Summary

Phänotypische und funktionelle Charakterisierung von Endothelial Kolonie-bildenden Zellen aus humanem Nabelschnurblut

Published: April 13, 2012
doi:

Summary

Endothelial Kolonie-bildenden Zellen (ECFCs) im Umlauf Endothelzellen mit robusten klonale proliferative Potential zeigen, dass intrinsische<em> In-vivo-</em> Gefäß bildet Fähigkeit. Phänotypische und funktionelle Charakterisierung von Auswuchs Endothelzellen aus CB abgeleitet sind wichtig zur Identifizierung und Isolierung<em> Bona fide</em> ECFCs für mögliche klinische Anwendung bei der Reparatur von beschädigtem Gewebe.

Abstract

Langjährige Blick auf die Bildung neuer Blutgefäße durch Angiogenese, Vaskulogenese und Arteriogenese wurden vor kurzem 1 bewertet. Die Anwesenheit von zirkulierenden endothelialen Vorläuferzellen (EPCs) wurden erstmals im erwachsenen menschlichen peripheren Blut von Asahara et al. In 1997 2 bringt eine Infusion von neuen Hypothesen und Strategien für die vaskuläre Regeneration und Reparatur. EPCs sind selten, aber normale Bestandteile des zirkulierenden Blutes, dass die Heimat von Seiten der Bildung von Blutgefäßen oder vaskuläre Remodeling, und erleichtern Sie entweder postnatalen Vaskulogenese, Angiogenese, Arteriogenese oder zum größten Teil über parakrine Stimulation der bestehenden Gefäßwand-Zellen abgeleitet sind 3. Keine spezifische Marker zu identifizieren, einen EPC identifiziert wurde, und zur Zeit der Zustand des Feldes ist es, dass zahlreiche Zelltypen, einschließlich proangiogenen hämatopoetischen Stamm-und Vorläuferzellen zu verstehen, zirkulierenden angiogenen Zellen, Tie2 + Monozyten, myeloischen Vorläuferzellen cells, Tumor-assoziierte Makrophagen und aktivierten Makrophagen M2 bei der Stimulierung der angiogenen Prozess in verschiedenen präklinischen Tiermodellsystemen und beim Menschen in zahlreichen Erkrankungen 4, 5 teilnehmen. Endothelial Kolonie-bildenden Zellen (ECFCs) sind selten zirkulierenden lebensfähigen Endothelzellen durch robuste klonale Proliferationspotential, sekundäre und tertiäre Koloniebildungsfähigkeit auf Wiederplattieren und Fähigkeit zur Bildung von Gefäßen in vivo nach der Transplantation intrinsischen in immundefizienten Mäusen 6-8, dadurch gekennzeichnet. Während ECFCs wurden erfolgreich aus dem peripheren Blut von gesunden erwachsenen Probanden, Nabelschnurblut (CB) von gesunden Neugeborenen und Gefäßwand von zahlreichen menschlichen arteriellen und venösen Gefäße 6-9 isoliert, besitzt CB die höchste Frequenz von 7 ECFCs dass Display die robusteste klonale proliferative Potenzial und Form robuste und funktionelle Blutgefäße in vivo 8, 10-13. Während die AbleitungECFC aus adulten peripheren Blut wurde 14, 15 vorgestellt, hier haben wir die Methoden für die Ableitung beschreiben, Klonen, Expansion und in vitro sowie in vivo Charakterisierung ECFCs aus der humanen Nabelschnur CB.

Protocol

Reagenzien und Lösungen EMG-2-Medien (Lonza, Cat. No CC-3162 mit EBM-2 Basalmedium und EGM-2 SingleQuot Kit Ergänzungen, und Wachstumsfaktoren) EBM-2 (Lonza, Cat No. Cc-3156) mit dem gesamten SingleQuot Kit ergänzt und Wachstumsfaktoren ergänzt (Lonza, Cat No. Cc-4176), 10% (v / v) fötales Rinderserum (FBS) und 1% (v / v) Penicillin (10000 U / ml) / Streptomycin (10.000 g / ml) / Amphotericin (25 ug / ml). Speichern Sie bis zu 1 Monat bei 4 ° C Empfohlen EGM-2 B…

Discussion

Phänotypische und funktionelle Charakterisierung von putativen endothelialen Vorläuferzellen ist wichtig, die bona fide ECFCs die in der Lage klonal und seriell Re-Beschichtung in der Kultur zu identifizieren sind und führen zu langlebigen und funktionellen implantierbare Blutgefäße in vivo. Menschlichem Nabelschnurblut ist mit ECFCs und der Konzentration dieser zirkulierenden Zellen sinkt mit dem Altern oder Krankheiten 10 angereichert. Neuere Studien legen nahe, dass ECFC kann eine wi…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dr. Yoder ist Berater für EndGenitor Technologies, Inc. und Mitglied des Board of Rimedion Technologies, Inc.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number
Heparin Sodium Injection, USP APP Pharmaceuticals 504031
Ficoll-Pague Amersham Biosciences 17-1440-03
Mixing cannula Maersk Medical 500.11.012
EGM-2 Lonza CC-3162
Defined FBS Hyclone SH30070.03
TrypLE express Gibco 12605
Rat type I collagen BD Biosciences 354236
Matrigel BD Biosciences 356234
FcR Block Miltenyi Biotech 130-059-901
hCD31, FITC conjugated BD Pharmingen 555445
hCD45, FITC conjugated BD Pharmingen 555482
hCD14, FITC conjugated BD Pharmingen 555397
hCD144, PE conjugated eBioscience 12-1449-80
hCD146, PE conjugated BD Pharmingen 550315
hCD105, PE conjugated Invitrogen MHCD10504
Ms IgG1,k antibody, FITC conjugated BD Pharmingen 555748
Ms IgG1,k antibody, PE conjugated BD Pharmingen 559320
Ms IgG2a,k antibody, FITC conjugated BD Pharmingen 555573
Anti-human CD31 Dako clone JC70/A
Anti-mouse CD31 BD Pharmingen 553370
0.22-μm vacuum filtration system Millipore SCGPU05RE
Glacial acetic acid, 17.4N Fisher A38-500
Antibiotic-Antimycotic Invitrogen 15240-062
Fetal bovine serum (FBS) Hyclone SH30070.03
IHC Zinc Fixative BD Biosciences 550523
Sytox green reagent Invitrogen S33025
Cloning cylinders, sterile Fisher Scientific 07-907-10

References

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Citer Cet Article
Prasain, N., Meador, J. L., Yoder, M. C. Phenotypic and Functional Characterization of Endothelial Colony Forming Cells Derived from Human Umbilical Cord Blood. J. Vis. Exp. (62), e3872, doi:10.3791/3872 (2012).

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