שיעורי מוטציה בתאי cerevisiae Saccharomyces הצעיר נמדדו באמצעות בדיקות תנודות משמשים כדי לחזות תדרי מוטציה בתאי אמא של גילאי replicative שונים. מיון וcytometry זרימה מגנטי משמש לאחר מכן למדידת תדרי מוטציה בפועל וגיל של תאי אם לזהות כל חריגה מתדרי מוטציה חזו.
Saccharomyces cerevisiae כבר מערכת מודל מצוינת לבחינת מנגנונים והשלכות של חוסר יציבות הגנום. המידע שנצבר משמרי מודל זה הוא רלוונטי לאורגניזמים רבים, כולל בני אדם, שכן גורמי תיקון DNA ותגובת הנזק לדנ"א נשמרים גם בין זנים שונים. עם זאת, ס ' cerevisiae עדיין לא היה בשימוש כדי לטפל באופן מלא אם שיעור צבירת מוטציות שינויים עם replicative (mitotic) עלייה בגיל עקב אילוצים טכניים. לדוגמא, מדידות של אורך חיים replicative שמרים באמצעות מיקרומניפולציה כרוכות אוכלוסיות קטנות מאוד של תאים, האוסרות על גילוי של מוטציות נדירות. שיטות גנטיות כדי להעשיר לתאי אמא באוכלוסיות על ידי גרימת מוות של תאי בת פותחו, אבל בגדלים אוכלוסייה עדיין מוגבלים על ידי התדירות שבה מוטציות אקראיות שתתפשרנה מערכות הבחירה להתרחש. הפרוטוקול הנוכחי מנצל sorti המגנטיng של תאי שמרי אמא שכותרתו משטח להשיג מספיק אוכלוסיות גדולות של הזדקנות תאי אם לכמת מוטציות נדירות דרך בחירות פנוטיפי. שיעורי מוטציה, שנמדדו באמצעות בדיקות תנודות, ותדרי מוטציה הוקמו ראשון לתאים צעירים ומשמשים כדי לחזות את תדירות מוטציות בתאי אמא של גילאי replicative שונים. תדרי מוטציה לאחר מכן נקבעו לתאים ממוינים אמא, והגיל של תאי אמא נקבע באמצעות cytometry זרימה על ידי צביעה עם מגיב ניאון שמזהה צלקות ניצן נוצרו על משטחי התא שלהם בעת חלוקת תא. השוואה של תדרי מוטציה חזו מבוססים על מספר חלוקות תא לתדרים בניסוי נצפו עבור תאי אמא של גיל replicative נתון יכולה אז לזהות אם יש הקשורות לגיל שינויים בשער של מוטציות מצטברות. וריאציות של פרוטוקול בסיסי זה מספקות את האמצעים כדי לחקור את ההשפעה של שינויים בפונקציות גן ספציפיים אותנאים סביבתיים ספציפיים על הצטברות מוטציות כדי לטפל במנגנוני חוסר יציבות הגנום בסיסי במהלך הזדקנות replicative.
מיקרואורגניזמים, כגון שמרי Saccharomyces cerevisiae, הם מודלים מצוינים לחקירת שיעורי מוטציה, אבל מודלים אלה לא נוצלו במלוא לחקור את ההצטברות של מוטציות במהלך הזדקנות mitotic של תאים. הצטברות מוטציות בגנום הגרעיני כבר שיערו לתרום להזדקנות על ידי וכתוצאה מכך אובדן ההדרגתי של (או וריאציה) פונקציות גן 1. היכולת להשתמש במערכת של חיידקים כדי לחקור את המנגנונים והשלכות של הצטברות מוטציות במהלך ההזדקנות עלול להאיץ את זיהוי של גורמים גנטיים וסביבתיים משפיעים על התהליך הזה, משום שמערכות גנטיות קלילה וקל לכימות שינויי פנוטיפי נדירים במיקרואורגניזמים רב. גורמי תיקון דנ"א וחלבוני תגובת נזק לדנ"א נשמרים היטב על פני מינים שונים 2, ודמיון יסודי בהזדקנות האורגניזם זוהה עבור אורגניזמים מגוונים כמו ס ' cerevisiaeיונקי ד 3, שהופכים אותו סביר להניח כי תוצאות שהתקבלו ממחקרים בשמרים יהיו רלוונטיות להזדקנות באורגניזמים רבים.
