Summary

Myh6-Promotörle Seçim ile kombinasyonu ES-Hücre-Programlama dayanarak Kemirgen Kardiyak Kalp Pili Hücre Agregaların Üretimi

Published: February 17, 2015
doi:

Summary

Bu protokol, kemirgen pluripotent kök hücreler (PSC) fonksiyonel sinüs düğüm doku üretmek açıklamaktadır. T-Box3 (TBX3) ekspresyonu artı kalp Myosin ağır zincir (Myh6) promotör antibiyotik seçimi son derece saf kalp pili hücre agrega yol açar. Bu "İsteyerek-sinoatrial-organları" ("iSABs"), son derece dayak oranları arttı göstermek% 80'in üzerinde kalp pili hücreleri içeren ve miyokard ex vivo pace edebiliyoruz.

Abstract

"Hasta sinüs sendromu" Tedavi yapay kalp pili dayanmaktadır. Bunlar pil arızası ve enfeksiyonlar gibi tehlikeleri ayı. Ayrıca, hormon eksikliği yanıt ve genel prosedür maliyeti yoğundur. PSC'ler oluşturulan "Biyolojik kalp pilleri" bir alternatif haline gelebilir, ancak Embriyoid Oluşumu kalp pili hücrelerinin tipik içeriği (EBS) son derece düşüktür. açıklanan protokol Myh6-organizatörü bazlı antibiyotik seçimi ile sinüs düğümü indükleyici TBX3 yoluyla kemirgen PSC'lerin "ileri programlama" birleştirir. Bu>% 80 fizyolojik fonksiyonel kalp pili hücrelerinin tutarlı kardiyomiyosit agrega verir. Bu "uyarılmış-sinoatrial-organları" ("iSABs") kendiliğinden fare kalplerinden izole düğüm hücrelere karşılık gelen henüz ulaşılmamış frekanslarda (400-500 bpm) olarak sözleşme ve kemirgen miyokard ex vivo pace edebiliyoruz. Açıklanan protokol oldukça saf sinüs kullanmaNodal tek hücreler in vitro ilaç testi için kullanılabilir, ki burada, örneğin oluşturulabilir. Ayrıca, bu protokole göre üretilen iSABs kalp doku mühendisliği yolunda çok önemli bir adım olabilir.

Introduction

dönem "hasta sinüs sendromu" kalp pili sisteminin bozulmasına yol açan birden hastalıkları özetler. Bu patolojik, semptomatik sinüs bradikardi, sinoatrial blok, sinüs tutuklama yanı sıra taşikardi-bradikardi sendromu oluşur. Böylece, bir "hasta sinüs sendromu", genellikle böyle bir iskemik kalp hastalığı, kardiyomiyopati ya da miyokardit gibi genel kalp hastalıkları eşlik ediyor. Şu anda, tedavi yaklaşımları elektrik pili implantasyonu dayanmaktadır. Ancak, bu tür enfeksiyonların ve pil arızası gibi risklerin bir dizi ile birlikte gider. Genel olarak, komplikasyonların insidansı halen hastaların yapay kalp pili implante olan çok yüksektir. Endojen kalp karşı Ayrıca, bu cihazlar, hormon stimülasyonuna yanıt vermez.

Gelecekteki bir alternatif olan PSC'ler hizmet verebilir "biyolojik kalp pili" durumu güveniyor olabilirUygun bir hücre kaynağı olan ve aynı zamanda in vitro ilaç testi için oldukça yararlı olacaktır. Ancak, büyük bir sorun embriyoid organları (EBS) içindeki sinüs düğüm hücrelerin çok nadir görünüm yatıyor – bu genellikle ~% 0.5 1 aşmaz.

Daha önce, bu özel kardiyomiyosit alt tiplerine karşı "ileri programlama", yani ilgili Mesoderm-özgü arka 1 (MesP1) ve NK2 transkripsiyon faktörü, lokus 5 (Nkx2.5) 2 gibi farklı erken kardiyovasküler transkripsiyon faktörlerinin aşırı ifadesi yoluyla mümkün olduğu gösterilmiştir, 3. Normal boyut ve sinoatriyal düğüm (SAN) bir fonksiyonu için, T-box transkripsiyon faktörü Tbx3 pili gen programının başlatılmasını ve SAN 4 farklılaşmasını kontrol ettiği gösterilmiştir olan, son derece önemlidir. Bu fonksiyonel kalp pili hücrelerinin görünümünü gelişmiş iken, içeriği hala tüm cardiomyocytic hücre popülasyonu içinde ~ 40% geçmedi.

