Summary

A Step-by-step Metode for Rekonstituering av en ABC Transporter inn Nanodisc lipidpartikler

Published: August 31, 2012
doi:

Summary

Nanodiscs er små discoid partikler som inneholder membran proteiner i en liten oppdatering av fosfolipid bilayer. Vi tilbyr en visuell protokoll som viser trinn-for-trinn innlemmelse av MalFGK2 transporter inn en plate.

Abstract

Den nanodisc er en skiveformede partikkel (~ 10-12 nm store) som felle membran proteiner i en liten oppdatering av fosfolipid bilayer. Den nanodisc er et spesielt attraktivt alternativ for å studere membran proteiner, spesielt i sammenheng av ligand-reseptor interaksjoner. Metoden utviklet av Sligar og kolleger er basert på amfipatiske egenskapene til en konstruert svært en-helical scaffoldprotein avledet fra apolipoprotein A1. De hydrofobe ansikter av scaffoldprotein samhandle med fettsyreasylgrupper side-kjeder av lipid bilayer mens polarområdene ansikt vandige miljø. Analyser av membran proteiner i nanodiscs har betydelige fordeler fremfor liposom fordi partiklene er små, homogen og vannoppløselig. I tillegg kan biokjemiske og biofysiske metoder normalt reservert til løselige proteiner bli brukt, og fra begge sider av membranen. I denne visuelle protokollen, presenterer vi en steg-for-steg omdanning av et godt karakteriserte d bakteriell ABC transportør, den mannlige-MalFGK 2 kompleks. Dannelsen av platen er en selv-oppsettingen som avhenger hydrofobe interaksjoner finner sted under den progressive fjerning av vaskemiddel. Vi beskriver de grunnleggende trinnene og vi markere betydningen av å velge en riktig protein-til-lipid forholdet for å begrense dannelsen av aggregater og større polydisperse liposom-lignende partikler. Enkelt kvalitetskontroller eksempel gelfiltrering kromatografi, innfødt gelelektroforese og dynamisk lysspredning spektroskopi sikre at platene har blitt riktig rekonstituert.

Protocol

Samlet Rekonstituering Process Tilberedning Prosessen starter ved å blande membranen scaffoldprotein (MSP) med rensede MalFGK 2 kompleks i nærvær av vaskemiddel-solubilisert fosfolipider. Trinnet er etterfulgt av langsom fjerning av vaskemiddel ved en adsorbent polystyren materiale kalt Bio-perler eller Amberlite (figur 1). Den automatiske forsamlingen prosessen skjer mest sannsynlig på grunn av apolare interaksjoner mellom de hydrofobe fosfolipider, den Ma…

Discussion

Vi beskriver en enkel prosedyre for rekonstituering av maltose transporter inn nanodiscs. Transportøren er ATPasen aktiv og samspillet med oppløselig bindingspartner MALE kan gjenskapes (figur 3). Den vellykkede rekonstituering av transportøren i nanodiscs åpne veien for ytterligere biofysiske og biokjemiske analyser. Av særlig interesse vil være systematisk analyse av Malk ATPase og maltose transport aktivitet i vaskemiddel, liposome og nanodiscs. ABC transportører endrer konformasjonen under tr…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av den kanadiske Institute of Health Research. CSC ble finansiert av en postdoktorstilling fra Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada. FD er en Tier II Canada Research Chair.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Amicon Ultra-4 50K centrifugal filter Millipore UFC805008 Follow manufacturer’s protocol for proper use
Bio-Beads SM-2 Adsorbent Bio-Rad 152-3920
E. coli total lipids Avanti Polar Lipids 100500C Dissolved in chloroform, handle as appropriate for an organic solvent
Ni sepharose HP resin GE Healthcare 17-5268-01
Phosphorous standard solution Sigma-Aldrich P3869
pMSP1D1 Addgene 20061
Superdex 200 HR 10/300 GE Healthcare 17-5172-01
Table I. Specific reagents.
Name Composition Comments
DDM stock 10% w/v DDM Resuspend in milliQ water and store at -20 °C
MalFGK2 stock 1-2 mg/ml
50 mM Tris-HCl, pH7.9
100 mM NaCl
10% v/v glycerol
0.03% w/v DDM
Store at -70 °C after purification
MSP stock 10-15 mg/ml
50 mM Tris-HCl, pH7.9
100 mM NaCl
10% v/v glycerol
Store at -70 °C after purification in <1 ml aliquots and avoid excessive freeze/thaw cycles
Phospholipid stock 5 nM E. coli total lipids
0.5% w/v (10 mM) DDM
50 mM Tris-HCl, pH 7.9
50 mM NaCl
Store at 4 °C for 1 week
TS buffer 50 mM Tris-HCl, pH 7.9
50 mM NaCl
Store at 4 °C
TSG10 buffer 50 mM Tris-HCl, pH7.9
100 mM NaCl
10% v/v glycerol
Store at 4 °C
TSG20 buffer 50 mM Tris-HCl, pH8
100 mM NaCl
20% v/v glycerol
Store at 4 °C
TSGD buffer 50 mM Tris-HCl, pH7.9
100 mM NaCl
10% v/v glycerol
0.03% w/v DDM
Store at 4 °C and add DDM just before use

Table II. Solution recipes.