מחקרים של ההזדקנות בס cerevisiae לעשות שימוש בשני מודלים הזדקנות המודדים הזדקנות כרונולוגית או הזדקנות replicative של תאים. הזדקנות כרונולוגית מאופיינת באובדן ההדרגתי של יכולת קיום באוכלוסיות שמרי תא שנמצאות במצב (שלב נייח) החלוקה הלא בשל דלדול מזין 3. מודל ההזדקנות הכרונולוגי כבר בשימוש על מנת להוכיח כי מוטציות מצטברות עם עלייה בגיל 4, שכן אוכלוסיות תאים גדולות מתקבלות בקלות במודל זה כדי לבצע בחירות פנוטיפי לתאים שעברו מוטציה. במקרה זה, הצטברות מוטציה מופיעה להיות מושפעת מסלולי איתות צמיחה וסטרס חמצונים 5, וכל אחד מהגורמים הללו הוא רלוונטי להבנת הזדקנות אאוקריוטים רב תאיים 3. מודל הזדקנות replicative מנצל divisi סימטריעל בין ס תאים אם ובתה cerevisiae לחקירת הזדקנות המתרחשת עם דורות תא רצופים 3. הזדקנות replicative שמרים כבר נמדדה לעתים קרובות באמצעות מיקרומניפולציה של אוכלוסיות קטנות של אמא ותאי בת, או יותר לאחרונה, באמצעות וידאו מיקרוסקופי של אוכלוסיות קטנות של תאי שמרים במכשירי microfluidic 6,7. גודל אוכלוסייה מוגבל לעשות גישות אלה אינם מתאימים לחקירת הצטברות מוטציה במהלך הזדקנות המיטוטי אלא אם כן מידע כלל הגנום מתקבל מהתאים בודדים או שינויים גנטיים גבוהה מאוד בתדירות נמדדים 8. רצף הגנום של תאים בודדים מספק ערכות נתונים משמעותיות לחקירת הצטברות מוטציות, אבל יש לי מערכות בחירת פנוטיפי היתרון החשוב של מתן אמצעי למדידת שיעורי מוטציה ללמוד מנגנוני צבירת מוטציה בסיסית. מחקרים כדי לבחון תדרי מוטציה ושיעורים דרך בחירות פנוטיפי בhaploiזני שמרי ד במהלך הזדקנות replicative טרם דווח.
