Summary

Screening næringsmidler for klasse 1 integroner og Gene Kassetter

Published: June 19, 2015
doi:

Summary

This protocol describes the detection of class 1 integrons and their associated gene cassettes in foodstuffs.

Abstract

Antibiotic resistance is one of the greatest threats to health in the 21st century. Acquisition of resistance genes via lateral gene transfer is a major factor in the spread of diverse resistance mechanisms. Amongst the DNA elements facilitating lateral transfer, the class 1 integrons have largely been responsible for spreading antibiotic resistance determinants amongst Gram negative pathogens. In total, these integrons have acquired and disseminated over 130 different antibiotic resistance genes. With continued antibiotic use, class 1 integrons have become ubiquitous in commensals and pathogens of humans and their domesticated animals. As a consequence, they can now be found in all human waste streams, where they continue to acquire new genes, and have the potential to cycle back into humans via the food chain. This protocol details a streamlined approach for detecting class 1 integrons and their associated resistance gene cassettes in foodstuffs, using culturing and PCR. Using this protocol, researchers should be able to: collect and prepare samples to make enriched cultures and screen for class 1 integrons; isolate single bacterial colonies to identify integron-positive isolates; identify bacterial species that contain class 1 integrons; and characterize these integrons and their associated gene cassettes.

Introduction

Oppdagelsen av antibiotika var en av de største vitenskapelige prestasjoner av det 20. århundre. Imidlertid har bruk og misbruk av antibiotika har ført til den raske utviklingen av antibiotikaresistente bakterier, og disse nå utgjør en alvorlig trussel mot folkehelsen i det 21. århundre. Framveksten av bakteriestammer resistente mot de fleste behandlingstilbud øker muligheten vi går inn i en tid der antimikrobielle stoffer er ikke lenger effektive 1,2.

Den genetiske maskiner som overfører antibiotikaresistens er et gammelt system, predating mennesker og antibiotika seleksjonstrykk av millioner av år 3. Mobile genetiske elementer, som plasmider, transposoner, genomiske øyer, integrerende konjugativt elementer og integroner kan spre antibiotikaresistensgener (ARG) både innenfor og mellom bakteriearter 4. Av disse har integroner spilt en sentral rolle i spredningen av ARG, til tross fordet faktum at de er avhengige av plasmider og transposoner mobiliserings- og innsetting inn i bakterielle genomer 5. Integroner fange genkassetter ved hjelp av en integron-integrase, og deretter uttrykke kassetter ved hjelp av en integron kodet promoter 6,7 (figur 1). Integron genet kassetter er små mobile elementer som består av enkelt åpne leserammer (ORF) hvis produkter kan gi resistens mot antibiotika eller desinfeksjonsmidler 8. Klasse 1 integroner er integroner oftest utvinnes fra kliniske isolater 5, hvor de har samlet ervervet over 130 forskjellige antibiotikaresistens genkassetter 9.

Spredningen av klasse 1 integroner inn i menneskelige-forbundet commensal og patogene bakterier genererer menneskelige avfallsstrømmer som inneholder store mengder av disse genetiske elementer 10. Anslagsvis 10 19 bakterier som inneholder klasse 1 integroner frigis via kloakkslam hvert år jegn Storbritannia 11. Det er derfor ikke overraskende at klasse 1 integroner overdragelse antibiotika motstander blir nå påvist i bakterieflora av ville fugler, fisk og andre lokale dyrelivet 12-14. Releasing integroner tilbake i miljøet utgjør en betydelig helsetrusselen, siden kjøpet av nye genet kassetter og komplekse rearrangements med andre mobile elementer vedvarer, særlig i kloakkrenseanlegg og andre vassdrag 15-18. Naturmiljøet blir da en fruktbar for rekruttering til nye resistens og opportunistiske patogener 19,20. Nye integron inneholder bakterier og nye args kan sirkel tilbake til det menneskelige fellesskap gjennom forurenset vann og mat 21,22. Overvåking av miljø args er en viktig strategi for å forstå og håndtere antibiotikaresistens i fremtiden 23. Særlig oppmerksomhet bør rettes mot matvarer som spises rå ellerlett tilberedes, fordi disse frem den største trusselen for overføring av nye mobile elementer og patogener.

