Summary

Genetisk studie av Axon Regeneration med dyrkede Voksen røttene ganglion Neurons

Published: August 17, 2012
doi:

Summary

En<em> In vitro</em> Modell for genetisk undersøkelse av axon gjenfødelse bruke dyrkede voksne mus dorsal root ganglion nevroner er beskrevet. Metoden omfatter en re-suspension/re-plating skritt å tillate axon ettervekst fra nevroner som gjennomgår genetisk manipulasjon. Denne tilnærmingen er særlig nyttig for tap-av-funksjon studier av axon foryngelse med RNAi-baserte protein knockdown.

Abstract

Det er velkjent at modne nevroner i sentralnervesystemet (CNS) ikke kan regenerere sine aksoner etter skader på grunn av redusert egenverdi evne til å støtte axon vekst og et fiendtlig miljø i modne CNS 1,2. I motsetning, modne nevroner i det perifere nervesystemet (PNS) regenerere lett etter skader 3. Voksen dorsal root ganglion (DRG) nevronene er godt kjent for å regenerere robust etter perifere nerveskader. Hver DRG neuron vokser en axon fra cellen soma, som grener seg i to aksonale grener: en perifer gren innervating perifere mål og en sentral avdelingskontorer strekker i ryggmargen. Skade av DRG perifere aksoner resulterer i betydelig axon gjenfødelse, mens sentrale axoner i ryggmargen regenerere dårlig etter skaden. Men hvis perifere aksonal skade inntreffer før den ryggmargsskade (en prosess kalt condition lesjon), regenerering av sentrale axoner er greatly forbedret fire. Videre de sentrale axons av DRG nevroner som deler samme fiendtlig miljø som synkende corticospinal axoner i ryggmargen. Sammen blir det en hypotese at de molekylære mekanismene som styrer axon regenerering av voksne DRG nevroner kan bli brukt til å forbedre CNS axon gjenfødelse. Som et resultat, er voksne DRG nevroner nå mye brukt som et modellsystem for å studere regenerative axon vekst 5-7.

Her beskriver vi en metode for voksen DRG nervecellen kultur som kan brukes til genetisk undersøkelse av axon regenerering in vitro. I denne modellen voksen DRG nevroner er genetisk manipulert via electroporation-mediert genet transfeksjon 6,8. Ved transfecting nevroner med DNA plasmid eller si / shRNA, gjør denne tilnærmingen både gevinst-og tap-av-funksjon eksperimenter for å undersøke hvilken rolle en gen-of-interesse i axon vekst fra voksne DRG nerveceller. Når nevroner tilført med Si / shRNA, er målrettet endogene proteinetvanligvis oppbrukt etter 3-4 dager i kultur, der tiden robust axon veksten allerede har skjedd, noe som gjør tap-av-funksjon studier mindre effektiv. For å løse dette problemet, omfatter metoden beskrevet her en re-suspensjon og re-plating steg etter transfeksjon, som lar axons å re-vokse fra nevroner i fravær av den målrettede protein. Til slutt gir vi et eksempel på bruk denne in vitro modell for å studere rollen til en axon gjenfødelse-assosiert genet, c-Jun, i formidling axon vekst fra voksen DRG nerveceller 9.

Protocol

1. Utarbeidelse av Dekkglass, Kultur Medium, og fordøyelse enzymer Den 12-mm runde # 1 glass Dekkglass brukes for nevronale kultur. De Dekkglass rengjøres med 10% HCl natten etterfulgt av ultralyd vask med destillert og avionisert vann for 3 ganger (20 min / tid). De rensede Dekkglass lagres i 70% etanol for fremtidig bruk. Før hver eksperimenter, Dekkglass er luft tørket og plassert inn i kulturen plate. Å belegge de tørkede Dekkglass, 100 mL av belegg løsning som inneholder 100 mikrogram / …