שיעורי מוטציה נפוצה נמדדים באמצעות בדיקות תנודות 9. ערכי תדירות מוטציה משקפים את המספר הכולל של תאי מחסה מוטציה ברצף גן באוכלוסייה. זה כולל תאים בי מוטציות עצמאיות להתרחש וכל צאצאים של אותם תאים שפשוט יורשים מוטציות קיימות מראש. בניגוד לכך, שיעורי מוטציה נמדדו באמצעות בדיקות תנודות מייצגים את מספר המוטציות עצמאיות שזה עתה להתעורר עם כל דור תא. בדיקות אלו בדרך כלל כרוכים בלחסן תרבויות לשכפל רבות בצפיפות תא נמוכה כדי להקטין את הסיכוי של הוספת תאים עם קיימות מראש מוטציות ברצף יעד, גדלו תרבויות לרוויה ליד, וזיהוי תאים שעברו מוטציה על ידי צמיחה במצע סלקטיבי. מספרם של תאים שעברו מוטציה שזוהו באוכלוסיות לשכפל משמש לאחר מכן באחד מכמה מודלים מתמטיים כדי להעריך את המספר שלימוטציות ndependent שעלו במהלך הצמיחה 9. השוואת מספר המוטציות עצמאיות לגודל האוכלוסייה הממוצע מספקת מדד של שיעור המוטציות. בס cerevisiae, תדרים ושיעורי מוטציה לעתים קרובות נמדדו באמצעות גני URA3 וCAN1, מאז מוטציות אובדן של פונקציה בגנים אלה לייצר פנוטיפים לבחירה. אובדן תפקוד URA3 הופך תאים עמידים ל5-fluoroorotic חומצה (5-פואה), מאז החלבון מקודד על ידי URA3 ממיר 5-פואה למולקולה רעילה 10. אובדן התפקוד של CAN1 מאפשר לתאים להפוך לעמידים בפני canavanine, אנלוגי ארגינין רעיל, מאז החלבון מקודד על ידי CAN1 משלוחי ארגינין וcanavanine לתאים 11.
שני אסטרטגיות המיון הגנטיות ופיסיות כבר מועסקות בהצלחה להשיג אוכלוסיות גדולות יותר של ס ' תאי אם cerevisiae כדי להקל על חקירות של הזדקנות replicative. אסטרטגיות גנטיות כוללות גישות חכמות שתבחרנה נגד הישרדות תא בת באוכלוסייה. תכנית העשרת אמא (חבר הפרלמנט האירופי) כרוכה אינדוקציה בטא אסטרדיול ביטוי recombinase Cre רק בתאי בת, שמובילה לשיבוש בתו הספציפי של שני גנים חיוניים שהונדסו כדי להכיל אתרי loxP 12. ניתן לגדל זני חבר הפרלמנט האירופי, בדרך כלל בהיעדר inducer, אלא רק את תאי האם ימשיכו לחלק הבאים אינדוקציה, בעוד שתאי בת יעצרו בM-שלב בדרך כלל במהלך ההתקדמות הראשונה שלהם דרך מחזור 12 התא. בעוד מערכת זו לא נעשתה שימוש כדי ללמוד באופן רחב הצטברות מוטציה במהלך הזדקנות, זה כבר נעשה שימוש כדי ללמוד אובדן הטרוזיגוטיות, צורה תכופה יחסית של חוסר יציבות הגנום בזני שמרי דיפלואידי, כמו גם שינויים ביוכימיים בתאי אמא של הזדקנות 13,14. באופן דומה, מערכת הכלה arrester כרוך ביטוי בתו הספציפי של ס ' cereviגן siae URA3 15. זני הכלה arrester לגדול בדרך כלל עד 5-פואה מתווספת לבינונית, שבו תאי בת הנקודה להביע URA3 ימותו, ואילו תאי אם ימשיכו לגדול 15. אלה הם מערכות שימושיות להעשרה לתאי אמא, אבל הם תלויים בתחזוקה של פונקציות הגן, המהוות את מערכת הבחירה. מוטציות אקראיות ברכיב אחד או יותר של מערכת הבחירה עלולות לגרום לתאי בת שלהימלט הבחירה ולהתרבות באופן אקספוננציאלי. במהלך פיתוח של זני חבר הפרלמנט האירופי, בגדלים אוכלוסייה מתאימים היו נחושים בדעתו להימנע ממראית העין של תאי בת מוטציה שיכל לברוח הבחירה 12. עם זאת, מגבלה זו בגודל אוכלוסייה פוגעת בזיהוי של צורות נדירות של חוסר יציבות הגנום במהלך הזדקנות replicative. הגבלה זו על גודל אוכלוסייה ניתן להתגבר חלקית על ידי שימוש בזני שמרי דיפלואידי עם שני עותקים של כל גן תורמים למערכת הבחירה, שכן רובמוטציות עלולות להיות רצסיבי 12. עם זאת, שימוש בזני דיפלואידי מגביל את סוגי אירועי מוטאציות שניתן לאתר בקלות בהשוואה לאלו שניתן לאתר בקלות בתאי שמרים הפלואידים.
