Summary

Имплантация фибрина гель на Мышь легких для изучения легких специфическую ангиогенеза

Published: December 21, 2014
doi:

Summary

Recapitulation of the organ-specific microenvironment, which stimulates local angiogenesis, is indispensable for successful regeneration of damaged tissues. This report demonstrates a novel method to implant fibrin gels on the lung surface of living mouse in order to explore how the lung-specific microenvironment modulates angiogenesis and alveolar regeneration in adult mouse.

Abstract

Последние значительные успехи в технике исследования стволовых клеток и биоинженерных сделали большой шаг вперед в использовании биоматериалов для регенерации и устранения повреждений в простых тканей в ортопедических и пародонта полей. Однако попытки восстановить структуры и функции более сложных трехмерных (3D) органов, таких как легкие были не очень успешными, потому что биологические процессы регенерации органов не были хорошо изучены. Становится ясно, что ангиогенез, образование новых кровеносных сосудов, играет ключевую роль в регенерации органов. Вновь образованные vasculatures не только доставляют кислород, питательные вещества и различные компоненты клеток, которые необходимы для регенерации органов, но также обеспечивают инструктивные сигналы регенерирующей местных тканей. Поэтому, чтобы успешно восстановить легкие у взрослого, необходимо повторять легких конкретных микросреды, в котором ангиогенез дисков регенерацию местных тканей легких. Хотя соnventional в естественных условиях ангиогенеза анализы, такие как подкожной имплантации внеклеточного матрикса (ЕСМ), обогащенный гидрогели (например, фибрин или коллагеновые гели или Matrigel – ECM смеси белков, выделяемый Engelbreth-Холм-рой мыши клеток саркомы), широко используемой для изучения Общие механизмы ангиогенеза, легких конкретных ангиогенез не были хорошо охарактеризованы, потому что методы ортотопической имплантации биоматериалов в легких не установлены. Цель этого протокола является внедрение уникальный метод имплантации фибрина гель на поверхности легких живой взрослой мыши, что позволяет для успешного рекапитуляции хозяина легких, полученных ангиогенеза внутри геля. Такой подход позволяет исследователям изучить механизмы, посредством которых легких конкретных микросреда контролирует ангиогенез и альвеолярной регенерации в нормальных, так и патологических состояний. Так, имплантированных биоматериалов выпуска и обеспечивать физических и химических сигналов в соседней лUNG ткани, имплантация этих биоматериалов на больного легкого может потенциально нормализовать соседние больные ткани, что позволяет исследователям разработать новые терапевтические подходы для различных видов заболеваний легких.

Introduction

Общая цель этого протокола является введение метод имплантации фибрина гель на поверхности легких у взрослых мышей, что позволяет исследователям характеризовать молекулярные механизмы легких сосудистой и альвеолярной развития, а также возможность использовать эти знания для того, чтобы развивать биомиметических материалов, способных из обобщал физиологической сосудистой легких и альвеол образование для лечения различных заболеваний легких.

Более 35 миллионов американцев страдают от хронических заболеваний легких, включая хроническое обструктивное заболевание легких и фиброз легких. Эти пациенты имеют долгосрочные хронические респираторные симптомы, такие как затрудненное дыхание, стеснение в груди, нытье кашель и усталость, которые существенно снижают их повседневную жизнь 1-3. Несмотря на большое количество усилий, чтобы разработать эффективные методы лечения этих заболеваний легких, в настоящее время нет никакого лечения; Поэтому, качество жизни этих больных бедных и экономической и человеческие затраты приветGH 4-7. В настоящее время трансплантация легких является единственным способом спасти пациентов с терминальной стадией хронических заболеваний легких. Тем не менее, из-за нехватки трансплантатов доноров, высокая стоимость, серьезные осложнения, и низкая выживаемость 8-11, трансплантация не оптимальный подход. Последние быстрый прогресс в инженерии тканей позволил ученым биоинженер имплантируемый легких путем заселения decellularized всего легкого с различными типами клеток-предшественников или индуцированных плюрипотентных стволовых (плюрипотентных) клеток 12,13. Тем не менее, эти легкие биоинженерии функциональным в животных-хозяев только в течение нескольких часов после имплантации 12,14,15. Использование биоматериалов для регенерации сложные структуры и функции легких также было довольно неудачным. Это может быть потому, что ключевые биологические процессы, которые управляют взрослых регенерации легких не были хорошо изучены. В легких, формирование сосудистой системы является одним из самых ранних и самых важных событий Дуриразвитие нг и регенерация 16-21. Вновь созданная vasculatures в легких не только доставляют кислород, питательные вещества и различные клеточные компоненты, необходимые для формирования органов, но и представляют собой поучительные регуляторные сигналы для окружающих клеток 22-25. Таким образом, ангиогенез играет ключевую роль в регенеративной alveolarization у взрослых легкие 24,26,27. Кроме того, дерегулирование ангиогенез способствует хронических заболеваний легких, таких как хроническая обструктивная болезнь легких (ХОБЛ) 28, бронхолегочной дисплазии (БЛД) 21-23 и фиброз легких 29. Таким образом, для разработки более эффективных стратегий для инженерных легкие или лечения хронических заболеваний легких, необходимо понять основные механизмы легких конкретных ангиогенеза.

