Summary

Protein Purification Technik, die Erkennung von Sumoylierung und Ubiquitinierung von Bäckerhefe Kinetochor Proteine ​​Ndc10 und Ndc80 Erlaubt

Published: May 03, 2015
doi:

Summary

Diese Handschrift beschreibt den Nachweis von Sumoylierung und Ubiquitinierung von Kinetochor-Proteinen, Ndc10 und Ndc80, in der Bäckerhefe Saccharomyces cerevisiae.

Abstract

Post-translationale Modifikationen (PTMs), wie Phosphorylierung, Methylierung, Acetylierung, Ubiquitinierung und sumoylation, regulieren die zelluläre Funktion von vielen Proteinen. PTMs der Kinetochor-Proteinen, die mit Centromer-DNA assoziieren vermitteln treu Chromosomensegregation auf Genomstabilität zu gewährleisten. Biochemischen Ansätzen wie Massenspektrometrie und Western-Blot-Analyse werden am häufigsten für die Identifizierung von PTMs verwendet. Dabei wird ein Protein-Reinigungsverfahren beschrieben, das den Nachweis von sowohl sumoylation und Ubiquitinierung des kinetochore Proteinen Ndc10 und Ndc80, in Saccharomyces cerevisiae ermöglicht. Ein Stamm, der zum Ausdruck bringt Polyhistidin-Flag-markierten Smt3 (HF-Smt3) und Myc-tagged Ndc10 oder Ndc80 wurde gebaut und für unsere Studien verwendet. Für den Nachweis von Sumoylierung erarbeiteten wir ein Protokoll zur Affinitätsreinigung His-Tag sumoyliert Proteinen durch Verwendung von Nickel Perlen und verwendet Western Blot-Analyse mit Anti-Myc-Antikörper zu erkennen sumoyliert Ndc10 einnd Ndc80. Für den Nachweis von Ubiquitinierung, entwickelten wir ein Protokoll für die Immunpräzipitation von Myc-markierte Proteine ​​verwendet und Western-Blot-Analyse mit anti-Ub-Antikörper zeigen, dass Ndc10 und Ndc80 werden ubiquitinierten. Unsere Ergebnisse zeigen, dass Epitop-markiertes Protein von Interesse in der His-Flag markiert Smt3 Stamm erleichtert den Nachweis mehrerer PTMs. Künftige Studien ermöglichen sollten Ausnutzung dieser Technik zur Identifizierung und Charakterisierung Protein-Wechselwirkungen, die abhängig von einem bestimmten PTM sind.

Introduction

Ubiquitinierung und sumoylation ermöglicht die Konjugation von Ubiquitin and Small Ubiquitin-like Modifier (SUMO; Smt3 in S. cerevisiae 1) an ein Zielprotein auf. PTMs der Kinetochor-Proteinen beeinflussen ihre zellulären Ebenen und Protein-Protein-Interaktionen in verschiedenen Zellzyklusphasen treu Chromosomensegregation zu gewährleisten. Beispielsweise sind Zellebenen Cse4 / CENP-A und äußeren Kinetochorenprotein DSN1 durch Ubiquitin-vermittelte Proteolyse zur Sicherstellung Genomstabilität 2-5 geregelt. Destabilisierung der falsche Kinetochor-Mikrotubuli-Anhänge erfordert die Ipl1 / Aurora B-Kinase, die Dam1 und Ndc80 Komplexe, die direkt mit den Mikrotubuli interagieren 6-8 phosphoryliert. Obwohl die Identifizierung von mehr als siebzig kinetochore Proteinen gibt es sehr wenige Untersuchungen, die die Modifikationen dieser Proteine ​​mit PTMs zB Ubiquitin und SUMO untersuchen. Eine wichtige Einschränkung ist die Fähigkeit, die PTM zu bewahrens während der Reinigung und dem Mangel an individuelle Antikörper zum Nachweis von PTMs wie sumoylation, Phosphorylierung, Methylierung, und andere. Charakterisierung von sumoyliert Kinetochor-Proteinen Ndc10, Cep3, genutzt Bir1 und Ndc80 eine benutzerdefinierte Antikörpers 9. Zusätzlich hat Ndc10 als Substrat für Ubiquitinierung 10 in Verbindung gebracht. Menschliche Hec1 (Ndc80 in S. cerevisiae) wird auch für die Ubiquitinierung Substrat durch APC / C-hCdh1 E3-Ligase 11 geregelt. Daher Ndc10 und Ndc80 sind gute Kandidaten für die Optimierung des Protokolls sowohl sumoylation und Ubiquitinierung in S. erkennen cerevisiae.