I denne protokollen, en strømlinjeformet tilnærming for å påvise, identifisere og karakterisere klasse 1 integroner og deres tilknyttede genet kassetter i næringsmidler er skissert (figur 2). Ved hjelp av en kombinasjon av dyrking og polymerase chain reaction (PCR), kan integroner bli raskt oppdaget i komplekse bakteriesamfunn og enkelte isolater. Fremgangsmåter for identifisering av arter av bakterier og konformasjon og identiteten til de integron-assosierte genkassetter er gitt. Fremgangsmåten er egnet for et bredt spekter av plante- og animalske matvarer, og eksempler på typiske arbeidsflyter er gitt for hver av disse typer mat.

Protocol

Matvarer som spises rå eller lett kokte er av mest interesse for menneskers helse. Eksempler inkluderer salat grønnsaker, frukt, skalldyr og krepsdyr. 1. Prøvetaking Samle inn prøver under betingelser som minimerer kontaminering og lagres i separate, rene poser under transport. Når oppsamlet, må prøvene lagret ved 4 ° C og behandles i løpet av 24 timer. 2. Beriket Kultur Forberedelse Frukt og grønnsaker: Plasser tiln…

Representative Results

Screening av blandede kulturer og bakterieisolater for intI1 Primersett HS463a / HS464 PCR kan brukes for å påvise tilstedeværelse av klasse 1 integron-integrase gen, intI1 (figur 1). Denne primer settet fungerer godt for å detektere intI1 i blandede kulturer, og blir også brukt til å screene bakteriekolonier som er høstet fra spredningsplater (figur 2). Positive isolater skal generere en enkelt sterkt band på 471 bp bruke denne primer…

Discussion

Identifiseringen av integroner og deres tilknyttede genet kassetter er potensielt et viktig steg i å forutsi fremveksten av nye opportunistiske patogener, sporing trasé for patogener i den menneskelige næringskjeden, og identifisere nye motstand og virulens determinanter 8,21,26. Målet med denne artikkelen var å beskrive en strømlinjeformet tilnærming for screening prøver for klasse 1 integroner, karakteriserer sine kassett arrays og identifisere bakteriearter der de bor. Kritiske trinn i protokollen …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Takk til Michaela Hall, Larissa Bispo og Gustavo Tavares for teknisk assistanse.

Materials

GoTaq Colourless Mastermix Promega M7132 Used in all PCRs
RNAse (Ribonuclease A from bovine pancreas) Sigma R6513-10MG Used in all PCRs
HinFI restriction enzyme Promega R6201 Used to digest 16S rDNA PCR poducts. Enzyme comes with optimal buffer and BSA
100 bp ladder GE Healthcare 27400701 Used as a size standard on all agarose gels
GelRed DNA stain Biotium 41003 CAUTION: Personal protection must be worn when handling this material
Guanidinium Thiocyanate Life Technologies AM9422 CAUTION: Personal protection must be worn when handling this material
CLS-TC Solution MP Biomedicals 6540409 Resuspension solution used at the begining of the genomic DNA extraction
Lysing Matrix E FastPrep tubes MP Biomedicals 116914500 Tube required for mechanical disruption of bacterial cell walls. This code is used for packs of 500 tubes, smaller quantities are available.
binding matrix MP Biomedicals 116540408 Diluted 1:5 with 6M guanidinium thiocyanate and used in the genomic DNA extraction method.
Fast Prep machine MP Biomedicals Number of options available MP Biomedicals has a number of FastPrep machines available to purchase. Visit http://www.mpbio.com for more information

