Summary

تحليل Metabolomic من دماغ الفئران بواسطة عالية الدقة النووية الرنين المغناطيسي الطيفي مقتطفات من الأنسجة

Published: September 21, 2014
doi:

Summary

The neurochemistry of mammalian brain is changed in many neurological and systemic diseases. Characteristic profiles of cerebral metabolites can be efficiently obtained based on crude extracts of brain tissue. To this end, high-resolution NMR spectroscopy is employed, enabling detailed quantitative analysis of metabolite concentrations (metabolomics).

Abstract

Studies of gene expression on the RNA and protein levels have long been used to explore biological processes underlying disease. More recently, genomics and proteomics have been complemented by comprehensive quantitative analysis of the metabolite pool present in biological systems. This strategy, termed metabolomics, strives to provide a global characterization of the small-molecule complement involved in metabolism. While the genome and the proteome define the tasks cells can perform, the metabolome is part of the actual phenotype. Among the methods currently used in metabolomics, spectroscopic techniques are of special interest because they allow one to simultaneously analyze a large number of metabolites without prior selection for specific biochemical pathways, thus enabling a broad unbiased approach. Here, an optimized experimental protocol for metabolomic analysis by high-resolution NMR spectroscopy is presented, which is the method of choice for efficient quantification of tissue metabolites. Important strengths of this method are (i) the use of crude extracts, without the need to purify the sample and/or separate metabolites; (ii) the intrinsically quantitative nature of NMR, permitting quantitation of all metabolites represented by an NMR spectrum with one reference compound only; and (iii) the nondestructive nature of NMR enabling repeated use of the same sample for multiple measurements. The dynamic range of metabolite concentrations that can be covered is considerable due to the linear response of NMR signals, although metabolites occurring at extremely low concentrations may be difficult to detect. For the least abundant compounds, the highly sensitive mass spectrometry method may be advantageous although this technique requires more intricate sample preparation and quantification procedures than NMR spectroscopy. We present here an NMR protocol adjusted to rat brain analysis; however, the same protocol can be applied to other tissues with minor modifications.

Introduction

وقد استخدمت نماذج الفئران على نطاق واسع في أبحاث الدماغ 1. وقد تم التحقيق الارتباط الوراثي، النمط الظاهري في الماوس والفئران العقول من خلال دراسة التعبير الجيني في الحمض النووي الريبي و / أو مستويات البروتين من جهة، والظواهر المورفولوجية والوظيفية، الكهربية و / أو السلوكية على الآخرين 2-6. ومع ذلك، لنفهم تماما الآليات التي تربط بين النمط الظاهري إلى التركيب الوراثي، لا بد من التحقيق في الأحداث الجزيئية المصب التعبير بروتين، مثال. عملية التمثيل الغذائي للركائز البيوكيميائية التي تعمل على الانزيمات 7. هذا الشرط أدى، على مدى 10 إلى 15 سنة الماضية، إلى نهضة أبحاث الأيض في العديد من فروع علم الأحياء 8،9. بينما غالبا ما تركز الدراسات الأيضية الكلاسيكية على تفاصيل مسارات محددة، ويهدف النهج الجديد metabolomic نحو تحقيق شامل للوضع العالمي الأيض الأنسجة قيد النظر.واحد نتيجة لهذا المفهوم هو حاجة واضحة لالأدوات التحليلية التي تقلل من التحيز نحو مسارات و / أو فئات معينة من المركبات الأيضية. ومع ذلك، يستند مقايسة البيوكيميائية الكلاسيكية على تفاعل كيميائي معين من تحليلها محددة التي تحتاج إلى أن تكون محددة قبل إجراء الفحص. على النقيض من ذلك، تعتمد التقنيات الطيفية مثل الرنين المغناطيسي النووي (NMR) مطياف ومطياف الكتلة (MS) (ط) على وجه الخصوص الجزيئية (المادية) الخصائص من المركبات الكيميائية الحيوية، كل منها يؤدي إلى واحد أو عدة إشارات متميزة في الطيف الكشف في سياق تجربة واحدة؛ و (ثانيا) كشف عدد كبير من مركبات مختلفة في التجربة.

وهكذا، كل الطيف يحتوي على معلومات مشتركة من مجموعة كاملة من نواتج الأيض. لهذا السبب، الطرق الطيفية هي الأدوات المناسبة لالايض، كما لا يحتاج إلى اختيار قبل أن تتخذ بشأن طبيعة الحليلة المراد قياسها 8 </suع>. ونتيجة لذلك، هذه التقنيات بشكل طبيعي تصلح لدراسات استكشافية لأنها تسهل كثيرا الكشف عن التغيرات الأيضية غير متوقعة.