References

  1. Denisov, I. G., Ginkova, Y. V., Lazarides, A. A., Sligar, S. G. Directed self-assembly of monodisperse phospholipid bilayer Nanodiscs with controlled size. J. Am. Chem. Soc. 126, 3477-3487 (2004).
  2. Boldog, T., Grimme, S., Li, M., Sligar, S. G., Hazelbauer, G. L. Nanodiscs separate chemoreceptor oligomeric states and reveal their signaling properties. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 103, 11509-11514 (2006).
  3. Bass, B. J., Denisov, I. G., Sligar, S. G. Homotropic cooperativity of monomeric cytochrome P450 3A4 in a nanoscale native bilayer environment. J. Biol. Chem. 282, 7066-7076 (2007).
  4. Alami, M., Dalal, K., Lelj-Garolla, B., Sligar, S. G., Duong, F. Nanodiscs unravel the interaction between the SecYEG channel and its cytosolic partner SecA. EMBO J. 26, 1995-2004 (2007).
  5. Mi, L. -. Z., Grey, M. J., Nishida, N., Walz, T., Lu, C., Springer, T. A. Functional and structural stability of the epidermal growth factor receptor in detergent micelles and phospholipid nanodiscs. Biochimie. 47, 10314-10323 (2008).
  6. Schägger, H., Cramer, W. A., von Jagow, G. Analysis of molecular masses and oligomeric states of protein complexes by blue native electrophoresis and isolation of membrane protein complexes by two-dimensional native electrophoresis. Anal. Biochem. 217, 220-230 (1994).
  7. Dalal, K., Duong, F. Reconstitution of the SecY translocon in Nanodiscs. Methods Mol. Biol. 619, 145-156 (2010).
  8. Lanzetta, P. A., Alvarez, L. J., Reinach, P. S., Candia, O. A. An improved assay for nanomole amounts of inorganic phosphate. Anal. Biochem. 100, 95-97 (1979).
  9. Davidson, A. L., Dassa, E., Orelle, C., Chen, J. Structure, function and evolution of bacterial ATP-binding cassette systems. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 72, 317-364 (2008).
  10. Bordignon, E., Grote, M., Schneider, E. The maltose ATP-binding cassette transporter in the 21st century-towards a structural dynamic perspective on its mode of action. Mol. Microbiol. 77, 1354-1366 (2010).
  11. Alvarez, F. J., Orelle, C., Davidson, A. L. Functional reconstitution of an ABC transporter for use in electron paramagnetic resonance spectroscopy. J. Am. Chem. Soc. 132, 9513-9515 (2010).
  12. Ritchie, T. K., Grinkova, Y. V., Bayburt, T. H., Denisov, I. G., Zolnerciks, J. K., Atkins, W. M., Sligar, S. G. Reconstitution of membrane proteins in phospholipid bilayer Nanodiscs. Methods Enzymol. 464, 211-231 (2009).
  13. Glück, J. M., Koenig, B. W., Willbold, D. Nanodiscs allow the use of integral membrane proteins as analytes in surface plasmon resonance studies. Anal. Biochem. 408, 46-52 (2011).
  14. Wan, C. -. P. L., Chiu, M. H., Wu, X., Lee, S. K., Prenner, E. J., Weers, P. M. M. Apolipoprotein-induced conversion of phosphatidylcholine bilayer vesicles into nanodisks. Biochim. Biophys. Acta (BBA). 1808, 606-613 (2011).
  15. Nath, A., Trexler, A. J., Koo, P. K., Miranker, A. D., Atkins, W. M., Rhoades, E. Single-molecule fluorescence spectroscopy using phospholipid bilayer Nanodiscs. Methods Enzymol. 472, 89-117 (2010).
  16. Denisov, I. G., Sligar, S. G. Cytochromes P450 in Nanodiscs. Biochim. Biophys. Acta. 1814, 223-229 (2011).
  17. Zhang, X. X., Chan, C. S., Bao, H., Fang, Y., Foster, L. J., Duong, F. Nanodiscs and SILAC-based mass spectrometry to identify a membrane protein interactome. J. Proteome Res. , (2011).
check_url/fr/3910?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Bao, H., Duong, F., Chan, C. S. A Step-by-step Method for the Reconstitution of an ABC Transporter into Nanodisc Lipid Particles. J. Vis. Exp. (66), e3910, doi:10.3791/3910 (2012).

View Video