References

  1. Bush, K., et al. Tackling antibiotic resistance. Nature Rev. Microbiol. 9, 894-896 (2011).
  2. Davies, J., Davies, D. Origins and evolution of antibiotic resistance. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 74 (3), 417-433 (2010).
  3. Costa, V. M., et al. Antibiotic resistance is ancient. Nature. 477 (7365), 457-461 (2011).
  4. Gillings, M. R. Evolutionary consequences of antibiotic use for the resistome, mobilome and microbial pangenome. Front. Microbiol. 4, 4 (2013).
  5. Gillings, M., et al. The evolution of class 1 integrons and the rise of antibiotic resistance. J. Bacteriol. 190 (14), 5095-5100 (2008).
  6. Brassard, S., Lapointe, J., Roy, P. H. Diversity and relative strength of tandem promoters for the antibiotic-resistance genes of several integrons. Gene. 142 (1), 49-54 (1994).
  7. Partridge, S. R., et al. Definition of the attI1 site of class 1 integrons. Microbiol. 146 (11), 2855-2864 (2000).
  8. Gillings, M. R. Integrons: Past, Present, and Future. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 78 (2), 257-277 (2014).
  9. Partridge, S. R., Tsafnat, G., Coiera, E., Iredell, J. R. Gene cassettes and cassette arrays in mobile resistance integrons. FEMS Microbiol. Rev. 33 (4), 757-784 (2009).
  10. Gillings, M. R., et al. Using the class 1 integron-integrase gene as a proxy for anthropogenic pollution. ISME J. In press, (2014).
  11. Gaze, W. H., et al. Impacts of anthropogenic activity on the ecology of class 1 integrons and integron-associated genes in the environment. ISME J. 5, 1253-1261 (2011).
  12. Gerzova, L., et al. Characterization of microbiota composition and presence of selected antibiotic resistance genes in carriage water of ornamental fish. PLoS ONE. 9, e103865 (2014).
  13. Power, M., Emery, S., Gillings, M. Into the wild: dissemination of antibiotic resistance determinants via a species recovery program. PLoS ONE. 8, e63017 (2013).
  14. Stokes, H. W., Gillings, M. R. Gene flow, mobile genetic elements and the recruitment of antibiotic resistance genes into Gram-negative pathogens. FEMS Microbiol. Rev. 35 (5), 790-819 (2011).
  15. Moura, A., Oliveira, C., Henriques, I., Smalla, K., Correia, A. Broad diversity of conjugative plasmids in integron-carrying bacteria from wastewater environments. FEMS Microbiol. Lett. 330 (2), 157-164 (2012).
  16. Schlüter, A., Krause, L., Szczepanowski, R., Goesmann, A., Pühler, A. Genetic diversity and composition of a plasmid metagenome from a wastewater treatment plant. J. Biotech. 136 (1-2), 65-76 (2008).
  17. Taylor, N. G. H., Verner-Jeffreys, D. W., Baker-Austin, C. Aquatic systems: maintaining, mixing and mobilising antimicrobial resistance. TREE. 26 (6), 278-284 (2011).
  18. Stalder, T., et al. Quantitative and qualitative impact of hospital effluent on dissemination of the integron pool. ISME J. 8, 768-777 (2014).
  19. Allen, H. K., et al. Call of the wild: antibiotic resistance genes in natural environments. Nature Rev. Microbiol. 8, 251-259 (2010).
  20. Wellington, E. M., et al. The role of the natural environment in the emergence of antibiotic resistance in Gram-negative bacteria. Lancet Infect. Dis. 13 (2), 155-165 (2013).
  21. Gillings, M. R., et al. Mobilization of a Tn402-like class 1 integron with a novel cassette array via flanking miniature inverted-repeat transposable element-like structures. Appl. Env. Microbiol. 75 (18), 6002-6004 (2009).
  22. Graham, D. W., Collignon, P., Davies, J., Larsson, D. J., Snape, J. Underappreciated role of regionally poor water quality on globally increasing antibiotic resistance. Env. Sci. Technol. 48 (20), 11746-11747 (2014).
  23. Perry, J. A., Westman, E. L., Wright, G. D. The antibiotic resistome: what’s new. Curr. Opinion Microbiol. 21, 45-50 (2014).
  24. Lorenz, T. C. Polymerase chain reaction: basic protocol plus troubleshooting and optimization strategies. J. Vis. Exp. 63, e3998-e3998 (2011).
  25. Gillings, M. R. Rapid Extraction of PCR-Competent DNA from Recalcitrant Environmental Samples. Env. Microbiol. 1096, 17-23 (2014).
  26. Sajjad, A., Holley, M. P., Labbate, M., Stokes, H., Gillings, M. R. Preclinical class 1 integron with a complete Tn402-like transposition module. Appl. Env. Microbiol. 77 (1), 335-337 (2011).
  27. Wright, G. D. Antibiotic resistance in the environment: A link to the clinic. Curr. Opinion Microbiol. 13 (5), 589-594 (2010).
  28. Stokes, H., Nesbo, C., Holley, M., Bahl, M., Gillings, M., Boucher, Y. Class 1 integrons predating the association with Tn402.-like transposition genes are present in a sediment microbial community. Journal of Bacteriology. 188, 5722-5730 (2006).
  29. Lane, D. J. . Nucleic Acid Techniques in Bacterial Systematics. , 115-175 (1991).
  30. Holmes, A. J., et al. Recombination activity of a distinctive integron-gene cassette system associated with stutzeri. populations in soil. Journal of Bacteriology. 185, 918-928 (2003).
check_url/fr/52889?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Waldron, L. S., Gillings, M. R. Screening Foodstuffs for Class 1 Integrons and Gene Cassettes. J. Vis. Exp. (100), e52889, doi:10.3791/52889 (2015).

View Video