Summary

पैच दबाना और लाइव प्रतिदीप्ति माइक्रोस्कोपी को लागू हौसले से पृथक PKD उपकला के कार्यात्मक संपत्तियों को मॉनिटर करने के लिए

Published: September 01, 2015
doi:

Summary

गुर्दे ट्यूबलर उपकला में व्यक्त आयन चैनल पॉलीसिस्टिक गुर्दा रोग की विकृति में एक महत्वपूर्ण भूमिका निभाते हैं। यहाँ हम हौसले कृंतक गुर्दे से अलग सिस्टिक उपकला में पैच दबाना विश्लेषण और intracellular कैल्शियम के स्तर का मापन का प्रदर्शन करने के लिए इस्तेमाल किया प्रयोगात्मक प्रोटोकॉल का वर्णन है।

Abstract

पॉलीसिस्टिक गुर्दा रोग के दौरान पुटी दीक्षा और विस्तार ट्यूबलर सेल प्रसार, ल्यूमिनल तरल पदार्थ जमा और बाह्य मैट्रिक्स गठन में असामान्यताओं की विशेषता एक जटिल प्रक्रिया है। आयन चैनल और intracellular कैल्शियम सिगनल की गतिविधि ट्यूबलर उपकला के कार्यों को निर्धारित जो महत्वपूर्ण शारीरिक मापदंडों हैं। हम हौसले गुर्दे अल्सर से अलग उपकला monolayers में इंट्रासेल्युलर सीए 2 स्तर का पैच दबाना तकनीक और पंजीकरण के साथ आयन चैनल गतिविधि का वास्तविक समय अवलोकन के लिए उपयुक्त एक विधि विकसित की है। PCK चूहों, ऑटोसोमल रिसेसिव पॉलीसिस्टिक गुर्दा रोग (ARPKD) के एक आनुवंशिक मॉडल, आयन चैनलों और कैल्शियम प्रवाह के पूर्व vivo विश्लेषण के लिए यहां इस्तेमाल किया गया। यहाँ वर्णित एक चैनल गतिविधि और intracellular सीए 2 गतिशीलता सिस्टिक monolayers और PCK या सामान्य Sprague Dawley (एसडी) चूहों से गैर फैली हुई नलिकाओं को अलग, और निगरानी करने के लिए बनाया गया एक विस्तृत कदम-दर-कदम प्रक्रिया है।इस विधि एंजाइमी संसाधन की आवश्यकता होती है और हौसले से अलग उपकला monolayer के एक देशी सेटिंग में विश्लेषण की अनुमति देता नहीं है। इसके अलावा, इस तकनीक intracellular कैल्शियम परिवर्तन करने के लिए बहुत संवेदनशील है और सटीक मापन के लिए उच्च संकल्प छवियों उत्पन्न करता है। अंत में, अलग-थलग सिस्टिक उपकला आगे एंटीबॉडी या रंजक, विभिन्न जैव रासायनिक assays के लिए प्राथमिक संस्कृतियों की तैयारी और शुद्धि के साथ धुंधला करने के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है।

Introduction

आयन चैनल सेल के विकास और भेदभाव सहित कई शारीरिक कार्यों में एक महत्वपूर्ण भूमिका निभाते हैं। Autosomal प्रमुख और पीछे हटने का पॉलीसिस्टिक गुर्दा रोगों (क्रमशः ADPKD और ARPKD,) ट्यूबलर उपकला कोशिका मूल के गुर्दे तरल पदार्थ से भरे अल्सर के विकास के द्वारा होती आनुवंशिक विकार हैं। ADPKD polycystins 1 और सेल प्रसार और भेदभाव के नियमन में शामिल 2, झिल्ली प्रोटीन एन्कोडिंग PKD1 या PKD2 जीन के म्यूटेशन के कारण होता है। स्वयं के द्वारा या PKD1 के साथ एक जटिल रूप PKD2 भी एक सीए 2 पारगम्य कटियन चैनल 1 के रूप में कार्य करते हैं। PKHD1 जीन एन्कोडिंग fibrocystin (tubulogenesis और / या उपकला के polarity के रखरखाव में शामिल एक सिलिया जुड़े रिसेप्टर की तरह प्रोटीन) के उत्परिवर्तन ARPKD 2 की आनुवंशिक प्रोत्साहन कर रहे हैं। पुटी विकास एक जटिल घटना से परेशान प्रसार 3,4, angiogenesis को 5, dedifferentiation और ध्रुवीय की हानि के साथ साथ हैट्यूबलर कोशिकाओं 6-8 की अल्पसंख्यक।