على الرغم من أن التحليل الطيفي NMR MS ويمكن أن تستخدم بالتبادل لتحليل العديد من نواتج الأيض، كل طريقة يمتلك مزايا وعيوب التي تم استعراضها مؤخرا 10 محددة. باختصار، يمكن عادة NMR الطيفي أن يؤديها من استخراج النفط الخام و لا يتطلب الفصل الكروماتوغرافي لمركبات العينة قبل التحليل. على النقيض من ذلك، تعمل بالغاز أو MS اللوني السائل (GC أو LC) فصل، باستثناء معينة التطورات الأخيرة مثل التصوير الطيف الكتلي. في بعض الحالات الخاصة مثل تحليل السكريات، قد تصبح فصل LC ضرورة لNMR الطيفي كذلك، لأن خطوط صدى من السكريات المختلفة تتداخل بشكل كبير في بروتون (H 1) NMR الأطياف. ومع ذلك، 1 H NMR الطيفي دون مركز حقوق الإنسانيبقى الفصل omatographic الأكثر شعبية، تقريبا التطبيقية عالميا طريقة NMR metabolomic. عموما، وإعداد العينات هو أكثر تستغرق وقتا طويلا ومعقدا لMS مما هو عليه لNMR الطيفي. مشاكل خطيرة بسبب الآثار مصفوفة هي أقل شيوعا بكثير في NMR الطيفي في MS من حيث أنها قد تؤدي إلى إشارات الموهنة كبير. ويمكن تحقيق المستقلب الكميات إما الأسلوب. ومع ذلك، هناك حاجة إلى مركبات متعددة لمعيار MS بسبب الاختلافات في الآثار مصفوفة والكفاءة التأين بين نواتج الأيض. على النقيض من ذلك، هناك حاجة إلى معيار واحد فقط لكل عينة للتحليل الطيفي NMR لأنه في ظل الظروف القياس المناسبة، والأسلوب الأخير هو جوهريا بفضل الكمية لاستجابة NMR الخطية بدقة نواة لوحظ. والعيب الرئيسي هو من NMR لها حساسية منخفضة نسبيا. MS، ولا سيما LC-MS، هو أكثر حساسية من NMR عدة أوامر من حجمها؛ لهذا السبب، MS هو أن يفضل على NMR للتحليل المركبات التي تحدث في تركيزات منخفضة للغاية. من ناحية أخرى، فإن الطبيعة غير تدميري التجربة NMR هي ميزة واضحة على MS. بهذه الطريقة، NMR يمكن القيام بها مرارا وتكرارا على نفس العينة، على سبيل المثال، لمختلف نوى-NMR النشطة مثل 1 H، الفوسفور-31 (31 P)، الكربون 13 (C 13)، الفلور-19 (19 F) الخ، كما لا يتم استهلاك المواد بواسطة NMR خلافا لقياسات MS.

كلا NMR وMS يمكن استخدامها في أوضاع مختلفة، كل واحد يجري الأمثل للكشف عن مركبات ذات خصائص كيميائية معينة. على سبيل المثال، 31 P NMR غالبا ما يكون أكثر ملاءمة من 1 H NMR لتحليل المركبات فسفرته بتركيز معتدل، على الرغم من نواتج الأيض تقريبا كل فسفرته تحتوي أيضا على بروتونات. ومع ذلك، قد يكون غامضا من 1 إشارات H NMR بحلول 1 H NMR إشارات من المركبات الأخرى، غير فسفرته، في حين أن الأخيرةبالطبع لا تسبب إشارات خلفية في 31 P NMR الأطياف. في الوضع التمثيلي، 19 F تحليل NMR هو أن المفضل للمركبات المفلورة، على سبيل المثال، والمخدرات المفلورة (لا توجد اشارات الخلفية من نواتج الأيض الذاتية)، في حين أن حالة خاصة من 13 C NMR ذات أهمية على وجه الحصر تقريبا إذا كان مصير 13 ج السلائف الأيضية الخارجية المسمى يحتاج إلى أن يتبع، بسبب وفرة الطبيعية منخفضة للغاية من النظير 13 C (حوالي 1٪). العديد من الطيف الجماعية تعمل إما في وضع الأيونات السالبة أو وضع ايون ايجابية. ولذلك، فمن المهم أن نعرف قبل تحليل ما إذا كانت أيونات التي يتعين مراعاتها واتهم سلبا أو إيجابا. نركز هنا على بروتوكول للتحليل metabolome أنسجة المخ بنسبة 1 H و 31 P NMR الطيفي لأن هذا الأسلوب ينتج عدد كبير من تركيزات المستقلب مهمة بتكلفة منخفضة من حيث (ط) الوقت اللازم لإعداد عينة لالثانية (ب) الجهد المطلوب لالمستقلب الكميات. جميع التجارب يمكن القيام بها باستخدام معدات مختبر الكيمياء الرطبة القياسية ومنشأة NMR الطيفي عالية الدقة. يتم وصف متطلبات إضافية في القسم بروتوكول أدناه.

