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Article de méthode

Génération efficace de hiPSC neurones Lineage Reporters Knockin spécifique en utilisant l'CRISPR / Cas9 et Cas9 Système Double Nickase

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DOI :

10.3791/52539

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28 mai 2015

 ,  ,  ,  ,  , 

* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Les outils d’édition du génome tels que le système CRISPR (Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats)/Cas (associé à CRISPR) ont considérablement amélioré l’efficacité du ciblage génique dans les cellules souches pluripotentes induites humaines (hiPSC). Ce manuscrit décrit un protocole permettant de générer un rapporteur hiPSC spécifique à la lignée à l’aide de la recombinaison homologue assistée par le système CRISPR/Cas.

Résumé

Le ciblage génétique est une approche essentielle pour caractériser les fonctions des gènes dans la recherche biomédicale moderne. Cependant, l’efficacité du ciblage génique dans les cellules humaines a été faible, ce qui empêche la génération de lignées cellulaires humaines à un rythme souhaité. Au cours des deux dernières années, on a assisté à une progression rapide de l’amélioration de l’efficacité de la manipulation génétique par des outils d’édition du génome tels que le système CRISPR (Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats)/Cas (CRISPR-associated). Ce manuscrit décrit un protocole permettant de générer des rapporteurs de cellules souches pluripotentes induites humaines (hiPSC) spécifiques à la lignée à l’aide de la recombinaison homologue assistée par le système CRISPR/Cas. Les procédures d’obtention des composants nécessaires à la fabrication de lignées neuronales à l’aide du système CRISPR/Cas, en se concentrant sur la construction de vecteurs de ciblage et d’ARN guides uniques, sont décrites. Ce protocole peut être étendu à l’établissement de plateformes et à la correction de mutations dans les hiPSC.

Introduction

Le système CRISPR (Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats)/Cas (associé à CRISPR), associé à d’autres outils d’édition du génome, a révolutionné la manipulation du génome humain au cours des dernières années1-7. Les principaux composants du système CRISPR/Cas9 sont l’ARN guide unique (ARNsg) et Cas9. Cas9 est une endonucléase d’ADN de type II guidée par l’ARN. Il possède deux domaines de nucléases, HNH et RuvC, qui sont responsables de la fabrication de cassures double brin de l’ADN (DSB) dans une région génomique spécifique à côté d’un motif adjacent protospacer (PAM)7-10. Un ARNsg a une fonction combinée de celle de l’ARNcr et de l’ARNtracr, deux....

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Protocole

1. Conception et construction vectorielle pour le ciblage des vecteurs

  1. Une fois que le marqueur spécifique de la lignée est déterminé, localisez la séquence génomique du gène et concevez les bras d’homologie en conséquence. La longueur du bras d’homologie 5' est de ~1 kb et celle du bras d’homologie 3' est de ~1,5 kb (Figure 1).
  2. Marquez la cassette rapporteure séquentiellement en aval de la séquence génomique juste avant le codon stop, par sous-clonage, afin que l’expression endogène ne soit pas altérée ou perturbée. Reliez le rapporteur, ou la ou les cassettes à double rapporteur, avec les séquences peptidiques 2A auto-clivantes....

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Résultats

Des vecteurs d'adressage contenant tous les éléments nécessaires, y compris les bras d'homologie, la cassette rapporteuse, et les cassettes de sélection positive et négative, sont construits (Figure 1). À partir du locus génomique endogène, plusieurs (2 à 3) ARN guides simples (sgRNA) (en cas d'utilisation du système Cas9) ou paires de sgRNA (en cas d'utilisation de la stratégie de double coupe avec Cas9n) sont conçus et insérés dans les vecteurs d'expression d'ARNg humain MLM3636 ou pX335-U6-Chimeric_BB.......