אסטרטגיות מיון פיזיות כוללות בידוד של תאי אמא עם תא שטח שכותרתו מתאי בת ללא תווית להעשיר לאוכלוסיות גדולות של תאי אמא. התצפית שחלבוני פני השטח תא (דופן תא חלבונים) של ס ' תאי בת cerevisiae מסונתזים חדשים בניצנים נוצל לתייג תאי אמא בלי תיוג תאי הבת שהם מייצרים 16. לדוגמא, אוכלוסייה ראשונית של תאי שמרים שכותרתו על פני השטח שלהם עם ביוטין ניתן לגדל ולאחר מכן מבודדת מתאי הבת שלהם באמצעות microbeads אנטי ביוטין והמגנטי מיון 16 כי תאי הבת שנוצרו על ידי האוכלוסייה הראשונית לא יכילו ביוטין על פני השטח שלהם . וצמיחה סידורימיון מאפשר אוכלוסיות בהדרגה ישנות יותר של תאי אמא שתתקבל וינותחו. הליך זה שמש בהצלחה לבחינת שינויים בפיזיולוגיה של תא וביטוי גנים במהלך הזדקנות replicative של שמרים 13,14,17,18. השיטה הנוכחית מתאים את עצמו תיוג ביוטין זה וטכניקת מיון מגנטית להעשיר עבור תאי אמא עם צורך מדידת ההצטברות של מוטציות שעלולים להיות נדירות או צורות אחרות של חוסר יציבות הגנום assayed באמצעות בחירות פנוטיפי. צמיחה סידורי ומיון פיזי מאפשרים ניתוח של הצטברות מוטציות בתאי אמא בהדרגה מבוגרת, כמו גם באוכלוסיות תאי הבת שלהם. קביעת שיעורי מוטציה לדור מאפשרת תדירות מוטציה צפויה תחושב עבור תאי אמא שעברו מספר מסוים של חלוקות תא. מאחר וערכי תדירות חזו מבוססים על הגידול הצפוי בשל סיבובים נוספים של חלוקת תא, סטיות משמעותיות בmutati נצפהעל תדרים בהשוואה לערכים החזויים לספק ראיות לגיל ספציפי שינויים בשער של מוטציות מצטברות. שימוש בפרוטוקול זה, מכתים ניאון של צלקות ניצן שמתאימות לאתרים של חלוקות תא בתאי אמא בשילוב עם ניתוח על ידי cytometry זרימה יכול לשמש כדי לקבוע את התפלגות הגילים של אוכלוסייה ממוינת ולא ממוינת במהירות. ריאגנטים נוספים ניאון, כגון אלו המשמשים לאיתור מיני חמצן תגובתי, יכולים גם להיות מנוצלים במהלך פרוטוקול זה. בסך הכל, פרוטוקול זה מאפשר ניתוח יעיל של גיל תלוי שינויים בחוסר יציבות הגנום עם הפוטנציאל למתאם הלקשורות לגיל שינויים פיסיולוגיים תא באורגניזם מודל מתאים ללימוד הגורמים הגנטיים וסביבתיים המשפיעים על חוסר יציבות הגנום הקשורות להזדקנות.
