Summary

Veloce fluorescente<em> In Situ</em> Protocollo di ibridazione per Xist RNA combinata con immunofluorescenza di istone modifica in cromosoma X inattivazione

Published: November 26, 2014
doi:

Summary

We developed an easily customized strand-specific fluorescent in situ hybridization (FISH) protocol combined with immunofluorescence. This allows for a detailed examination of RNA dynamics with simultaneous insight into the chromatin structure, nuclear organization, and transcriptional regulation at the single cell level.

Abstract

Combinando RNA ibridazione in situ fluorescente (FISH) con immunofluorescenza (immuno-FISH) crea una tecnica che può essere impiegata a livello di singola cellula per rilevare la dinamica spaziale della localizzazione RNA con visione simultanea nella localizzazione delle proteine, modificazioni epigenetiche e altri dettagli che può essere evidenziato mediante immunofluorescenza. Inattivazione del cromosoma X è un paradigma per lungo RNA non codificante (lncRNA) mediata silenziamento genico. Trascrizione specifico (Xist) accumulo lncRNA X-inattiva (chiamato nuvola Xist) su uno dei due cromosomi X nelle femmine di mammifero è un passo fondamentale per avviare l'inattivazione del cromosoma X. Xist RNA direttamente o indirettamente interagisce con vari enzimi che modificano la cromatina e introduce distinti paesaggi epigenetici alla inattiva cromosoma X (Xi). Una nota caratteristica epigenetica del Xi è l'istone H3 trimetil-lisina 27 (H3K27me3) modifica. Qui, descriviamo un immuno-FISH semplice e veloceprotocollo per la rilevazione Xist RNA utilizzando RNA FISH con sonde multiple oligonucleotide accoppiato con immunofluorescenza di H3K27me3 per esaminare la localizzazione di Xist RNA e modificazioni epigenetiche associate. Utilizzando sonde oligonucleotidiche risultati in un tempo di incubazione più breve e la rilevazione più sensibile di Xist RNA rispetto alle sonde di RNA trascritto in vitro (ribosonde). Questo protocollo fornisce un potente strumento per comprendere le dinamiche di lncRNAs e la sua modificazione epigenetica associato, la struttura della cromatina, l'organizzazione nucleare e regolazione trascrizionale.

Introduction

Mammalian cromosoma X inattivazione (XCI) è una strategia per compensare lo squilibrio nel dosaggio del gene X-linked tra XX e XY, in cui uno dei due cromosomi X nelle femmine è trascrizionalmente inattivato 1. Inattivazione del cromosoma X è un ottimo sistema modello per lungo RNA non codificante (lncRNA) di ricerca. Inattivazione del cromosoma X è regolata da più lncRNAs, ed è stato ampiamente studiato negli ultimi decenni per scoprire i meccanismi di crosstalk tra lncRNAs, la trascrizione, la struttura della cromatina e l'organizzazione nucleare 2, 3.

Il centro X inattivazione (XIC) situato sul cromosoma X è un locus genetico complesso formato da un certo numero di geni che producono RNA non codificanti 4. X-inattiva trascrizione specifico (Xist) lncRNA nei mammiferi eutherian è uno di questi lncRNA che svolge un ruolo cruciale nel cromosoma X inattivazione 5,6. Trascrizioni Xist circondano la posizione del future Xi per avviare inattivazione del cromosoma X, e appaiono come una nuvola quando visualizzato utilizzando RNA FISH; questa formazione è denominato "Xist Cloud" 7. Dal Xist RNA interagisce con vari enzimi che modificano la cromatina, co-localizzazione delle nuvole Xist con diverse modificazioni epigenetiche per cromatina silente e trascrizione repressiva si osserva durante cromosoma X inattivazione 8. Ad esempio, Xist RNA interagisce con Polycomb complesso repressione 2 (PRC2) che è responsabile per H3K27me3 e induce uno stato cromatina repressione 9. Il verificarsi della nuvola Xist sul Xi e la sua co-localizzazione con la modifica intensiva H3K27me3 rappresenta un paesaggio eterocromatina facoltativa del Xi 10,11.