Um die Identifizierung von Sumoylierung zu erleichtern, konstruierten wir Stämme, die HF-Smt3 und Myc-tagged Ndc10 oder Ndc80 auszudrücken. Die Verwendung von Epitop-Tags (HF: His6-Flag) minimiert den Hintergrund aufgrund von Kreuzreaktivität, die häufig in polyklonales Serum gegen einen Kandidaten-Protein erzeugt wurden beobachtet. Wir entwickelten ein Protokoll zur Affinitätsreinigen HF-Smt3 Konjugate und dann verwendet kommerziellen anti-Flag und Anti-Myc-Antikörper, die Anwesenheit von sumolyated Ndc10 und Ndc80 im gereinigten Präparat Smt3 detektieren. Für Ubiquitinierung, entwickelten wir eine modifizierte Immunpräzipitationsprotokoll die Ubiquitinierung des Myc-tagged Kinetochor-Proteinen konserviert und Western Blot-Analyse durchgeführt, mit kommerziellen anti-Ub-Antikörper gegen Ubiquitinierung von Ndc10 und Ndc80 zu erkennen.

Protocol

1. Wachstum von Hefezellen, Inokulieren Hefezellen in 30 ml YPD (Tabelle 1) in einem kleinen Kolben. Inkubation bei 30 ° C über Nacht unter Schütteln. Verdünne die Zellen bis zu einer optischen Dichte von 0,2 bei 600 nm (OD 600 = 0,2) in 50 ml YPD und Inkubieren bei 30 ° C unter Schütteln inkubiert. Die Kultur auf eine optische Dichte von 1,0 bei 600 nm (OD 600 = 1,0). Centrifuge Zellen für 5 min bei 2.000 xg und den Überstand verwer…

Representative Results

Zu sumoylation von kinetochore Proteine ​​Ndc80 und Ndc10 detektieren Stämme mit HF-Smt3 und Myc-markierten kinetochore Proteine ​​(Ndc80 oder Ndc10) konstruiert (Tabelle 2), wie zuvor beschrieben, 9,12. HF-Smt3 Konjugate wurden Affinität mit Ni-NTA-Perlen gereinigt. Western Blot-Analyse von gereinigtem HF-Smt3 mit einem Anti-Flag-Antikörper erlaubt Detektion sumoylierten Formen SUMO Substrate, die in dem Kontrollstamm ohne HF-Smt3 (1A und 1B, link…

Discussion

Epitop-Tags, wie HA, Myc, Flagge, und GST sind weit verbreitet für die biochemische Analyse von Proteinen verwendet. Konstruktion von Stämmen mit HF-Smt3 und Myc-markierten kinetochore Proteine ​​wie Ndc10 und Ndc80, erleichtert den Nachweis von PTMs wie sumoylation und Ubiquitinierung. HF-Smt3 Pulldown Assay erlaubt den Nachweis von sumoyliert Kinetochor-Proteinen, Ndc10 und Ndc80 (Abbildung 1). Der Affinitätsreinigungsprotokoll und Western Blot-Analyse unter Verwendung von Anti-Flag-Antikörper…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Dr. Oliver Kerscher for support and advice and members of the Basrai laboratory for their support and comments on the paper. This work was supported by the National Institutes of Health Intramural Research Program.