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Discussion

Le ciblage génétique est un outil essentiel dans la caractérisation des fonctions des gènes. Cependant, l’efficacité relativement faible exige un travail à forte intensité de main-d’œuvre et chronophage. Récemment, le développement d’outils d’édition du génome tels que le système CRISPR (Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats)/Cas (CRISPR-associated) a considérablement amélioré l’efficacité du ciblage. Ce manuscrit décrit un protocole de génération d’un rapporteur de cellules souches pluripotentes induites humaines (hiPSC).......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par le Département de neurochirurgie, la Fondation Memorial Hermann, le Fonds Staman Ogilvie, le Bentsen Stroke Center du Centre des sciences de la santé de l’Université du Texas à Houston et la Fondation Mission Connect TIRR.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
pStart-KAddgene20346
pWS-TK6  ;Addgene20350
pKD3  ;Addgene45604
pKD46 Centre destock génétique de Coli, CGSC7634
Séquence PGK-neo-bpA  ;Addgene13442
Clones humains BAC de gènes cibles  ;
JDS246 (Cas9-003), Streptococcus pyogenes optimisé pour les codons de mammifères Cas9-3X FlagAddgene43861
MLM3636, Vecteur d’expression de l’ARNg humain avec promoteur U6  ;Addgene43860
pX335-U6-Chimeric_BB-CBh-hSpCas9n(D10A)Addgene42335
conception d’ARNsg, ZiFithttp://zifit.partners.org/ZiFiT/
Outil de prédiction hors cible CasOThttp://eendb.zfgenetics.org/casot/download.php
Perlhttp://www.perl.org/get.html
NCBIhttp://www.ncbi.nlm.nih.gov/
BLAThttps://genome.ucsc.edu/cgi-bin/hgBlat?command=start
sgRNA Primer synthesisSigma
One shot Top10 Electrocomp E. Coli Cellules compétentesLife TechnologiesC4040-50
AccuPrime Pfx SupperMixLife Technologies12344-040
Enzymes de restrictionNEB et Life Technologies
Zymoclean Gel DNA Recovery KitZymo ResearechD4007
Tampon d’extraction rapide de l’ADN  ;EpicentreQE0905T
Herculase II Fusion DNA polymérasesAgilent Technologies600675
Tampon de digestion 2New England Biolab
6X DNA Loading DyeThermo ScientificR0611
TeSR-E8 Kit pour la maintenance hESC/hiPSCStem Cell Technologies05940
Agarose UltraPure  ;Life Technologies16500-100
50xTAELife TechnologiesB49
Essential 8 medium  ;Life TechnologiesA1517001
Dulbecco' s Saline tamponnée au phosphate sans calcium ni magnésiumLife TechnologiesA12856-01
D-MEM/F12 avec Glutamax  ;Life Technologies10565018
D-MEM avec Glutamax  ;Life Technologies10566040
Sérum fœtal bovin-ES qualifié pour les cellules  ;Life Technologies10439
Remplacement de sérum knockout  ;Life Technologies10828010
2-mercaptoéthanol 1000X  ;Life Technologies21985023
Acides aminés Non Essentiels  ;Life Technologies11140050
Stempro Accutase  ;Life TechnologiesA1110501
Dispase  ;Life Technologies17105-041
0,25 % Trypsine-EDTA solution  ;Life Technologies25200-056
Geltrex  ;Technologies de la vie  ;   ;   ;12760-013
Inhibiteur de ROCK Y-27632Millipore  ;   ; SCM075
Réactif SMC4  ;BD354357
MEF résistant à la néomycine  ;MilliporePMEF-NL
Résistant à l’hygromycine MEF  ;MilliporePMEF-HL
G418 (Génétique)LifeTechnologies11811
Hygromycine B  ;Life Technologies10687010
FIAU (Fialuridine, 1-2-Deoxy-2-fluoro-ß ;-D-arabinofuranosyl-5-iodouracil  ; Biochimiques et radiochimiques Moravek  ;   ; Électroporateur M251
: Gene Pulser Xcell  ;Cuvette d’électroporation Bio-Rad
0,4 cm  ;Bio-Rad165-2088
DIG-High prime Kit de démarrage pour le marquage et la détection de l’ADN prime II  ;Roche11585614910
Solution de dénaturation par hybridation  ;VWR82021-478
Kit de synthèse de sonde PCR DIG  ;Roche11636090910
Kit de lavage DIG²Roche11585762001
Anti-Digoxigénine (DIG-AP)
CSPD  ;Roche11755633001
Kit de tampons de lavage et de bloc DIG©TamponTAE Roche 11585762001
50X  ;Life Technologies24710030
Tampon buvard (25 mM Tris pH 7,4,  ; 0,15 M NaCl,  ; 0,1 % Tween20)
Hoefer Ultraviolet Crosslinker  ;Fisher Scientific03-500-308
Spermidine  ;FisherAC13274-0010
Tris HCl 2M (pH 7,5)VWR  ;   ; 200064-506
Denville Scientific film bio bleu 8x10  ;Fishernc9550782
Marqueur de poids moléculaire d’ADN II ( marqué DIG )Roche11218590910
Amersham Membrane buvardage Hybond-N+  ;Roche95038-400
Plateau de séchage en verre Pyrex  ;Fisher15-242A
Kimberly-Clark Essuie-tout plié en C  ;Fisher06-666-32B
Papier Whatman 3MM (26X41)Fisher  ;   ; 05-713-336
Sac d’hybridation  ;Roche11666649001
Tubes d’hybridation  ;Fisher13-247-300
Four à hybridation rôtissoire Shake 'n' Stack  ;FisherHBMSOV14110
https://bacpac.chori.org ;Système de chimiluminescence Roche 11093274910 es

Références

  1. Wang, H., et al. One-step generation of mice carrying mutations in multiple genes by CRISPR/Cas-mediated genome engineering. Cell. 153, 910-918 (2013).
  2. Mali, P., et al. RNA-guided human genome engineering via Cas9. Science. 339, 8....

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Réimpressions et autorisations

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