Каждый орган отображает уникальные механические и химические свойства, которые могут отличаться от физиологических и патологических условиях 30-33. Это органо-специфическое microenvironменты регулируют эндотелиальные поведения клеток и организовать формирование сосудистой сети в органе-специфическим образом 24,34-36. Таким образом, для разработки более эффективных стратегий для регенерации легких, механизм, лежащий в основе легких конкретных ангиогенез нужно понимать. В то время как обычные в естественных условиях ангиогенеза анализы, такие как подкожной гидрогеля имплантации широко используются для ангиогенеза исследований 37-39, эти методы не воспроизводят специфические для органа ангиогенез. В последнее время, новый способ имплантировать Матригель в упругом плесени на легкого мыши был разработан и было показано, успешно набирать кровеносные сосуды и легкие эпителиальные клетки в гелях 22. Этот уникальный подход позволит исследователям изучить механизм легких конкретных ангиогенеза, а также взаимодействия между кровеносными сосудами и не-сосудистых клеток легких в физиологических и патологических условиях. С 1) Matrigel не подходит для клинического применения; 2) еLastic Используемая форма для отливки гель может повлиять на взаимодействие между гидрогелей и хозяин легочной ткани и 3) упругой плесень на легких потенциально приводит к нарушению функции легких и боли при дыхании, как более клинически значимого подхода, 3D матрица фибрина, содержащий ангиогенные факторы (сосудистый эндотелиальный фактор роста (VEGF) / основной фактор роста фибробластов (bFGF)) был имплантирован на легких мыши без заливки в пресс-форму упругого и успешно воспроизводятся хоста легких, полученных ангиогенез. Фибрина гель, полимерные волокна, полученные из расщепленного тромбином фибриногена, как известно, ловушки различные ангиогенных факторов, таких как bFGF и VEGF, чтобы ускорить ангиогенеза в естественных условиях 40,41. Из-за своей восстановительной способности и биоразлагаемого характера 42, фибрина гель широко используется в области тканевой инженерии.

Эта статья представляет собой новый и уникальный подход к имплантации фибрина гель на поверхности легких живого ADULт мыши и демонстрирует, что хозяин легких, полученных ангиогенез воспроизводятся внутри гелей в естественных условиях. Это метод, который позволяет исследователям изучать легких конкретных ангиогенез, вероятно, приведет к разработке новых терапевтических подходов для различных видов заболеваний легких и значительно продвинет вперед усилия, чтобы успешно восстанавливают взрослых легкое.

Protocol

ПРИМЕЧАНИЕ: в естественных условиях исследование на животных было проведено в строгом соответствии с рекомендациями, приведенными в руководстве по уходу и использованию лабораторных животных Национальных институтов здравоохранения. Протокол был рассмотрен и одобрен уходу и ис…

Representative Results

Чтобы исследовать, будет ли хост воспроизводятся легких, полученных сосудистой образование внутри биоматериалов имплантированных на легких, фибрина гели с добавлением основного ангиогенных факторов VEGF и bFGF (0, 10 и 100 нг / мл каждого) были имплантированы на поверхности живых легких мыше?…

Discussion

Эта статья вводит новый способ имплантировать биоматериалов на поверхности легких жизни взрослой мыши. С помощью этой системы, принимающей легких, полученных ангиогенез успешно воспроизводятся внутри материала. Эта система позволяет исследователи, чтобы исследовать перекрестные по…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана за счет средств Американской ассоциации сердца (AM), Министерства обороны США (BC074986), и Бостонской детской больницы факультета Career Development Fellowship (ТМ AM). Авторы благодарят Аманда Цзяна и Элизабет Цзяна для оказания технической помощи.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Fibrinogen from human placenta Sigma F4883 For fabrication of fibrin gel
Thrombin from bovine plasma Sigma T9549 For fabrication of fibrin gel
Recombinant mouse VEGF 164 R&D 493-MV For supplementation to fibrin gel
Recombinant mouse bFGF R&D 3139-FB For supplementation to fibrin gel
Rodent Intubation Stand Braintree Scientific INC RIS 100 For intubation
Fiber-Optic Light Source Fisher Scientific 12-565-35 For intubation
20G Elastic catheter B.Braun 4251652-02 For intubation
MiniVent Ventilator Harvard Apparatus CGS-8009 For ventilation
Stemi DV4 Steromicroscope Fisher Scientific 12-070-515 For surgey
Absobable suture Ethicon PDP304 Surgical suture
Antibody against CD31 BD Biosciences 553370 Immunohistochemistry
Antibody against AQP5 Abcam AB78486 Immunohistochemistry
Antibody against SP-B Millipore AB40876 Immunohistochemistry

