Summary

Kultivierung humaner neuronaler Vorläuferzellen in einer 3-dimensionalen Self-Montage Peptide Hydrogel

Published: January 11, 2012
doi:

Summary

Hier beschreiben wir die Verwendung eines sich selbst organisierenden 3-dimensionalen Gerüst zur Kultur humaner neuraler Vorläuferzellen. Wir präsentieren ein Protokoll, um die Zellen aus dem Gerüste Freisetzung analysiert anschließend zB mittels Durchflusszytometrie werden. Dieses Protokoll kann zu anderen Zelltypen angepasst werden, um detaillierte mechanistisch Studien durchzuführen.

Abstract

Der Einfluss von 3-dimensionalen (3D) Gerüste auf Wachstum, Proliferation und schließlich neuronale Differenzierung ist von großem Interesse, um neue Methoden für die zellbasierte und standardisierte Therapien bei neurologischen Erkrankungen oder neurodegenerativen Erkrankungen zu finden. 3D-Strukturen sollen ein Umfeld viel näher liefern, um die in vivo Situation als 2D-Kulturen. Im Rahmen der regenerativen Medizin, hält die Kombination von Biomaterial Gerüste mit neuralen Stamm-und Vorläuferzellen großes Versprechen als therapeutisches Werkzeug. 1-5 Kultur-Systemen emuliert eine dreidimensionale Umgebung haben gezeigt, dass die Proliferation und Differenzierung in verschiedene Arten von Stammzellen beeinflussen und Vorläuferzellen. Hierbei wird die Bildung und Funktionalisierung der 3D-Mikroumgebung wichtig für das Überleben und das Schicksal der eingebetteten Zellen zu bestimmen. 6-8 Hier haben wir PuraMatrix 9,10 (RADA16, PM), ein Peptid Hydrogel Gerüst,die ist gut beschrieben und verwendet werden, um den Einfluss einer 3D-Umgebung auf verschiedenen Zelltypen zu untersuchen. 7,11-14 PuraMatrix kann leicht angepasst werden und das synthetische Herstellung der Nano-Fasern bietet eine 3D-Kultursystem von hoher Zuverlässigkeit, die wird zusätzlich xeno-frei.

Vor kurzem haben wir den Einfluss der PM-Konzentration auf die Bildung des Gerüstes untersucht. 13 In dieser Studie verwendeten Konzentrationen von PM hatten einen direkten Einfluss auf die Bildung der 3D-Struktur, die durch Rasterkraftmikroskopie nachgewiesen wurde. Eine anschließende Analyse der Überleben und die Differenzierung der hNPCs zeigte einen Einfluss der verwendeten Konzentrationen von PM auf das Schicksal der eingebetteten Zellen. Allerdings zeigt die Analyse des Überlebens oder der neuronalen Differenzierung durch Immunfluoreszenztechniken besitzen einige Hürden. Um sich verlässliche Daten, muss man die Gesamtzahl der Zellen in einer Matrix zu bestimmen, um die relative Anzahl von z. B. erhalten. neuronalen Zellen durch βIII-Tubulin markiert. Diese Voraussetzungen eine Technik, um die Gerüste in allen 3-Dimensionen mit einem konfokalen Mikroskop oder eine vergleichbare Technik wie Fluoreszenz-Mikroskope in der Lage, Z-Stapel von der Probe zu analysieren. Des Weiteren wird diese Art der Analyse ist extrem zeitaufwendig.

Hier zeigen wir eine Methode, um Zellen aus dem 3D-Gerüste für die spätere Analyse zB mittels Durchflusszytometrie freizugeben. In diesem Protokoll menschliche neurale Vorläuferzellen (hNPCs) der ReNcell VM-Zelllinie (Millipore USA) wurden kultiviert und differenziert in 3D-Gerüsten aus PuraMatrix (PM) oder PuraMatrix mit Laminin (PML) ergänzt. In unseren Händen ein PM-Konzentration von 0,25% war optimal für die Kultivierung der Zellen 13, aber die Konzentration auf andere Zelltypen können angepasst werden. 12 Die freigesetzten Zellen können zB immunzytochemische Studien eingesetzt werden und anschließend mittels Durchflusszytometrie analysiert. Dies beschleunigt die Analyse und more über die gewonnenen Daten beruhen auf einer breiteren Basis, die Verbesserung der Zuverlässigkeit der Daten.

Protocol

1. Teil 1: Culture of hNPCs in PuraMatrix Im Vorfeld der Erstellung eines Gerüsts mit einem PuraMatrix Konzentration von 0,25% ohne Laminin man braucht, um die folgenden Lösungen vorbereitet Bereiten Sie eine Lösung mit 20% Saccharose und eine Lösung mit 10% Saccharose in sterilem destilliertem Wasser gelöst. Für Lösung 1 Mix 120 ul der 20% Saccharose-Lösung mit 120 ul destilliertem Wasser in einem 1,5 ml konischen Röhrchen. Für Lösung 2 mischen 60 ul der PuraMatrix L?…

Discussion

Der Einsatz von 3D-Gerüsten bietet die Möglichkeit, die Entwicklung verschiedener Zelltypen in einer Zellkultur Situation näher an die in vivo Situation zu studieren. Doch in Bezug auf die Analyse von zB neuronale Differenzierung oder funktionelle Untersuchungen muss man einige Hürden überwinden, um zuverlässige Daten für zB Quantifizierung von Zelltypen zu gewinnen.

