Summary

حذوفات الجينات في الجينوم على نطاق<em> العقدية الدم</em> من جانب PCR إنتاجية عالية

Published: November 23, 2012
doi:

Summary

وقد أنشئت فعال الجينوم على نطاق طفرة جين واحد باستخدام طريقة<em> العقدية الدم</em> كما كائن النموذج. وقد حققت هذه الطريقة من خلال تقارير إتمام المشروعات الإنتاجية العالية المؤتلف والتحولات.

Abstract

ينقول الطفرات والحذف واحد الجينات طريقتان في تطبيق خروج المغلوب الجينات في الجينوم على نطاق 1،2 البكتيريا. على الرغم من الطفرات ينقول أقل مضيعة للوقت، أقل تكلفة، ولا تحتاج إلى استكمال المعلومات الجينوم، وهناك نوعان نقاط الضعف في هذه الطريقة: (1) إمكانية حدوث طفرات متباينة في مكتبة متحولة مختلطة مكافحة يختار المسوخ مع تقليل المنافسة؛ و (2) إمكانية تعطيل الجين جزئية حيث الجينات لا تفقد وظيفتها بالكامل بعد ادراج ينقول. قد أحادية الجين التحليل حذف التعويض عن العيوب المرتبطة الطفرات ينقول. لتحسين كفاءة الجينوم على نطاق حذف جين واحد، ونحن نحاول اقامة تقنية عالية الإنتاجية للالجينوم على نطاق حذف جين واحد باستخدام الدم العقدية باعتباره النموذج الحي. كل حذف الجينات في بناء S. تم تصميم الجينوم الدم لتشمل 1-KB المنبع من الجينات المستهدفة، الجين APHA-3، ترميز البروتين المقاومة الكانامايسين، و1-KB المصب من الجينات المستهدفة. ثلاث مجموعات من الاشعال F1/R1، F2/R2، وF3/R3، على التوالي، فقد تم تصميم وتجميعها في شكل لوحة 96-PCR-جيدا لالتكبير من تلك المكونات الثلاثة للحذف كل بناء. الاشعال R1 وتحتوي على 25-F3 بي بي متواليات التي هي مكملة لمناطق الجينات-3 APHA في نهاية ال 5 هم '. يتم تنفيذ A التضخيم PCR كبيرة الحجم من الجين-3 APHA مرة واحدة لخلق بنيات كل واحد حذف الجينات. في البداية تم استبعاد المروج من الجينات APHA-3 للتقليل من التأثير المحتمل للكاسيت الكاناميسين القطبية. لإنشاء بنيات حذف الجينات، يتم تنفيذ عالية الإنتاجية PCR التضخيم والتنقية في شكل لوحة 96-أيضا. وسيبذل الخطية AMPLICON PCR لكل المؤتلف حذف الجينات من خلال ردود الفعل PCR 4 عالية الدقة باستخدام البلمرة DNA. وexpon الأوليةential مرحلة نمو S. تستكمل الدم مثقف في مرق تود هيويت مع 2.5٪ يستخدم المصل الحصان المعطل لزيادة الكفاءة لتحويل PCR-المؤتلف يبني. تحت هذا الشرط، وتصل إلى 20٪ من S. يمكن أن تتحول الخلايا الدم ~ 50 نانوغرام باستخدام الحمض النووي. استنادا إلى هذا النهج، في نهاية المطاف تم الحصول على 2048 المسوخ مع احد الجينات الحذف من الجينات في 2270 S. الواردة الدم باستثناء 4 ORFs الجينات بالكامل داخل ORFs أخرى في S. الدم SK36 و 218 الجينات الأساسية المحتملة. هذه التقنية على خلق بنيات حذف الجين هو إنتاجية عالية، ويمكن أن تكون سهلة الاستخدام في الجينوم على نطاق الحذف جين واحد لأي بكتيريا التحويلية.

Protocol

1. تصميم التمهيدي تم تصميم الاشعال باستخدام البرامج النصية في المنزل استنادا إلى S. الدم تسلسل الجينوم SK36. تم تصميم ثلاث مجموعات من الاشعال، F1/R1، F2/R2، وF3/R3 لتضخيم التسلسل-1 ك المنبع من الجين المستهدف، وترميز الجين <em…

Representative Results

بعد التضخيم PCR باستخدام بادئات F1 وR1، وF3 وR3، حوالي 1-KB المنبع والمصب لكل S. تم الحصول على الدم في شكل الجينات 96-حسنا، على التوالي (الشكل 2A). لدينا في ظل ظروف PCR وباستخدام البادئات المصممة، تم تضخيم منتج معين من S. الدم في كل الحمض النووي الجيني تفاعل P…

Discussion

للتقليل من الآثار المحتملة القطبية من استبدال جين واحد مع جين المضادات الحيوية المستهدفة الخارجية على الجينات المجاورة، وتتخذ خطوتين بينما التمهيدي الأولي تصميم. بالنسبة لمعظم الجينات حذف، فقد تم تصميم R1 الاشعال وF3 لحذف المنطقة الترميز من 6 BP بعد كودون بدء الغليان ?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وأيد هذا العمل من المنح المقدمة R01DE018138 من المعاهد الوطنية للصحة (PX) وجزئيا من جامعة فرجينيا كومنولث الرئاسية بحوث برنامج الحوافز (PRIP) 144602-3 (PX). نشكر الدكاترة. ليو تشن، Yuetan ضو وانغ شياو جينغ لمساعدة في بناء المسوخ الجينوم واسعة. ونشكر أيضا مرفق الأساسية DNA في جامعة فرجينيا كومنولث لتسلسل الحمض النووي.