פרוטוקול זה משלב מספר שיטות כדי לאפשר משאבים וגישות זמינים בSaccharomyces מערכת מודל cerevisiae להיות מיושם ביעילות למחקר של חוסר יציבות הגנום במהלך הזדקנות תא mitotic. מגוון רחב של מבחני לכמת צורות שונות של חוסר יציבות הגנום באמצעות בחירת פנוטיפי יכול להיות משולב עם מיון מגנטי ללמוד אפשריים ספציפי לגיל שינויים בהצטברות של צורות מסוימות של מוטציות או שחלופי כרומוזום. בעוד גישות רצף הגנום יכולות לספק מידע נוסף על הסוגים הכלליים של שינויים המתרחשים בגנום עם גיל, את היכולת להשתמש במערכות בחירת פנוטיפי להשיג מדידות שיעור מוטציות וכדי לבודד מעדיף סוגים מסוימים של שינויים גנטיים הם יתרונות חשובים ללימוד מכניסטית היבטים של חוסר יציבות הגנום הקשורות להזדקנות. התייעלות קביעת גיל תא והפוטנציאל לבצע מדידות מקבילות של physiologiשינויי קלוריות באמצעות cytometry זרימה לספק אמצעים יעיל כדי לתאם חוסר יציבות הגנום עם שינויים תאיים אחרים בזמן טווחי גיל ספציפיים. קביעת פוטנציאל תלוי גיל שינויים בשיעורים של מוטציות מצטברות דורשת: 1) קביעה מדוקדקת של שיעורים באוכלוסיות תאים צעירים, 2) קביעה מדויקת של גיל תא, ו3) היכולת להעשיר באופן מהימן אוכלוסיות גדולות מספיק של תאי אם למדוד reproducibly חוסר יציבות הגנום בגיל המבוגר. גישה זו מאפשרת למערכת שמרי המודל לתרום להגדרת מנגנונים אחראים לתלוי גיל שינויים בשיעורים ו / או תדרים של חוסר יציבות הגנום בתאי mitotically פעילים שבבסיס. יתר על כן, גורמים גנטיים וסביבתיים ניתן להעריך במהירות לתרומות לחוסר יציבות הגנום תלוי גיל. סופו של דבר, אפיונים אלה יכולים להוביל לפיתוח מודלים המסבירים את האופן שבו מוטציות מצטברות במהלך הזדקנות replicative.
שיטה זו תלויה ביכולת לזהות מוטציות או סוגים אחרים של חוסר יציבות הגנום באמצעות הופעתו של פנוטיפים לבחירה למדידת שיעורים של אירועים כאלה. עם זאת, יצירתיות בעיצוב assay יכולה להרשות להיבטים רבים של חוסר יציבות הגנום להיחקר. לדוגמא, URA3 וגני CAN1 יכולים להיות ממוקמים באתרים גנומיים שונים כדי לבדוק את כל השפעות של מיקום גנטי על תוצאות. חזרה של אללים של גן שאינו פונקציונליים ספציפיים לאללים גן פונקציונליים יכול לבדוק תהליכי מוטציה מסוימים. כמו כן, כניסתה של אללים פעילים מרובים של גן או איגוף גן עם רצפים חוזרים יכולה לשמש כדי לבחון אירועי רקומבינציה דרך שיקום או אובדן של תפקוד גן, בהתאמה. בדיקות תנודות הן הגישה סטנדרטית לקביעת שיעורי אלה אירועי חוסר היציבות הגנום השונים 9. הפרוטוקול נכתב באמצעות האומדן החציוני לאה-Coulson המקובל היטב ופשוט יחסית כדי לקבוע mutaשיעור tion כדי להפוך אותו נגיש יותר לחוקרים מגוונים, למרות ששיטת אומדן סבירות MSS-מקסימום נחשבת הגישה הטובה ביותר לקביעת שיעורי מוטציה 9. אומדן סבירות MSS-המרבי נבדק בעבר בפירוט 9, ויכול לשמש כשיטת חלופית, אבל דורש חישובים מתוחכמים יותר. לחלופין, תוכנה חופשית לחישוב שיעורי מוטציה בשיטה זו הפכה לזמינה 22. קבלת אמצעים לשחזור של שיעורי מוטציה דורשת תשומת לב לכמה היבטים של תכנון ניסוי, כוללים שימוש בתרבויות לשכפל מספיק, ייחסו תרבויות בצפיפות תא נמוכה מספיק ראשונית שעולה גודל אוכלוסייה על ידי כרכי תרבות המתאימים 10,000 פי או יותר, ובחירה, כך שכל אוכלוסייה של תאים ניתן להפיץ על גבי מצע סלקטיבי. לנקודה האחרונה, נוסחה שתוארה לעיל יכולה לשמש כדי להתאים את שיעור מוטציות המבוססות על חלק קטן של טסט התרבותד 9. וריאציה בקצב צמיחה של תרבויות יכולה לסבך את קביעת שיעור מוטציות לשחזור, ואומדן המבוסס על חציון שונה שעשויים להניב תוצאות לשחזור יותר במצבים כאלה תוארו 23 לאחרונה.