Hier beschreiben wir die Kultur des hNPCs in der Peptid-Hydrogel-basierte Gerüst PuraMatrix und anschließend…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Die Autoren bedanken sich bei Norman Krüger für seine ausgezeichneten technischen Support danken.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
PuraMatrix peptide hydrogel BD Bioscience 354250  
Mouse laminin I Cultrex 400-2009090  
Sucrose Sigma S9378-1KG  
Normal goat serum Dako X0907  
Triton X 100 Roth 3051.3  
PBS Dulbecco Biochrom AG L 1825  
HBSS Gibco 14170-088 Hanks’ Balanced Salt Solution 1X
βIII-tubulin antibody Santa Cruz Sc-51670 Mouse, monoclonal, 1:500
Alexa Fluor 488 Invitrogen A 11029 Goat α mouse, 1:1000
Alexa Fluor 568 Invitrogen A 11031 Goat α mouse, 1:1000
Alexa Fluor 647 Invitrogen A 21235 Goat α mouse, 1:1000
Mowiol 4-88 Reagent Calbiochem 475904  
Dabco Aldrich D2,780-2 1,4-Diazabicyclo[2.2.2]octane 98%
Cell strainer BD Biosciences 352350 70 μm pore size
Saponin Merck 7695  
Trypsin/ EDTA GIBCO 25300-054  
Benzonase 250 U/μl Merck 1.01654.0001  
Trypsin Inhibitor Sigma T6522 (500 mg)  
20% HSA Octapharma Human-Albumin Kabi 20%  

References

  1. Zhang, S., Gelain, F., Zhao, X. Designer self-assembling peptide nanofiber scaffolds for 3D tissue cell cultures. Semin. Cancer. Biol. 15, 413-420 (2005).
  2. Gelain, F., Horii, A., Zhang, S. Designer self-assembling peptide scaffolds for 3-d tissue cell cultures and regenerative medicine. Macromol. Biosci. 7, 544-551 (2007).
  3. Blow, N. Cell Culture: building a better matrix. Nature. Methods. 6 (8), 619-622 (2009).
  4. Hauser, C. A., Zhang, S. Designer self-assembling peptide nanofiber biological materials. Chem. Soc. Rev. 39, 2780-2790 (2010).
  5. Teng, Y. D. Functional recovery following traumatic spinal cord injury mediated by a unique polymer scaffold seeded with neural stem cells. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 99, 3024-3029 (2002).
  6. Silva, G. A. Selective differentiation of neural progenitor cells by high-epitope density nanofibers. Science. 303, 1352-1355 (2004).
  7. Gelain, F., Bottai, D., Vescovi, A., Zhang, S. Designer self-assembling peptide nanofiber scaffolds for adult mouse neural stem cell 3-dimensional cultures. PLoS. ONE. 1, e119-e119 (2006).
  8. Taraballi, F. Glycine-spacers influence functional motifs exposure and self-assembling propensity of functionalized substrates tailored for neural stem cell cultures. Front Neuroengineering. 3, 1-1 (2010).
  9. Zhang, S., Holmes, T., Lockshin, C., Rich, A. Spontaneous assembly of a self-complementary oligopeptide to form a stable macroscopic membrane. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 90, 3334-3338 (1993).
  10. Zhang, S. Self-complementary oligopeptide matrices support mammalian cell attachment. Biomaterials. 16, 1385-1393 (1995).
  11. Horii, A., Wang, X., Gelain, F., Zhang, S. Biological designer self-assembling peptide nanofiber scaffolds significantly enhance osteoblast proliferation, differentiation and 3-D migration. PLoS. ONE. 2, e190-e190 (2007).
  12. Thonhoff, J. R., Lou, D. I., Jordan, P. M., Zhao, X., Wu, P. Compatibility of human fetal neural stem cells with hydrogel biomaterials in vitro. Brain. Res. 1187, 42-51 (2008).
  13. Ortinau, S. Effect of 3D-scaffold formation on differentiation and survival in human neural progenitor cells. Biomed. Eng. Online. 9, 70-70 (2010).
  14. Abu-Yousif, A. O., Rizvi, I., Evans, C. L., Celli, J. P., Hasan, T. PuraMatrix Encapsulation of Cancer Cells. J. Vis. Exp. (34), e1692-e1692 (2009).
  15. Morgan, P. J. Protection of neurons derived from human neural progenitor cells by veratridine. Neuroreport. 20, 1225-1229 (2009).
  16. Giese, A. K. Erythropoietin and the effect of oxygen during proliferation and differentiation of human neural progenitor cells. BMC. Cell Biol. 11, 94-94 (2010).
  17. Schmöle, A. C. Novel indolylmaleimide acts as GSK-3beta inhibitor in human neural progenitor cells. Bioorg. Med. Chem. 18, 6785-6795 (2010).
  18. PuraMatrix, B. D. Peptide Hydrogel. Guidelines for Use. Catalog No 354250, (2006).
check_url/fr/3830?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Liedmann, A., Rolfs, A., Frech, M. J. Cultivation of Human Neural Progenitor Cells in a 3-dimensional Self-assembling Peptide Hydrogel. J. Vis. Exp. (59), e3830, doi:10.3791/3830 (2012).

View Video