References

  1. Donaldson, G. C., Seemungal, T. A., Bhowmik, A., Wedzicha, J. A. Relationship between exacerbation frequency and lung function decline in chronic obstructive pulmonary disease. Thorax. 57, 847-852 (2002).
  2. Lopez-Campos, J. L., Calero, C., Quintana-Gallego, E. Symptom variability in COPD: a narrative review. Int J Chron Obstruct Pulmon Dis. 8, 231-238 (2013).
  3. Ley, B., Collard, H. R., King, T. E. Clinical course and prediction of survival in idiopathic pulmonary fibrosis. Am J Respir Crit Care Med. 183, 431-440 (2011).
  4. Ferrer, M., et al. Chronic obstructive pulmonary disease stage and health-related quality of life. The Quality of Life of Chronic Obstructive Pulmonary Disease Study Group. Ann Intern Med. 127, 1072-1079 (1997).
  5. Reardon, J. Z., Lareau, S. C., ZuWallack, R. Functional status and quality of life in chronic obstructive pulmonary disease. Am J Med. 119, 32-37 (2006).
  6. De Vries, J., Kessels, B. L., Drent, M. Quality of life of idiopathic pulmonary fibrosis patients. Eur Respir J. 17, 954-961 (2001).
  7. Sullivan, S. D., Ramsey, S. D., Lee, T. A. The economic burden of COPD. Chest. 117, 5S-9S (2000).
  8. Orens, J. B., Garrity, E. R. General overview of lung transplantation and review of organ allocation. Proc Am Thorac Soc. 6, 13-19 (2009).
  9. Benden, C. Specific aspects of children and adolescents undergoing lung transplantation. Curr Opin Organ Transplant. 17, 509-514 (2012).
  10. Lyu, D. M., Zamora, M. R. Medical complications of lung transplantation. Proc Am Thorac Soc. 6, 101-107 (2009).
  11. Trulock, E. P., et al. Registry of the International Society for Heart and Lung Transplantation: twenty-fourth official adult lung and heart-lung transplantation report-2007. J Heart Lung Transplant. 26, 782-795 (2007).
  12. Weiss, D. J. Current status of stem cells and regenerative medicine in lung biology and diseases. Stem Cells. 32, 16-25 (2013).
  13. Ghaedi, M., et al. Human iPS cell-derived alveolar epithelium repopulates lung extracellular matrix. J Clin Invest. 123, 4950-4962 (2013).
  14. Ott, H. C., et al. Regeneration and orthotopic transplantation of a bioartificial lung. Nat Med. 16, 927-933 (2010).
  15. Petersen, T. H., et al. Tissue-engineered lungs for in vivo implantation. Science. 329, 538-541 (2010).
  16. Tuyl, M., et al. Angiogenic factors stimulate tubular branching morphogenesis of sonic hedgehog-deficient lungs. Dev Biol. 303, 514-526 (2007).
  17. Galambos, C., deMello, D. E. Molecular mechanisms of pulmonary vascular development. Pediatr Dev Pathol. 10, 1-17 (2007).
  18. McGrath-Morrow, S. A., et al. Vascular endothelial growth factor receptor 2 blockade disrupts postnatal lung development. Am J Respir Cell Mol Biol. 32, 420-427 (2005).
  19. White, A. C., Lavine, K. J., Ornitz, D. M. FGF9 and SHH regulate mesenchymal Vegfa expression and development of the pulmonary capillary network. Development. 134, 3743-3752 (2007).
  20. Zhao, L., Wang, K., Ferrara, N., Vu, T. H. Vascular endothelial growth factor co-ordinates proper development of lung epithelium and vasculature. Mech Dev. 122, 877-886 (2005).
  21. Stenmark, K. R., Abman, S. H. Lung vascular development: implications for the pathogenesis of bronchopulmonary dysplasia. Annu Rev Physiol. 67, 623-661 (2005).
  22. Mammoto, T., et al. LRP5 Regulates Development of Lung Microvessels and Alveoli through the Angiopoietin-Tie2 Pathway. . PLoS ONE. 7, e41596 (2012).
  23. Mammoto, T., Jiang, E., Jiang, A., Mammoto, A. ECM structure and tissue stiffness control postnatal lung development through the LRP5-Tie2 signaling system. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 49, 1009-1018 (2013).