Protocol

ملاحظة: الحيوان الأخلاق بيان وجاءت الدراسات على الحيوانات على الفئران المبادئ التوجيهية صالحة في فرنسا، وتمت الموافقة من قبل اللجنة المحلية الأخلاق (# 40.04، جامعة إيكس مرسيليا مدرسة الطبية، مارسيليا، فرنسا). 1. حصاد وتجميد الدم?…

Representative Results

للحصول على أفضل قرار في أطياف الرنين المغناطيسي للدماغ الأيض ومقتطفات الأنسجة الأخرى، فقد كان منذ فترة طويلة ممارسة شائعة لإزالة أو الأيونات المعدنية قناع (الأهم: أيونات ممغطس) موجودة في استخراج الحلول. وقد تحقق ذلك إما بإضافة عامل خالب مثل EDTA أو CDTA إلى استخراج 19،<…

Discussion

NMR الطيفي هو وسيلة فعالة لقياس تركيزات المركبات الكيميائية في محلول بطريقة استنساخه جدا ودقيقة. ومع ذلك، للحصول على بيانات عالية الجودة من الضروري أن تلتزم قواعد معينة بشأن إعداد العينات وتحليلها. في تحديد تركيزات المستقلب بواسطة الرنين المغناطيسي الطيفي، ولا جيل و…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Support by Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS, UMR 6612 and 7339) is gratefully acknowledged.

Materials

Isoflurane Virbac Vetflurane Anesthetic for animals
Isoflurane vaporizer Ohmeda Isotec 3 Newer model available: Isotec 4
Scalpel, scissors, forceps, clamps Harvard Apparatus
Fisher Scientific
various
various
Surgical equipment for animals
Freeze-clamp tool homebuilt n/a Tong with aluminium plates, to be inserted
in liquid nitrogen for cooling
Dewar Nalgene 4150-4000
Liquid nitrogen Air Liquide n/a
Nitrogen gas Air Liquide n/a
Nitrogen evaporator Organomation Associates N-EVAP 111 Can be replaced by homebuilt device
Mortar Sigma-Aldrich Z247472
Pestle Sigma-Aldrich Z247510
Tissue homogenizer Kinematica Polytron With test tubes fitting homogenizer shaft
Electronic scale Sartorius n/a
Methanol Sigma-Aldrich M3641
Chloroform Sigma-Aldrich 366910
Glass centrifuge tubes Kimble 45500-15, 45500-30 Kimax 15-mL, 30-mL tube
Microcentrifuge tubes Kimble 45150-2 Kimax 2-mL tube; should replace "Eppen-dorf" tube if compatible with centrifuge rotor
polystyrene pipettes Costar Corning Stripettes 5 and 10-mL volumes
Deuterochloroform Sigma-Aldrich 431915 99.96 % deuterated
Deuterium oxide Sigma-Aldrich 423459 99.96 % deuterated
Deuterium chloride Alpha Aesar 42406 20 % in deuterium oxide
Sodium deuteroxide Sigma-Aldrich 164488 30 % in deuterium oxide
Lyophilizer Christ Alpha 1-2
Cold centrifuge Heraeus Megafuge 16R
pH meter Eutech Cybernetics Cyberscan
CDTA Sigma-Aldrich D0922
Cesium hydroxide Sigma-Aldrich 516988
NMR tubes Wilmad 528-PP
NMR stem coaxial insert Sigma-Aldrich Z278513 By Wilmad
NMR pipettes Sigma-Aldrich Z255688
Pipettes Eppendorf Recherche With tips for volumes from 0.5 to 1000 μL
Pipet-Aid Drummond XP
NMR spectrometer Bruker AVANCE 400 including probe and other accessories
NMR software Bruker TopSpin 1.3 newer version available: Topspin 3.2
Water-soluble standard compounds Sigma-Aldrich various
Phospholipid standard compounds Avanti Polar Lipids
Doosan Serdary
Sigma-Aldrich
various
various
various
 