היכולת למדוד גיל תא בצורה מדויקת היא גורם נוסף שהוא חשוב לקביעה אם תדרי חוסר יציבות הגנום בתאים ישנים שונים מהערכים הצפויים בשל שיעור האירועים בתאים צעירים. מצאנו כתמי WGA להיות עדיף על calcofluor צביעה לבנה, הן מבחינת רקע וגמישות, מאז WGA זמין מצומדות למולקולות ניאון שונות. גמישות זו יכולה לספק יותר הזדמנויות למדידות בו זמניות של מאפייני תא אחרים עם ריאגנטים ניאון. עבודה ראשונית ליצור מערכת יחסים בין עוצמת האות לצביעת WGA והמספר המתאים של צלקות ניצן על תאים ולאחר מכן יכול להוביל ליותרקביעה מהירה של גיל תא דרך cytometry זרימה. גישה זו גם מאפשרת שימוש בגדלי אוכלוסייה גדולים יותר ממה שאפשר בחן בדרך כלל על ידי מיקרוסקופ לשחזור משופר של מדידות. ניתן אמנם עשו את כל קביעות הגיל באמצעות בדיקה מיקרוסקופית של התאים, אנחנו מרגישים שזרימת גישת cytometry מאפשרת סינון מהיר של גורמים המשפיעים על חוסר יציבות הגנום תלוי גיל.
בנוסף למדידת גיל תא באופן מהימן, שיקול צריך להיות נתון למספר חלוקות תא תאי אמא מותר לעבור עם כל סיבוב של גידול ומיון תאים רצוף. השתמש בגודל קטן יותר ראשוני אוכלוסייה או גדול יותר נפח תרבות יכול לאפשר לתאים לעבור יותר חלוקות תא לפני שהגיע לצפיפות התאים הרצויה. לדוגמא, חוקרים אחרים השתמשו רק בשני סבבי מיון להשיג תאים ישנים מאוד שמרים 16, שבו יש יתרון הברור של קבלת תאים ישנים עם פחות experimeצעדי פתיחות opening סגירות closures. כאשר שוקלים האם להגדיל נפח התרבות כדי לאפשר את התאים כדי להשלים יותר חלוקות תא לפני המיון, יש לזכור את המגבלה על המספר הכולל של תאים שיכולים להיות מעובד בעמודה אחת. השתמש של גדול יותר נפח תרבות עשוי להצריך שימוש בעמודות מרובות כדי למיין אוכלוסיית תא אחד. כמו כן, אם תאים עוברים פחות סיבובים של חלוקת תא בין נקודות מיני / אוסף, אז יש יותר הזדמנויות לצפות חריגות מתדרי מוטציה צפויות בנקודות זמן שונות במהלך תוחלת חיים. לדוגמא, דגימה רק בתחילה ונקודות זמן מאוחר במהלך תוחלת חיים עשויה לייצר נתונים המצביעים על עלייה מתמדת בשכיחות מוטציה, אבל דגימה בזמנים ביניים נוספים במהלך תוחלת חיים עשויים להראות כי עלייה בתדירות מוטציה במהירות ולאחר מכן מישורים. עם זאת, מאז פרוטוקול זה מבודד את תאי אמא ישנים, יש הזדמנות להשיג מדד ישיר יותר של שינויים בשיעורי מוטציה עם גיל. בדיקות תנודות יכולות bדואר מתבצע באמצעות תאי אמא בגילים שונים כדי לקבוע אם שיעור המוטציות יהיה שונה מהשיעור שהושג תוך שימוש בתאים צעירים. בעוד התרבויות לבדיקות תנודות אלה תהפוך לתערובת של תאים זקנים וצעירים כאשר הם גדלים, כל חריגה משיעורים שהושגו החל מתאים צעירים אפשר לייחס לשימוש באוכלוסיית המוצא מבוגר.