  24. Ding, B. S., et al. Endothelial-derived angiocrine signals induce and sustain regenerative lung alveolarization. Cell. 147, 539-553 (2011).
  25. Crivellato, E. The role of angiogenic growth factors in organogenesis. Int J Dev Biol. 55, 365-375 (2011).
  26. Sakurai, M. K., et al. Vascular endothelial growth factor accelerates compensatory lung growth after unilateral pneumonectomy. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 292, 742-747 (2007).
  27. Panigrahy, D., et al. Epoxyeicosanoids promote organ and tissue regeneration. Proc Natl Acad Sci U S A. 110, 13528-13533 (2013).
  28. Voelkel, N. F., Douglas, I. S., Nicolls, M. Angiogenesis in chronic lung disease. Chest. 131, 874-879 (2007).
  29. Hanumegowda, C., Farkas, L., Kolb, M. Angiogenesis in pulmonary fibrosis: too much or not enough. Chest. 142, 200-207 (2012).
  30. Levental, K. R., et al. Matrix crosslinking forces tumor progression by enhancing integrin signaling. Cell. 139, 891-906 (2009).
  31. Mammoto, A., Mammoto, T., Ingber, D. E. Mechanosensitive mechanisms in transcriptional regulation. J Cell Sci. 125, 3061-3073 (2012).
  32. Westermann, D., et al. Role of left ventricular stiffness in heart failure with normal ejection fraction. Circulation. 117, 2051-2060 (2008).
  33. Merchante, N., et al. Liver stiffness predicts clinical outcome in human immunodeficiency virus/hepatitis C virus-coinfected patients with compensated liver cirrhosis. Hepatology. 56, 228-238 (2012).
  34. Ding, B. S., et al. Inductive angiocrine signals from sinusoidal endothelium are required for liver regeneration. Nature. 468, 310-315 (2010).
  35. Fidler, I. J. Angiogenic heterogeneity: regulation of neoplastic angiogenesis by the organ microenvironment. J Natl Cancer Inst. 93, 1040-1041 (2001).
  36. Folkman, J. How is blood vessel growth regulated in normal and neoplastic tissue? G.H.A. Clowes memorial Award lecture. Cancer Res. 46, 467-473 (1986).
  37. Mammoto, A., et al. A mechanosensitive transcriptional mechanism that controls angiogenesis. Nature. 457, 1103-1108 (2009).
  38. Malinda, K. M. In vivo matrigel migration and angiogenesis assay. Methods Mol Biol. 467, 287-294 (2009).
  39. Norrby, K. In vivo models of angiogenesis. J Cell Mol Med. 10, 588-612 (2006).
  40. Mammoto, T., Jiang, A., Jiang, E., Mammoto, A. Platelet rich plasma extract promotes angiogenesis through the angiopoietin1-Tie2 pathway. Microvasc Res. 89, 15-24 (2013).
  41. Mosesson, M. W. Fibrinogen and fibrin structure and functions. J Thromb Haemost. 3, 1894-1904 (2005).
  42. Bensaid, W., et al. A biodegradable fibrin scaffold for mesenchymal stem cell transplantation. Biomaterials. 24, 2497-2502 (2003).
  43. Teichert-Kuliszewska, K., et al. Biological action of angiopoietin-2 in a fibrin matrix model of angiogenesis is associated with activation of Tie2. Cardiovasc Res. 49, 659-670 (2001).
  44. Lafleur, M. A., Handsley, M. M., Knauper, V., Murphy, G., Edwards, D. R. Endothelial tubulogenesis within fibrin gels specifically requires the activity of membrane-type-matrix metalloproteinases (MT-MMPs). J Cell Sci. 115, 3427-3438 (2002).
  45. Collen, A., et al. Aberrant fibrin formation and cross-linking of fibrinogen Nieuwegein, a variant with a shortened Aalpha-chain, alters endothelial capillary tube formation. Blood. 97, 973-980 (2001).
  46. Mammoto, T., et al. Mechanochemical Control of Mesenchymal Condensation and Embryonic Tooth Organ Formation. Dev Cell. 21, 758-769 (2011).
  47. Murphy, K. C., Leach, J. K. A reproducible, high throughput method for fabricating fibrin gels. BMC Res Notes. 5, 423 (2012).
  48. Matar, A. F., Hill, J. G., Duncan, W., Orfanakis, N., Law, I. Use of biological glue to control pulmonary air leaks. Thorax. 45, 670-674 (1990).