सिस्टिक उपकला में दोषपूर्ण पुनःअवशोषण और संवर्धित स्राव लुमेन और पुटी विस्तार 9,10 में तरल पदार्थ जमा करने के लिए योगदान करते हैं। बिगड़ा प्रवाह पर निर्भर [सीए 2 +] मैं सिगनल भी PKD 11-15 दौरान cystogenesis से जोड़ा गया है।

यहाँ, हम एक चैनल गतिविधि और PCK चूहों से अलग सिस्टिक उपकला monolayers में इंट्रासेल्युलर सीए 2 स्तरों के पैच दबाना माप के लिए उपयुक्त विधि का वर्णन है। इस पद्धति को सफलतापूर्वक उपकला ना + चैनल (ENaC) 10 की गतिविधि के लिए चिह्नित करने के लिए हमारे द्वारा लागू किया गया था और [सीए 2 +] मैं सीए 2 पारगम्य TRPV4 और purinergic संकेत झरना 13 से प्रेरित प्रक्रियाओं निर्भर।

इन अध्ययनों में हम PCK चूहों, PKHD1 जीन में एक सहज उत्परिवर्तन के कारण होता ARPKD के एक मॉडल का इस्तेमाल किया। PCK तनाव originall थाSprague-Dawley (एसडी) चूहों 16 जिससे एसडी चूहों PCK तनाव के साथ तुलना के लिए एक उचित नियंत्रण के रूप में इस्तेमाल कर रहे हैं से निकाली गई वाई। नतीजतन, एक ही PCK चूहों से अलग एसडी चूहे नेफ्रॉन क्षेत्रों और गैर फैली हुई संग्रह नलिकाओं दोनों सिस्टिक उपकला पर प्रयोगों के लिए दो अलग अलग तुलना समूहों के रूप में सेवा कर सकते हैं।

Protocol

नीचे वर्णित प्रयोगात्मक प्रक्रियाओं विस्कॉन्सिन और ह्यूस्टन में टेक्सास के स्वास्थ्य विज्ञान केंद्र के विश्वविद्यालय के मेडिकल कॉलेज में संस्थागत पशु की देखभाल और उपयोग समिति ने मंजूरी दे दी है औ?…

Representative Results

Cystogenesis में संभावित ENaC भागीदारी ARPKD murine मॉडल और ऊतक संस्कृतियों 26-28 में PKD प्रगति 22-25 और असामान्य सोडियम पुनःअवशोषण में संकेत बाधित epidermal वृद्धि कारक (EGF) मनाया कि कई अध्ययनों से प्रदर्शित किया गया है। उदा?…

Discussion

हम ARPKD की एक murine आनुवंशिक मॉडल से प्राप्त सिस्टिक उपकला monolayers के लिए यहां पारंपरिक पैच दबाना तकनीक और epifluorescence कैल्शियम इमेजिंग के आवेदनों का वर्णन किया। प्रोटोकॉल सबसे ज्यादा ध्यान अल्सर (प्रोटोकॉल खंड के ?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

लेखकों माइक्रोस्कोपी प्रयोगों के साथ उत्कृष्ट तकनीकी सहायता के लिए ग्लेन Slocum (विस्कॉन्सिन के मेडिकल कॉलेज) और कोलीन ए Lavin (Nikon उपकरण इंक) को धन्यवाद देना चाहूंगा। इस अध्ययन (एएस) के लिए R01 HL108880, (OPO करने के लिए) R01 DK095029 और (टीएसपी) के लिए K99 HL116603, (टीएसपी) के लिए नेशनल किडनी फाउंडेशन IG1724, (OPO करने के लिए) अमेरिकन हार्ट एसोसिएशन 13GRNT16220002 और अनुदान के राष्ट्रीय स्वास्थ्य संस्थान द्वारा समर्थित किया गया (डीवीआई करने के लिए) नेफ्रोलोजी के अमेरिकन सोसायटी की ओर से बेन जे Lipps रिसर्च फैलोशिप।