Materials

Glass beads BioSpec Products 11079105 0.5 mm dia.
Mini beadbeater BioSpec Products #693 8 cell disrupter
Ni-NTA superflow Qiagen 30430 100 ml
Protease inhibitor cocktail Sigma-Aldrich P8215 1 ml
Anti-c-Myc agarose affinity gel antbody produced in rabbit Sigma-Aldrich A7470 1 ml
Monoclonal anti-Flag M2 antibody produced in mouse Sigma-Aldrich F1804 Primary antibody, dilution 1:1000
c-Myc antibody (A-14) Santa Cruz Biotechnology sc-789 Primary antibody, dilution 1:5000
Purified mouse antibody monoclonal 9E10 Covance MMS-150P Primary antibody, dilution 1:5000
Ubiquitin (P4G7) monoclonal antibody Covance MMS-258R Primary antibody, dilution 1:1000
ECL Rabbit IgG, HRP-linked whole Ab GE Healthcare Life Sciences NA934V Secondary antibody, dilution 1:5000
ECL Mouse IgG, HRP-Linked Whole Ab GE Healthcare Life Sciences NA931V Secondary antibody, dilution 1:5000
DC protein assay Bio-Rad 500-0116
Nitrocellulose membrane Novex LC2001 0.45 mm pore size
NuPAGE 4-12% Bis-Tris Protein Gels Novex NP0321BOX 1.0 mm, 10 well
NuPAGE MES SDS Running Buffer Novex NP0002 20x
NuPAGE Transfer Buffer Novex NP0006-1 20x
SuperSignal West Pico Chemiluminescent Substrate Thermo Scientific 34078
10x PBS pH7.4 GIBCO 70011-044
Blue sensitive X-Ray film Dbio DBOF30003
Automatic developer Kodak M35AX-OMAT
Nocodazole Sigma-Aldrich M1404 50 mg
MG-132 Selleck Chemicals S2619 25 mg

References

  1. Johnson, P. R., Hochstrasser, M. SUMO-1: Ubiquitin gains weight. Trends Cell Biol. 7, 408-413 (1997).
  2. Hewawasam, G., et al. Psh1 is an E3 ubiquitin ligase that targets the centromeric histone variant Cse4. Mol Cell. 40, 444-454 (2010).
  3. Ranjitkar, P., et al. An E3 ubiquitin ligase prevents ectopic localization of the centromeric histone H3 variant via the centromere targeting domain. Mol Cell. 40, 455-464 (2010).
  4. Au, W. C., et al. A novel role of the N terminus of budding yeast histone H3 variant Cse4 in ubiquitin-mediated proteolysis. Génétique. 194, 513-518 (2013).
  5. Akiyoshi, B., et al. The Mub1/Ubr2 ubiquitin ligase complex regulates the conserved Dsn1 kinetochore protein. PLoS Genet. 9, e1003216 (2013).
  6. Biggins, S., et al. The conserved protein kinase Ipl1 regulates microtubule binding to kinetochores in budding yeast. Genes Dev. 13, 532-544 (1999).
  7. Cheeseman, I. M., et al. Phospho-regulation of kinetochore-microtubule attachments by the Aurora kinase Ipl1p. Cell. 111, 163-172 (2002).
  8. Liu, D., Lampson, M. A. Regulation of kinetochore-microtubule attachments by Aurora B kinase. Biochem Soc Trans. 37, 976-980 (2009).
  9. Montpetit, B., Hazbun, T. R., Fields, S., Hieter, P. Sumoylation of the budding yeast kinetochore protein Ndc10 is required for Ndc10 spindle localization and regulation of anaphase spindle elongation. J Cell Biol. 174, 653-663 (2006).
  10. Furth, N., et al. Exposure of bipartite hydrophobic signal triggers nuclear quality control of Ndc10 at the endoplasmic reticulum/nuclear envelope. Mol Biol Cell. 22, 4726-4739 (2011).
  11. Li, L., et al. Anaphase-promoting complex/cyclosome controls HEC1 stability. Cell Prolif. 44, 1-9 (2011).
  12. Takahashi, Y., Yong-Gonzalez, V., Kikuchi, Y., Strunnikov, A. SIZ1/SIZ2 control of chromosome transmission fidelity is mediated by the sumoylation of topoisomerase II. Génétique. 172, 783-794 (2006).
  13. Liu, C., Apodaca, J., Davis, L. E., Rao, H. Proteasome inhibition in wild-type yeast Saccharomyces cerevisiae cells. Biotechniques. 42, 158 (2007).
  14. Kitamura, E., Tanaka, K., Kitamura, Y., Tanaka, T. U. Kinetochore microtubule interaction during S phase in Saccharomyces cerevisiae. Genes Dev. 21, 3319-3330 (2007).
  15. Gascoigne, K. E., Cheeseman, I. M. Kinetochore assembly: if you build it, they will come. Curr Opin Cell Biol. 23, 102-108 (2011).
check_url/fr/52482?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Ohkuni, K., Takahashi, Y., Basrai, M. A. Protein Purification Technique that Allows Detection of Sumoylation and Ubiquitination of Budding Yeast Kinetochore Proteins Ndc10 and Ndc80. J. Vis. Exp. (99), e52482, doi:10.3791/52482 (2015).

View Video