Detta protokoll möjliggör en direkt jämförelse mellan planktonisk och biofilmsbeständighet för en bakteriestam som kan bilda en biofilm in vitro med en 96-brunns mikrotiterplatta. Planktoniska bakterier eller biofilmsbakterier utsätts för seriella utspädningar av det antimikrobiella medlet. Livskraft analyseras genom tillväxt på agarplattor.
Detta protokoll möjliggör en direkt jämförelse mellan planktonisk och biofilmsresistens för en bakteriestam som kan bilda en biofilm in vitro. Bakterier vaccinerar sig i brunnarna på en 96-brunns mikrotiterplatta. När det gäller planktonisk analys tillsätts seriella utspädningar av det antimikrobiella medlet till bakteriella suspensioner. I biofilmstestet, när de väl har vaccinelats, lämnas bakterierna att bilda en biofilm under en viss tidsperiod. Obundna celler avlägsnas från brunnarna, mediet fylls på och seriella utspädningar av det antimikrobiella medlet läggs till. Efter exponering för det antimikrobiella medlet analyseras planktoniska celler för tillväxt. För biofilmsanalysen uppdateras mediet med färska medier som saknar det antimikrobiella medlet och biofilmscellerna lämnas att återhämta sig. Biofilmcellens livskraft analyseras efter återhämtningsperioden. MBC-P för det antimikrobiella medlet definieras som den lägsta koncentrationen av läkemedel som dödar cellerna i planktoniska kulturen. Däremot bestäms MBC-B för en stam genom att exponera förformade biofilmer för ökande koncentrationer av antimikrobiellt medel i 24 timmar. MBC-B definieras som den lägsta koncentrationen av antimikrobiellt medel som dödar cellerna i biofilmen.
Antibiotikaresistens analyser utvecklades ursprungligen för att analysera resistens av planktoniska (fri simning) kulturer av bakterier. Eftersom många bakteriella infektioner involverar biofilmer (ytanslutna celler) var vi intresserade av att utveckla en metod för att analysera biofilmsspecifik antibiotikaresistens. De flesta antibiotikaresistensanalyser är dock dåligt lämpade för att mäta biofilmsresistens. Att till exempel bestämma den minimala hämmande koncentrationen (MIC) är guldstandarden för bestämning av antibiotikaresistens hos planktoniska bakteriekulturer 1. Denna analys innebär att blanda en utspädd planktonisk kultur med en utspädningsserie av antibiotika. Koncentrationen av antibiotika som hämmar den synliga tillväxten av planktoniska celler är MIC. Eftersom denna analys förlitar sig på hämning av tillväxt, kan den per definition inte fungera med biofilmkulturer, vilket kräver att man undersöker cellernas antibiotikakänslighet i en pregrown biofilm. I stället för att mäta tillväxthämning bestämmer MBC-B-analysen som beskrivs här koncentrationen av antibiotika som dödar celler som redan finns i en biofilm. Således syftar denna analys till att efterlikna antibiotikabehandlingar av etablerade biofilminfektioner och ge en mer relevant bild av bakteriell antibiotikaresistens in vivo.
Eftersom biofilmer i allmänhet är mer antibiotikaresistenta än planktoniska kulturer 2-4 , var det nödvändigt att utforma en metod som direkt relaterar antibiotikaresistensen hos en biofilm till en planktonisk kultur. Ett annat mål med denna metod är således att direkt kunna jämföra nivån av antibiotikaresistens mellan planktoniska och biofilmsceller. MBC-P och MBC-B analyser som beskrivs här gör detta möjligt eftersom celler odlas under liknande förhållanden. Vi har använt denna metod för att studera flera gener som är viktiga för biofilmsspecifik antibiotikaresistens 5-8 .
Antibiotikaresistens i planktoniska celler definieras som en ökning av den minsta hämmande koncentrationen (MIC) av ett antibiotikum på grund av en permanent förändring i cellerna(t.ex. en mutation). De mekanismer för biofilmsspecifik resistens eller tolerans som hittills har identifierats är resultatet av uttrycket av vilda gener inom biofilmer. Således gäller den klassiska definitionen av resistens inte biofilmer. En annan uppsättning definitioner har dock presenterats: resistensmekanismer hindrar an…
The authors have nothing to disclose.
Författaren vill tacka Li Zhang, Xian-Zhi Li, Aaron Hinz och Clayton Hall för redaktionell hjälp med detta manuskript. Denna analys utvecklades ursprungligen i labbet av George O’Toole, Geisel School of Medicine vid Dartmouth. Forskning i Dr. Mahs labb stöds av bidrag från Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada och Cystic Fibrosis Canada.
1x M63 |
Prepare as a 5x M63 stock by dissolving 15g KH2PO4, 35g K2HPO4 and 10g (NH4)2SO4 in 1 L of water. This stock does not need to be autoclaved and can be stored at room temperature. Dilute 5x stock 1:5, autoclave, cool, then add the desired components. |
||
KH2PO4 |
Fisher |
P285-500 |
|
K2HPO4 |
Fisher |
P288-500 |
|
(NH4)2SO4 |
Sigma |
A5132 |
|
Magnesium sulfate |
Fisher |
M63-500 |
Add to 1 mM final concentration. Prepare as a 1 M stock in water and autoclave. |
Tobramycin |
Sigma |
Prepare 50 mg/m stock. Aliquot and store at –20°C. |
|
Arginine |
Sigma |
A5131 |
Add to 0.4% final concentration. Prepare as a 20% stock in water and filter sterilize. This alternative carbon/energy source can replace glucose and casamino acids |
96-well microtiter plates |
Corning |
3595 |
Sterile, flat-bottom, low evaporation |
Tranferpette (multichannel pipette) |
BrandTech |
2703610 |
8-channel, 20-200 μl |
Multiprong device |
Dan-Kar |
MC48 |
48 prongs fit into ½ of a 96-well microtiter plate |