  49. Thetter, O. Fibrin adhesive and its application in thoracic surgery. Thorac Cardiovasc Surg. 29, 290-292 (1981).
  50. Rahbarghazi, R., et al. Juxtacrine and paracrine interactions of rat marrow-derived mesenchymal stem cells, muscle-derived satellite cells, and neonatal cardiomyocytes with endothelial cells in angiogenesis dynamics. Stem Cells Dev. 22, 855-865 (2013).
  51. Nucera, S., Biziato, D., De Palma, M. The interplay between macrophages and angiogenesis in development, tissue injury and regeneration. Int J Dev Biol. 55, 495-503 (2011).
  52. Joensuu, K., et al. Interaction between marrow-derived human mesenchymal stem cells and peripheral blood mononuclear cells in endothelial cell differentiation. Scand J Surg. 100, 216-222 (2011).
  53. Takakura, N. Role of intimate interactions between endothelial cells and the surrounding accessory cells in the maturation of blood vessels. J Thromb Haemost. 9 Suppl 1, 144-150 (2011).
  54. Plantier, L., Boczkowski, J., Crestani, B. Defect of alveolar regeneration in pulmonary emphysema: role of lung fibroblasts. Int J Chron Obstruct Pulmon Dis. 2, 463-469 (2007).
  55. Belair, D. G., Murphy, W. L. Specific VEGF sequestering to biomaterials: influence of serum stability. Acta Biomater. 9, 8823-8831 (2013).
  56. Wong, C., Inman, E., Spaethe, R., Helgerson, S. Fibrin-based biomaterials to deliver human growth factors. Thromb Haemost. 89, 573-582 (2003).
  57. Stolzing, A., Colley, H., Scutt, A. Effect of age and diabetes on the response of mesenchymal progenitor cells to fibrin matrices. Int J Biomater. 2011, 378034 (2011).
  58. Vailhe, B., Ronot, X., Tracqui, P., Usson, Y., Tranqui, L. In vitro angiogenesis is modulated by the mechanical properties of fibrin gels and is related to alpha(v)beta3 integrin localization. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 33, 763-773 (1997).
  59. Kniazeva, E., Kachgal, S., Putnam, A. J. Effects of extracellular matrix density and mesenchymal stem cells on neovascularization in vivo. Tissue Eng Part A. 17, 905-914 (2011).
  60. Angio, C. T., Maniscalco, W. M. The role of vascular growth factors in hyperoxia-induced injury to the developing lung. Front Biosci. 7, 1609-1623 (2002).
  61. Kasahara, Y., et al. Inhibition of VEGF receptors causes lung cell apoptosis and emphysema. J Clin Invest. 106, 1311-1319 (2000).
  62. Owen, C. A. Roles for proteinases in the pathogenesis of chronic obstructive pulmonary disease. Int J Chron Obstruct Pulmon Dis. 3, 253-268 (2008).
  63. Demedts, I. K., et al. Elevated MMP-12 protein levels in induced sputum from patients with COPD. Thorax. 61, 196-201 (2006).
  64. Haq, I., et al. Association of MMP-2 polymorphisms with severe and very severe COPD: a case control study of MMPs-1, 9 and 12 in a European population. BMC Med Genet. 11, 7 (2010).
  65. Mercer, P. F., et al. MMP-9, TIMP-1 and inflammatory cells in sputum from COPD patients during exacerbation. Respir Res. 6, 151 (2005).
  66. Matute-Bello, G., et al. Essential role of MMP-12 in Fas-induced lung fibrosis. Am J Respir Cell Mol Biol. 37, 210-221 (2007).
  67. Sivakumar, P., Gupta, S., Sarkar, S., Sen, S. Upregulation of lysyl oxidase and MMPs during cardiac remodeling in human dilated cardiomyopathy. Mol Cell Biochem. 307, 159-167 (2008).
  68. Gomperts, B. N., Strieter, R. M. Stem cells and chronic lung disease. Annu Rev Med. 58, 285-298 (2007).
  69. Lau, A. N., Goodwin, M., Kim, C. F., Weiss, D. J. Stem cells and regenerative medicine in lung biology and diseases. Mol Ther. 20, 1116-1130 (2012).
check_url/fr/52012?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Mammoto, T., Mammoto, A. Implantation of Fibrin Gel on Mouse Lung to Study Lung-specific Angiogenesis. J. Vis. Exp. (94), e52012, doi:10.3791/52012 (2014).

View Video