היכולת להשיג reproducibly מספיק אוכלוסייה גדולה של תאי אמא של גילאים עד למדוד חוסר יציבות הגנום מדויק היא קריטית להצלחה של גישה זו. בעוד הפרוטוקול מתאר את השימוש במערכת מיון מגנטי מסוימת למטרה זו, קבוצות אחרות שמסודרות על תאי אמא של שמרים עם מערכות חלופיות 14,18 (ראה טבלה של חומרים). מערכות חלופיות כגון צריכה גם לעבוד בשיטה זו, אם כי עשויה להידרש כמה אופטימיזציה של הפרוטוקולים של היצרנים. ללא קשר למערכת הספציפית בשימוש, גודל האוכלוסייה דורשנבדל ד בהתאם לתדר של הסוג של סידור מחדש מוטציה או הגנום שנבחר למחקר. לכל הפחות, חייבת להיות מספיק תאי אם להשיג מושבה מוטציה אחת לפחות לכל אוכלוסייה לחישוב תדירות מוטציה. בפועל, תוצאות יכולות להיות די משתנים ולו רק אפס עד חמש מושבות מוטציה צפויות מגודל האוכלוסייה, ואפילו עלייה קטנה בגודל אוכלוסייה, ולכן כי חמישה עד עשר מושבות מוטציה צפויות, יכול לשפר את שחזור באופן משמעותי. כאשר יוטין תיוג אוכלוסייה מתחילה, התאוששות היעילות עבור כל סוג צריכה להילקח בחשבון כדי לסייע בזיהוי גודל האוכלוסייה המתאים דרוש כדי למדוד תדירות מוטציה בתאי אמא ישנות. עם התאוששות 90% מתאי אם לאחר כל סוג, רק 59% מהאוכלוסייה המקורית היו להיות התאוששו לאחר חמישה סבבים של צמיחה ומיון. זה יורד ל ~ התאוששות 33% מהאוכלוסייה המקורית לאחר חמישה סבבים של צמיחה ומיון אם רק 80% מתאי אמא שכותרתו להתאוששed במהלך כל סוג שהוא. מדידה ולמקסם את ההתאוששות היא חיונית כאשר מודדים אירועים בתדירות נמוכים, שכן 2:58 ירידה של פי גודל אוכלוסייה יכולה בקלות להוביל למספרים לא אמינים של מושבות מוטציה לאוכלוסייה.