Source for plasmalogens, but may be
< 70 – 80 % purity
Methylenediphosphonate Sigma-Aldrich M9508
TSP-d4 Sigma-Aldrich 269913

References

  1. Manger, P. R., et al. Is 21st century neuroscience too focused on the rat/mouse model of brain function and dysfunction. Front Neuroanat. 2, 5 (2008).
  2. Buxbaum, J. D., et al. Optimizing the phenotyping of rodent ASD models enrichment analysis of mouse and human neurobiological phenotypes associated with high-risk autism genes identifies morphological, electrophysiological, neurological, and behavioral features. Mol Autism. 3, 1 (2012).
  3. Papaioannou, V., Behringer, R. R. . Mouse Phenotypes A Handbook of Mutation Analysis. , (2004).
  4. Yu, F. H., et al. Reduced sodium current in GABAergic interneurons in a mouse model of severe myoclonic epilepsy in infancy. Nat Neurosci. 9, 1142-1149 (2006).
  5. Mallolas, J., et al. A polymorphism in the EAAT2 promoter is associated with higher glutamate concentrations and higher frequency of progressing stroke. The Journal of Experimental Medicine. 203, 711-717 (2006).
  6. Crusio, W. E., Sluyter, F., Gerlai, R. T., Pietropaolo, S. . Behavioral Genetics of the Mouse Genetics of Behavioral Phenotypes. Vol. 1, (2013).
  7. Viola, A., Saywell, V., Villard, L., Cozzone, P. J., Lutz, N. W. Metabolic fingerprints of altered brain growth, osmoregulation and neurotransmission in a Rett syndrome model. PLoS ONE. 2, e157 (2007).
  8. Lutz, N. W., Sweedler, J. V., Wevers, R. A. . Methodologies for Metabolomics. , (2013).
  9. Rabinowitz, J. D., Purdy, J. G., Vastag, L., Shenk, T., Koyuncu, E. Metabolomics in drug target discovery. Cold Spring Harb Symp Quant Biol. 76, 235-246 (2011).
  10. Wishart, D. S., Wevers, R. A., Lutz, N. W., Sweedler, J. V., et al. . Methodologies for Metabolomics. , (2013).
  11. Ponten, U., Ratcheson, R. A., Salford, L. G., Siesjo, B. K. Optimal freezing conditions for cerebral metabolites in rats. Journal of Neurochemistry. 21, 1127-1138 (1973).
  12. Henry, P. G., Oz, G., Provencher, S., Gruetter, R. Toward dynamic isotopomer analysis in the rat brain in vivo automatic quantitation of 13C NMR spectra using LCModel. NMR Biomed. 16, 400-412 (2003).
  13. Lutz, N. W., Cozzone, P. J. Multiparametric optimization of (31)P NMR spectroscopic analysis of phospholipids in crude tissue extracts 2 Line width and spectral resolution. Anal Chem. 82, 5441-5446 (2010).
  14. Lutz, N. W., Cozzone, P. J. Multiparametric optimization of (31)P NMR spectroscopic analysis of phospholipids in crude tissue extracts. 1. Chemical shift and signal separation. Anal Chem. 82, 5433-5440 (2010).
  15. Lutz, N. W., Cozzone, P. J., Lutz, N. W., Sweedler, J. V., Wevers, R. A. . Methodologies for Metabolomics. , (2013).
  16. Lutz, N. W., Fernandez, C., Pellissier, J. F., Cozzone, P. J., Beraud, E. Cerebral biochemical pathways in experimental autoimmune encephalomyelitis and adjuvant arthritis a comparative metabolomic study. PLoS ONE. 8, e56101 (2013).
  17. Lutz, N. W., Cozzone, P. J. Principles of multiparametric optimization for phospholipidomics by 31P NMR spectroscopy. Biophys Rev. 5, 295-304 (2013).
  18. Pearson, G. A. . Shimming an NMR magnet. , (1991).
  19. Lane, A. N., Fan, T. W. M., Higashi, R. M., Correia, J. J., Detrich, H. W. . Biophysical tools for biologists. Vol. 1, In vitro techniques, (2008).
  20. Peeling, J., Wong, D., Sutherland, G. R. Nuclear magnetic resonance study of regional metabolism after forebrain ischemia in rats. Stroke. 20, 633-640 (1989).
check_url/fr/51829?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Lutz, N. W., Béraud, E., Cozzone, P. J. Metabolomic Analysis of Rat Brain by High Resolution Nuclear Magnetic Resonance Spectroscopy of Tissue Extracts. J. Vis. Exp. (91), e51829, doi:10.3791/51829 (2014).

View Video