Bu nedenle, ek bir Myh6-organizatörü bazlı antibiyotik seçimi adım 5 bizim tarafından tanıtıldı. In vitro ekili bir kemirgen kalbin olanlar ve karşılaştırılabilir yaklaşıldığıdır ilk kez in vitro yüksek artış yenerek frekansları (> 400 bpm) sergilerler; Bu sonuçta henüz farkedilmemiş kardiyomiyosit agrega (iSABs "" uyarılmış Çin-atriyal organları ") yol açar bir murin kalp 6 izole sinüs düğüm hücreleri. İzoprenalin yönetimi altında 550 bpm bile dayak frekansları elde edilir. Özellikle, iSABs 7 analizleri geniş fizyolojik itibaren belirgin% 80'in üzerinde fonksiyonel düğüm hücreleri oluşur. Son zamanlarda, çeşitli yaklaşımlar doğrudan yeniden programlama 19 kullanılarak Sinus düğüm hücreleri oluşturmak için, yüzey 16,17 tarif edildi küçük moleküller ile 14 ya da farmakolojik tedavi işaretler. Ancak, bu yöntemlerin hiçbiri kalp pili hücrelerinin böyle bir yüksek saflıkta yol açtı ve murin yakın frekansları yenerek osanat iSABs görüldüğü gibi.

Dahası, spontan dayak aktivitesini kaybetmiş ekili yetişkin fare ventriküler dilimleri bir ex vivo modelde, iSABs, dilim dokusu içine entegre böylece kendiliğinden aktif kalan ve sağlam kasılmaların 7 kalp dilimleri pacing yeteneğine sahiptir. Bu iSABs üretimi için ayrıntılı bir protokol bu yazıda açıklanmıştır.

Protocol

1. Öneriler Başlamadan Önce Onlar sinüs düğümü hücrelerine doğru ayırt çünkü mikoplazma ile kontamine PSC'ler kullanmayın. Protokolü başlamadan önce mikoplazma kontaminasyonu için test. Mikoplazmalar hızlı, son derece duyarlı bir PCR kiti kullanılarak bu yapın ve, üreticinin protokolü izleyin. Her bir Petri kabı (aşama 2.3.4), kaplama, bir 10 sm, 37 ° C'de 1 saat boyunca soğuk su balığı deri steril 7 mi,% 0.1 jelatin ile 2 hücre kültür çanağı…

Representative Results

açıklanan protokol fare kalp dayak frekansına yakın (film gösterilir) PSC'ler yaklaşık 450 bpm bir dayak frekansı ile iSABs üretimi sağlar. Şekil 1 'de gösterildiği gibi, iSABs ayrışmasından (aşama 2.8.8) sonra gözlenen tek hücre sinüs düğümü (mil ve örümcek hücreleri) hücrelerin, tipik şeklini gösterir. Bu hücreler bilinen yüksek hızlı protein fonksiyonu için önemli olduğu hiperpolarizasyon aktive siklik nükleotid kapılı katyon kanalı 4 (Hcn4), Connexin4…

Discussion

yetenek "biyolojik kalp pili" anlamında uygun kalp ritminin sulandırma izin verebilir hücre kaynaklı kalp pili kök hücreler üretmek için. Aynı şekilde, in vitro uyuşturucu testi onların durumu yararlanacaktır. PSC'leri kalp pili hücresi özellikleri 8,9,10,11,12,13 ile kardiyomiyositlere dahil memeli vücudunun herhangi bir hücre türüne yol açabilir. Ancak, genellikle "Embriyoid Bodies" içinde hücre popülasyonları kaçınılmaz güvenilir bir seçim ve izolasyon s…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Materials

Name of the Material/Equipment Company Catalog Number
Iscove's liquid medium with stable glutamine Biochrom AG FG 0465
DMEM liquid medium without Na-pyruvate, with stable glutamine Biochrom AG FG 0435
CLS type IV, CLS IV Biochrom AG C4-22
Non-essential amino acids Biochrom AG K 0293
FBS Superior Biochrom AG S 0615
Sodium pyruvate (100 mM) Biochrom AG L 0473
G 418-BC liquid (ready-to-use solution), sterile Biochrom AG A 2912
Reagent reservoir PP f.multichannel pip. 60ml,sterile Brand 703409
Accutase eBioscience,Inc. 00-4555-56
Eppendorf Xplorer/Xplorer plus, electronic pipette Eppendorf 4861000155
Falcon Cell Strainer 40µm Falcon 352340
Penicillin/Streptomycin  GE Healthcare P11-010
Petri Dishes Greiner BioOne 663102
DPBS without Ca and Mg PAN-Biotech P04-36500
Fetal bovine serum PAN-Biotech P30-3302
Leukemia inhibitory factor Phoenix Europe GmbH LIF-250
Quadratic petri dishes Roth PX67.1
Gelatin from cold water fish skin SigmaAldrich G7765
2-Mercaptoethanol SigmaAldrich M3148 
1-Thioglycerol SigmaAldrich M6145
Tissue culture dishes TPP 93100
Tissue culture flask TPP 90076
Tissue culture test plates (24 well) TPP 92424