Discussion

Voksen DRG nevroner regenerere sine axoner robust etter perifer nerveskade in vivo og in vitro, og dermed gi et nyttig system for å studere axon regenerering hos voksne dyr. In vitro kultur av voksne DRG nevroner er blitt en mye brukt metode for å undersøke de molekylære mekanismer som axon gjenfødelse er regulert. In vitro prosedyren for dyrking voksne mus DRG nevroner presenteres her muliggjør rask og effektiv genetisk studie av regenerativ axon vekst. Det re-suspensjon og re-…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet med tilskudd til FZ fra NIH (R01NS064288) og Craig H. Neilsen Foundation.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number
MEM Invitrogen 11090-081
Poly-D-Lysine hydrobromide Sigma -Aldrich P6407
Laminin Invitrogen 23017-015
5-fluoro-2-deoxyuridine Sigma -Aldrich F0503
Uridine Sigma -Aldrich U3003
Collagenase A Roche 10103578001
TrypLE Express Invitrogen 12604-013
Fetal bovine serum Invitrogen 10270-098
Penicillin-streptomycin (100X) Invitrogen 15140-122
GlutaMAX-I (100X) Invitrogen 35050-038
Glass coverslips (#1) Electron Microscopy sciences 72196-12
24 well cell culture plate Becton Dickinson 35-3047
1X PBS Mediatech 21-040-CV
Sterile, distilled and deionized water Mediatech 25-055-CV
Nucleofector and electroporation Kits for Mouse Neurons Lonza VPG-1001
ON-TARGETplus siRNA against c-Jun Dharmacon L-043776
Anti–βIII tubulin antibody (Tuj-1) Covance MMS-435P
ProLong Gold Antifade mounting solution Invitrogen P36930

References

  1. Yiu, G., He, Z. Glial inhibition of CNS axon regeneration. Nat. Rev. Neurosci. 7, 617-627 (2006).
  2. Liu, K., Tedeschi, A., Park, K. K., He, Z. Neuronal Intrinsic Mechanisms of Axon Regeneration. Annu. Rev. Neurosci. , (2010).
  3. Zhou, F. Q., Snider, W. D. Intracellular control of developmental and regenerative axon growth. Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 361, 1575-1592 (2006).
  4. Neumann, S., Woolf, C. J. Regeneration of dorsal column fibers into and beyond the lesion site following adult spinal cord injury. Neuron. 23, 83-91 (1999).
  5. Liu, R. Y., Snider, W. D. Different signaling pathways mediate regenerative versus developmental sensory axon growth. J. Neurosci. 21, RC164 (2001).
  6. Zhou, F. Q. Neurotrophins support regenerative axon assembly over CSPGs by an ECM-integrin-independent mechanism. J. Cell Sci. 119, 2787-2796 (2006).
  7. Zou, H., Ho, C., Wong, K., Tessier-Lavigne, M. Axotomy-induced Smad1 activation promotes axonal growth in adult sensory neurons. J. Neurosci. 29, 7116-7123 (2009).
  8. Zhou, F. Q., Zhou, J., Dedhar, S., Wu, Y. H., Snider, W. D. NGF-induced axon growth is mediated by localized inactivation of GSK-3beta and functions of the microtubule plus end binding protein APC. Neuron. 42, 897-912 (2004).
  9. Saijilafu, E. M., Hur, F. Q., Zhou, Genetic dissection of axon regeneration via in vivo electroporation of adult mouse sensory neurons. Nat. Commun. 2, 543-54 (2011).
  10. Costigan, M. Replicate high-density rat genome oligonucleotide microarrays reveal hundreds of regulated genes in the dorsal root ganglion after peripheral nerve injury. BMC Neurosci. 3, 16 (2002).
  11. Xiao, H. S. Identification of gene expression profile of dorsal root ganglion in the rat peripheral axotomy model of neuropathic pain. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 99, 8360-8365 (2002).
  12. Michaelevski, I. Signaling to transcription networks in the neuronal retrograde injury response. Sci. Signal. 3, ra53 (2010).
check_url/fr/4141?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Saijilafu, Zhou, F. Genetic Study of Axon Regeneration with Cultured Adult Dorsal Root Ganglion Neurons. J. Vis. Exp. (66), e4141, doi:10.3791/4141 (2012).

View Video