation of MyoD. Cell. Biol. Int. 32, 871-878 (2008).
  30. Knobloch, T. J., Madhavan, S., Nam, J., Agarwal, S., Agarwal, S. Regulation of chondrocytic gene expression by biomechanical signals. Crit. Rev. Eukaryot. Gene. Expr. 18, 139-150 (2008).
  31. Guo, J. F., Jourdian, G. W., MacCallum, D. K. Culture and growth characteristics of chondrocytes encapsulated in alginate beads. Connect. Tissue. Res. 19, 277-297 (1989).
  32. Toegel, S., Huang, W., Piana, C. Selection of reliable reference genes for qPCR studies on chondroprotective action. BMC. Mol. Biol. 8, 13-13 (2007).
  33. Lin, Z., Fitzgerald, J. B., Xu, J. Gene expression profiles of human chondrocytes during passaged monolayer cultivation. J. Orthop. Res. 26, 1230-1237 (2008).
  34. Goessler, U. R., Bieback, K., Bugert, P. Human chondrocytes differentially express matrix modulators during in vitro expansion for tissue engineering. Int. J. Mol. Med. 16, 509-515 (2005).
  35. Anat, J. . 121, 107-118 (1976).

Play Video

Citer Cet Article
Brand, J. A., McAlindon, T. E., Zeng, L. A 3D System for Culturing Human Articular Chondrocytes in Synovial Fluid. J. Vis. Exp. (59), e3587, doi:10.3791/3587 (2012).

View Video