References

  1. Wobus, A. M., Wallukat, G., Hescheler, J. Pluripotent mouse embryonic stem cells are able to differentiate into cardiomyocytes expressing chronotropic responses to adrenergic and cholinergic agents and Ca2+ channel blockers. Differentiation. 48 (3), 173-182 (1991).
  2. David, R., et al. MesP1 drives vertebrate cardiovascular differentiation through Dkk-1-mediated blockade of Wnt-signalling. Nat Cell Biol. 10, 338-345 (2008).
  3. David, R., et al. Forward programming of pluripotent stem cells towards distinct cardiovascular cell types. Cardiovasc Res. 84 (2), 263-272 (2009).
  4. Hoogaars, W. M., et al. Tbx3 controls the sinoatrial node gene program and imposes pacemaker function on the atria. Genes Dev. 21 (9), 1098-1112 (2007).
  5. Klug, M. G., Soonpaa, M. H., Koh, G. Y., Field, L. J. Genetically selected cardiomyocytes from differentiating embronic stem cells form stable intracardiac grafts. J Clin Invest. 98 (1), 216-224 (1996).
  6. Marger, L., et al. Pacemaker activity and ionic currents in mouse atrioventricular node cells. Channels (Austin). 5 (3), 241-250 (2011).
  7. Jung, J. J., et al. Programming and isolation of highly pure physiologically and pharmacologically functional sinus-nodal bodies from pluripotent stem cells). Stem cell reports. 2 (5), 592-605 (2014).
  8. Maltsev, V. A., Wobus, A. M., Rohwedel, J., Bader, M., Hescheler, J. Cardiomyocytes differentiated in vitro from embryonic stem cells developmentally express cardiac-specific genes and ionic currents. Circulation research. 75 (2), 233-244 (1994).
  9. He, J. Q., Ma, Y., Lee, Y., Thomson, J. A., Kamp, T. J. Human embryonic stem cells develop into multiple types of cardiac myocytes: action potential characterization. Circ Res. 93 (1), 32-39 (2003).
  10. Yanagi, K., et al. Hyperpolarization-activated cyclic nucleotide-gated channels and T-type calcium channels confer automaticity of embryonic stem cell-derived cardiomyocytes. Stem cells. 25 (11), 2712-2719 (2007).
  11. Barbuti, A., et al. Molecular composition and functional properties of f-channels in murine embryonic stem cell-derived pacemaker cells. J Mol Cell Cardiol. 46 (3), 343-351 (2009).
  12. Ma, J., et al. High purity human-induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes: electrophysiological properties of action potentials and ionic currents. American journal of physiology. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 301 (5), H2006-H2017 (2011).
  13. David, R., Franz, W. M. From pluripotency to distinct cardiomyocyte subtypes. Physiology (Bethesda). 27 (3), 119-129 (2012).
  14. Scavone, A., et al. Embryonic stem cell-derived CD166+ precursors develop into fully functional sinoatrial-like cells). Circ Res. 113 (4), 389-398 (2013).
  15. Morikawa, K., et al. Identification, isolation and characterization of HCN4-positive pacemaking cells derived from murine embryonic stem cells during cardiac differentiation. Pacing Clin Electrophysiol. 33 (33), 290-303 (2010).
  16. Wiese, C., et al. Formation of the sinus node head and differentiation of sinus node myocardium are independently regulated by Tbx18 and Tbx3. Circ Res. 104 (3), 388-397 (2009).
  17. Kleger, A., et al. Modulation of calcium-activated potassium channels induces cardiogenesis of pluripotent stem cells and enrichment of pacemaker-like cells. Circulation. 122 (18), 1823-1836 (2010).
  18. Bakker, M. L., et al. T-box transcription factor TBX3 reprogrammes mature cardiac myocytes into pacemaker-like cells. Cardiovasc Res. 94 (3), 439-449 (2012).
  19. Kapoor, N., Liang, W., Marban, E., Cho, H. C. Direct conversion of quiescent cardiomyocytes to pacemaker cells by expression of Tbx18. Nat Biotechnol. 31 (1), 54-62 (2013).
  20. Johns, D. C., et al. Adenovirus-mediated expression of a voltage-gated potassium channel in vitro (rat cardiac myocytes) and in vivo (rat liver). A novel strategy for modifying excitability. J Clin Invest. 96 (2), 1152-1158 (1995).
  21. Nuss, H. B., Marban, E., Johns, D. C. Overexpression of a human potassium channel suppresses cardiac hyperexcitability in rabbit ventricular myocytes. J Clin Invest. 103 (6), 889-896 (1999).
check_url/fr/52465?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Rimmbach, C., Jung, J. J., David, R. Generation of Murine Cardiac Pacemaker Cell Aggregates Based on ES-Cell-Programming in Combination with Myh6-Promoter-Selection. J. Vis. Exp. (96), e52465, doi:10.3791/52465 (2015).

View Video