Tecniche di citogenetica, come il DNA / RNA FISH hanno percorso una lunga strada dal metodo tradizionale utilizzando sonde radiomarcate 12 alle tecniche più recenti e avanzate con maggiore sensibilità eimmagini fluorescenti utilizzando più sonde oligonucleotidiche 13,14. DNA / RNA FISH accoppiato con immunofluorescenza è stato regolarmente utilizzato come strumento citologico per comprendere l'organizzazione spazio-temporale nucleare, localizzazione RNA, la struttura della cromatina e modifiche. La preparazione sonda più standard per RNA FISH implica l'uso di plasmide o cromosomiche artificiale (BAC) cloni batterici e la loro successiva etichettatura o con traduzione nick o adescamento casuali 15. Tuttavia, quasi il 70% dei geni nei topi e il 40% dei geni nell'uomo mostrano una sovrapposizione di senso e antisenso trascrizioni 16, quindi richiede un metodo FISH specifico strand per distinguere senso e antisenso trascrizioni. In vitro sonde RNA trascritti (riboprobe ) sono spesso utilizzati per specifici filamento di RNA FISH 17,18; Tuttavia, ciò comporta la preparazione di un clone plasmidico o prodotti di PCR con T7, SP6, T3 o promotore e riboprobes sintetizzare. Inoltre, ribosonde derivato da genomic DNA o cDNA contengono spesso regioni non-specifici e gli elementi ripetitivi, che si traducono in alto rumore di fondo. Un altro problema è che riboprobes, che sono a poche centinaia di nucleotidi di lunghezza e contengono più fluorofori, non possono penetrare efficacemente nel nucleo. Per aggirare questo, più sonde oligonucleotidiche marcate con brevi un unico fluoroforo alla fine sono stati sviluppati che hanno una buona sensibilità, potenza del segnale uniforme, e la facilità di purificazione e movimentazione 14. Inoltre, gli oligonucleotidi di DNA sono generalmente più stabile di RNA. Abbiamo applicato una simile strategia di utilizzo di oligonucleotidi in Xist RNA FISH 19 con immunofluorescenza per comprendere le dinamiche epigenetici del Xi indotte da Xist lncRNA durante il processo di inattivazione del cromosoma X. Questo protocollo descrive la creazione di sonde oligonucleotidiche e corretta preparazione di cellule, così come l'utilizzo di immunofluorescenza e RNA FISH. Xist RNA FISH utilizzando oligonucle multiplaotides è economicamente efficiente nel lungo termine se Xist RNA FISH viene eseguita di routine nel proprio laboratorio. Questa tecnica può essere utilizzata per identificare lncRNAs nelle cellule e contemporaneamente mappatura sua co-localizzazione con modificazioni epigenetiche o fattori. Uno dei principali vantaggi del protocollo è la capacità di modificare facilmente per soddisfare i propri interessi di ricerca.

Protocol

1. Sonda Preparazione Ottenere più oligonucleotidi unici in Xist (oligonucleotidi 20-30 nucleotidi di lunghezza, 63-65 temperatura di fusione ºC, tabella 1), con una modifica 5'-amino e sospendere in acqua. Pool quantità equimolari di oligonucleotidi con 5'-amino modifica (totale 4,5 mg) e l'etichetta con colorante fluorescente ammina reattiva seguendo le istruzioni del produttore. Sciogliere gli oligonucleotidi pool in finale 5 ml di acqua priva di nucleasi …

Representative Results

Immagini rappresentative della rapida immuno-FISH sono mostrati nella Figura 1A. Co-localizzazione del segnale Xist RNA nuvola e H3K27me3 sul Xi è stato rilevato nel differenziare cellule femminili. Al giorno 12 sulla differenziazione, più del 90% delle cellule EB aveva una nuvola Xist (Figura 1B). Sonde oligonucleotidiche Breve efficientemente penetrati nei nuclei, portando ad una visualizzazione di quasi tutti H3K27me3 segnali co-localizzato con Xist RNA (Figura 1C;…

Discussion

In questo lavoro, abbiamo presentato una rapida protocollo immuno-FISH, che richiede meno di 5 ore per completare la preparazione vetrino, Xist RNA FISH, e immunofluorescenza per H3K27me3. In confronto con l'approccio generale immuno-FISH per Xist RNA rilevazione, che di solito ha bisogno di incubazione durante la notte per l'RNA FISH, questo protocollo non solo riduce significativamente il tempo trascorso, ma migliora anche la sensibilità di immuno-FISH con sonde oligonucleotidi.

P…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Hongjae Sunwoo for helpful advice for oligonucleotide design in RNA FISH. We also thank Serenity Curtis for editing the manuscript. N.Y. was supported by a Postdoctoral Fellowship for Research Abroad of the Japan Society for the Promotion of Science (JSPS). This work was supported by the NIH (RO1-GM102184), the March of Dimes Research Foundation (#6-FY12-337), and the Developmental Fund and Trustee Grant at Cincinnati Children’s Hospital Medical Center to Y.O.

Materials

oligonucleotides with 5’-amine modification IDT
Alexa Fluor 488 Reactive Dye Life Technologies A32750
MicroSpin G-25 columns GE Healthcare 27-5325-01
Cytospin 2 Shandon 59900102
Bovine Serum Albumin, Molecular Biology Grade (for hybridization buffer) Roche 10715859103
Histone H3K27me3 antibody Active Motif 61017
Accutase Innovative Cell Technologies AT104
Alexa Fluor 555 Goat Anti-Mouse, highly cross-adsorbed Life Technologies A21424
ProLong Gold antifade reagent Life Technologies P36931