ישנם מספר רב של אפשרויות להרחבה או שינוי בפרוטוקול זה כדי להשיג הבנה רחבה יותר של חוסר יציבות הגנום במהלך הזדקנות תא mitotic. דוגמאות פשוטות כוללות ניתוח איך שינויים בפונקציות גן, שינויים בתקשורת, או שינויי מצב סביבתי אחרים לשנות את ההצטברות של מוטציות עם גיל. שיעורי מוטציה בתאים צעירים עם תפקוד גן שעבר שינוי או במצב המתאים יהיו נמדדו ומשמשים כדי לקבוע אם מוטציות מצטברות באופן שונה מהצפוי על ידי ערכי השיעור ואופן שונה מאשר באוכלוסיות תאי שליטה. אוכלוסיות תאים בנקודות שונות במהלך הזדקנות replicative עלולות להיחשף לגורמי לחץ מסוימים, כגון מיני חמצן תגובתי או סוכנים מזיקים DNA.חשיפה חולפת וקלה לסטרס חמצונים משמעותי לא שינתה את היכולת לבצע מיון תא (איור 3), אבל לחצים קשים יותר עלולים לסבך התאוששות של תאים. ניסויים ראשוניים יהיו צורך לוודא שעדיין יכולים להיות התאוששו תאי אמא ביעילות אחרי לחצים ספציפיים. בנוסף, המאפיינים התאיים של תאי אם מבודדים יכולים להיות מנותחים בפירוט, כוללים רמות של מיני חמצן מגיבים, מורפולוגיה של המיטוכונדריה וvacuolar, ומאפיינים פיסיולוגיים אחרים הקשורים להזדקנות 3. יתר על כן, תאי אמא יכולים להיות אוכלוסייה מתחילה לטיפול או מניפולציה נוסף. מאחר ותאים אם ובתה מופרדים פיזי במהלך ההליך, תאי הבת הם גם עדיין זמינים לניתוח. לדוגמא, שינויים במאפיינים פיסיולוגיים של תאי בת או הירושה סימטרית של מקרומולקולות הפגומה בין שמרי אם ותאי בת <sעד> 24 יכולים להיות בהשוואה לעיתוי של שינויים מעניינים בתדרים / שיעורי מוטציה. יכולים גם להיות מושגת תדרי מוטציה לאוכלוסיות תאי בת על מנת לנסות לדגמן אם יש ירושה סימטרית של מוטציות במהלך הזדקנות replicative. לסיכום, שילוב של ההעשרה של תאי אם דרך תא מגנטי מיון עם בדיקות תנודות מאפשר את היתרונות של ס מערכת מודל cerevisiae להיות מיושמת ביעילות לחקר מנגנונים אחראים להצטברות של שינויים גנטיים במהלך הזדקנות תא mitotic.
The authors have nothing to disclose.
עבודה זו נתמכה בחלקו על ידי מענק R00AG031911 מהמכון הלאומי להזדקנות של המכונים הלאומיים לבריאות לPHM התוכן של מאמר זה אינו משקף בהכרח דעות רשמיות של המכון הלאומי לבריאות.
Name of Material/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
EZ-Link Sulfo-NHS-LC-Biotin | Thermo Scientific | 21335 | 100mg |
Anti-Biotin Microbeads | Miltenyi Biotec | 130-090-485 | 2ml MicroBeads conjugated to monoclonal mouse anti-biotin antibodies (isotype: mouse IgG1) |
MACS LS columns | Miltenyi Biotec | 130-042-401 | 25 columns suitable for QuadroMACS separator |
QuadroMACS separator | Miltenyi Biotec | 130-090-976 | Separator Only |
QuadroMACS Starting Kit | Miltenyi Biotec | 130-091-051 | Includes: QuadroMACS Separator (130-090-976), MACS MultiStand (130-042-303), LS Columns (130-042-401), MACS 15ml Tube Rack (130-091-052), One 2ml unit of MACS MicroBeads. Note: Alternative systems include Dynabeads Biotin Binder and MagnaBind Magnetic Beads |
BD Falcon Cell Strainer, 40 µm | BD Biosciences | 352340 | 40 µm for use with BD Falcon 50 ml Conical Tubes. 50 per pack |
Trypan Blue | Sigma-Aldrich | T6146 | Powder, filtering after dissolving important to remove particulates |
Wheat germ agglutinin Alexa Fluor488 | Life Technologies | W11261 | Conjugates with different excitation/emission spectra could also be used |
ProLong Gold antifade reagent | Life Technologies | P36930 | 10 ml, other antifade reagents could also be used |