Materials

Names Company Catalog# Comments (optional)
Primer F2 Integrated DNA Technologies TGACTAACTAGGAGGAATAAATG
GCTAAAATGAGAATAT
Primer R2 ibid CATTATTCCCTCCAGGTACTAAAA
CAATTCATCCAGT
Primer F2p ibid GATAAACCCAGCGAACCATTTGA
Primer P1 ibid GCTTATATACCTTAGCAGGAGACA
Primer P2 ibid GTATGACATTGCCTTCTGCGTCC
Primer 5′ end_R1_seq ibid GCCATTTATTCCTCCTAGTTAGTCA
Primer 5′ end_F3_seq ibid GTTTTAGTACCTGGAGGGAATAATG
Primer 5′ end_R1p_seq ibid CCTCAAATGGTTCGCTGGGTTTATC
CSP Synprep Sequence:NH2-DLRGVPNPWGWIFGR-COOH
DNA Polymerase Invitrogen 11304-102 Platinum Taq DNA Polymerase High Fidelity
EcoRI New England Biolabs Inc R0101S Restriction enzyme
Agar American Bioanalytical AB01185
Agarose Promega V3125
BHI BD Biosciences 237500 Brain Heart Infusion
Horse serum Fisher Scientific SH3007403 Horse serum
Km Fisher Scientific BP906-5 Kanamycin
TH broth BD Biosciences 249240 Todd Hewitt broth
PureLink 96 Invitrogen K310096 PureLink 96 PCR purification kit
QIAquick Qiagen 28106 QIAquick PCR purification kit
Filter Corning 431117 0.22 μm polystyrene filter
Anoxomat System Mart Microbiology b.v. Anoxomat Mark II
Benchtop centrifuge Thermo Scientific 75004377 Sorvall Legend RT Plus microplate rotor
Gel Documentation UVP LLC BioDoc-It 210
Incubator Fisher Scientific 11-690-625D Isotemp
Labnet’s Gel XL Labnet E0160 Labnet’s Gel XL
Microcentrifuge Eppendorf 22621408 Microcentrifuge 5415 R
Multichannel pipettes Thermo Scientfic 4661040, 4661020 Finnpipette F1
Thermal Cycler Applied Biosystems Inc. N805-0200 GeneAmp PCR system 9700

References

  1. Sassetti, C. M., Boyd, D. H., Rubin, E. J. Genes required for mycobacterial growth defined by high density mutagenesis. Mol. Microbiol. 48, 77-84 (2003).
  2. Kobayashi, K., et al. Essential Bacillus subtilis genes. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 100, 4678-4683 (2003).
  3. Trieu-Cuot, P., Courvalin, P. Nucleotide sequence of the Streptococcus faecalis plasmid gene encoding the 3’5″-aminoglycoside phosphotransferase type III. Gene. 23, 331-341 (1983).
  4. Paik, S., et al. Identification of virulence determinants for endocarditis in Streptococcus sanguinis by signature-tagged mutagenesis. Infect. Immun. 73, 6064-6074 (2005).
  5. Lukomski, S., et al. Nonpolar inactivation of the hypervariable streptococcal inhibitor of complement gene (sic) in serotype M1 Streptococcus pyogenes significantly decreases mouse mucosal colonization. Infect. Immun. 68, 535-542 (2000).
  6. Baba, T., et al. Construction of Escherichia coli K-12 in-frame, single-gene knockout mutants: the Keio collection. Mol. Syst. Biol. 2, (2006).
  7. de Berardinis, V. A complete collection of single-gene deletion mutants of Acinetobacter baylyi ADP1. Mol. Syst. Biol. 4, 174 (2008).
  8. Rodriguez, A. M., et al. Physiological and molecular characterization of genetic competence in Streptococcus sanguinis. Mol. Oral. Microbiol. 26, 99-116 (2011).
  9. Perry, D., Kuramitsu, H. K. Genetic transformation of Streptococcus mutans Infect. Immun. 32, 1295-1297 (1981).
  10. Pakula, R., Walczak, W. On the nature of competence of transformable streptococci. J. Gen. Microbiol. 31, 125-133 (1963).
  11. Datsenko, K. A., Wanner, B. L. One-step inactivation of chromosomal genes in Escherichia coli K-12 using PCR products. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 97, 6640-6645 (2000).
  12. Xu, P., et al. Genome-wide essential gene identification in Streptococcus sanguinis. Sci. Rep. 1, (2011).

Play Video

Citer Cet Article
Ge, X., Xu, P. Genome-wide Gene Deletions in Streptococcus sanguinis by High Throughput PCR. J. Vis. Exp. (69), e4356, doi:10.3791/4356 (2012).

View Video