References

  1. Payer, B., Lee, J. T. X chromosome dosage compensation: how mammals keep the balance. Annu Rev Genet. 42, 733-772 (2008).
  2. Lee, J. T. Gracefully ageing at 50, X-chromosome inactivation becomes a paradigm for RNA and chromatin control. Nat Rev Mol Cell Biol. 12, 815-826 (2011).
  3. Gendrel, A. V., Heard, E. Fifty years of X-inactivation research. Development. 138, 5049-5055 (2011).
  4. Froberg, J. E., Yang, L., Lee, J. T. Guided by RNAs: X-inactivation as a model for lncRNA function. J Mol Biol. 425, 3698-3706 (2013).
  5. Penny, G. D., Kay, G. F., Sheardown, S. A., Rastan, S., Brockdorff, N. Requirement for Xist in X chromosome inactivation. Nature. 379, 131-137 (1996).
  6. Marahrens, Y., Panning, B., Dausman, J., Strauss, W., Jaenisch, R. Xist-deficient mice are defective in dosage compensation but not spermatogenesis. Genes Dev. 11, 156-166 (1997).
  7. Clemson, C. M., McNeil, J. A., Willard, H. F., Lawrence, J. B. XIST RNA paints the inactive X chromosome at interphase: evidence for a novel RNA involved in nuclear/chromosome structure. J Cell Biol. 132, 259-275 (1996).
  8. Sado, T., Brockdorff, N. Advances in understanding chromosome silencing by the long non-coding RNA. Xist. Phil Trans R Soc B. 368, 20110325-20 (2013).
  9. Zhao, J., Sun, B. K., Erwin, J. A., Song, J. J., Lee, J. T. Polycomb proteins targeted by a short repeat RNA to the mouse X chromosome. Science. 322, 750-756 (2008).
  10. Plath, K., et al. Role of histone H3 lysine 27 methylation in X inactivation. Science. 300, 131-135 (2003).
  11. Silva, J., et al. Establishment of histone h3 methylation on the inactive X chromosome requires transient recruitment of Eed-Enx1 polycomb group complexes. Dev Cell. 4, 481-495 (2003).
  12. Gall, J. G. Differential synthesis of the genes for ribosomal RNA during amphibian oogenesis. Proc Natl Acad Sci U S A. 60, 553-560 (1968).
  13. Femino, A. M., Fay, F. S., Fogarty, K., Singer, R. H. Visualization of single RNA transcripts in situ. Science. 280, 585-590 (1998).
  14. Raj, A., van den Bogaard, P., Rifkin, S. A., van Oudenaarden, A., Tyagi, S. Imaging individual mRNA molecules using multiple singly labeled probes. Nat Methods. 5, 877-879 (2008).
  15. Chaumeil, J., Augui, S., Chow, J. C., Heard, E. Combined immunofluorescence, RNA fluorescent in situ hybridization, and DNA fluorescent in situ hybridization to study chromatin changes, transcriptional activity, nuclear organization, and X-chromosome inactivation. Methods Mol Biol. 463, 297-308 (2008).
  16. Katayama, S., et al. Antisense transcription in the mammalian transcriptome. Science. 309, 1564-1566 (2005).
  17. Ogawa, Y., Xite Lee, J. T. X-inactivation intergenic transcription elements that regulate the probability of choice. Mol Cell. 11, 731-743 (2003).
  18. Panning, B. X inactivation in mouse ES cells: histone modifications and FISH. Methods Enzymol. 376, 419-428 (2004).
  19. Khalil, A. M., et al. Many human large intergenic noncoding RNAs associate with chromatin-modifying complexes and affect gene expression. Proc Natl Acad Sci U S A. 106, 11667-11672 (2009).
  20. Martin, G. R., Evans, M. J. Differentiation of clonal lines of teratocarcinoma cells: formation of embryoid bodies in vitro. Proc Natl Acad Sci U S A. 72, 1441-1445 (1975).
  21. Lee, J. T., Lu, N. Targeted mutagenesis of Tsix leads to nonrandom X inactivation. Cell. 99, 47-57 (1999).
  22. Zhang, L. F., et al. Telomeric RNAs mark sex chromosomes in stem cells. Génétique. 182, 685-698 (2009).
  23. Raj, A., Tyagi, S. Detection of individual endogenous RNA transcripts in situ using multiple singly labeled probes. Methods Enzymol. 472, 365-386 (2010).
  24. Kimura, H., Hayashi-Takanaka, Y., Goto, Y., Takizawa, N., Nozaki, N. The organization of histone H3 modifications as revealed by a panel of specific monoclonal antibodies. Cell Struct Funct. 33, 61-73 (2008).
  25. Ogawa, Y., Sun, B. K., Lee, J. T. Intersection of the RNA interference and X-inactivation pathways. Science. 320, 1336-1341 (2008).
  26. Kohlmaier, A., et al. A chromosomal memory triggered by Xist regulates histone methylation in X inactivation. PLoS Biol. 2, 171 (2004).
  27. Wang, K. C., Chang, H. Y. Molecular mechanisms of long noncoding RNAs. Mol Cell. 43, 904-914 (2011).
check_url/fr/52053?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Yue, M., Charles Richard, J. L., Yamada, N., Ogawa, A., Ogawa, Y. Quick Fluorescent In Situ Hybridization Protocol for Xist RNA Combined with Immunofluorescence of Histone Modification in X-chromosome Inactivation. J. Vis. Exp. (93), e52053, doi:10.3791/52053 (2014).

View Video