Materials

Fura-2 AM Life Technologies F-14185
Flou-8 AAT Bioquest 21091
Poly-L-lysine Sigma-Aldrich P4707
Pluronic acid Sigma-Aldrich F-68  solution
Shaker Boekel Scientific 260350
Light source Sutter Instrument Co Lambda XL with integrated shutter/filter wheel driver
Neutral density filters Nikon ND4, ND8
Objective Nikon SFluo  40/1.3 DIC WD 0.22   oil
Camera Andor Technologies Zyla sCMOS
Nikon  microscope (inverted) Nikon Nikon Eclipse TE2000-S
Cover Glass Thermo Scientific 6661B52
Diamond pencil Fisher Scientific 22268912
Image acquisition software Nikon Nikon NIS-Elements 
Image analysis software ImageJ http://imagej.nih.gov/ ND Utility plugin allows to import images in the native Nikon Instruments .nd2 format
Recording/perfusion chamber Warner Instruments RC-26
Patch Clamp amplifier Molecular Devices MultiClamp 700B
Data Acquisition System Molecular Devices Digidata 1440A Axon Digidata® System
Low Pass Filter Warner Instruments LPF-8 8 pole Bessel
Borosilicate glass capillaries World Precision Instruments 1B150F-4
Micropipette Puller Sutter Instrument Co P-97 Flaming/Brown type micropipette puller
Microforge Narishige MF-830 Japan
Motorized Micromanipulator Sutter Instrument Co MP-225
Inverted microscope Nikon Eclipse Ti
Microvibration isolation table TMC equipped with Faraday cage
Multichannel valve perfusion system AutoMake Scientific Valve Bank II
Recording/perfusion chamber Warner Instruments RC-26
Software Molecular Devices pClamp 10 . 2
Temperature controlled surgical table  MCW core for rodents
Binocular stereomicroscope Nikon SMZ745
Syringe pump-based perfusion system Harvard Apparatus
polyethylene tubing Sigma-Aldrich PE50
Isofluorane anesthesia http://www.vetequip.com/ 911103
Other basic reagents Sigma-Aldrich

References

  1. Torres, V. E., Harris, P. C., Pirson, Y. Autosomal dominant polycystic kidney disease. Lancet. 369 (9569), 1287-1301 (2007).
  2. Zhang, M. Z., et al. PKHD1 protein encoded by the gene for autosomal recessive polycystic kidney disease associates with basal bodies and primary cilia in renal epithelial cells. Proc. Nat. Acad. Sci U.S.A. 101 (8), 2311-2316 (2004).
  3. Chang, M. Y., et al. Haploinsufficiency of Pkd2 is associated with increased tubular cell proliferation and interstitial fibrosis in two murine Pkd2 models. Nephrol. Dial. Transpl. 21 (8), 2078-2084 (2006).
  4. Park, F., Sweeney, W. E., Jia, G., Roman, R. J., Avner, E. D. 20-HETE mediates proliferation of renal epithelial cells in polycystic kidney disease. J. Am. Soc. Nephrol. 19 (10), 1929-1939 (2008).
  5. Huang, J., Woolf, A., Long, D. Angiogenesis and autosomal dominant polycystic kidney disease. Ped. Nephrol. 28 (9), 1749-1755 (2013).
  6. Wilson, P. D. Apico-basal polarity in polycystic kidney disease epithelia. Bioch Biophys Acta. 1812 (10), 1239-1248 (2011).
  7. Wilson, P. D. Epithelial cell polarity and disease. Am. J. Physiol. Renal Physiol. 272 (4 Pt 2), F434-F442 (1997).
  8. Wilson, P. D., et al. Reversed polarity of Na(+) -K(+) -ATPase: mislocation to apical plasma membranes in polycystic kidney disease epithelia. Am. J. Physiol. Renal Physiol. 260 (3 pt 2), F420-F430 (1991).
  9. Murcia, N. S., Sweeney, W. E., Avner, E. D. New insights into the molecular pathophysiology of polycystic kidney disease. Kidn. Intern. 55 (4), 1187-1197 (1999).
  10. Pavlov, T. S., Levchenko, V., Ilatovskaya, D. V., Palygin, O., Staruschenko, A. Impaired epithelial Na+ channel activity contributes to cystogenesis and development of autosomal recessive polycystic kidney disease in PCK rats. Ped. Res. 77 (1), 64-69 (2014).
  11. Siroky, B. J., et al. Loss of primary cilia results in deregulated and unabated apical calcium entry in ARPKD collecting duct cells. Am. J. Physiol. Renal Physiol. 290 (6), F1320-F1328 (2006).
  12. Hovater, M. B., et al. Loss of apical monocilia on collecting duct principal cells impairs ATP secretion across the apical cell surface and ATP-dependent and flow-induced calcium signals. Purin. Signal. 4 (2), 155-170 (2008).
  13. Zaika, O., et al. TRPV4 Dysfunction Promotes Renal Cystogenesis in Autosomal Recessive Polycystic Kidney Disease. J. Am. Soc. Nephrol. 24 (4), 604-616 (2013).
  14. Rohatgi, R., et al. Mechanoregulation of intracellular Ca2+ in human autosomal recessive polycystic kidney disease cyst-lining renal epithelial cells. Am. J. Physiol. Renal Physiol. 294 (4), F890-F899 (2008).
  15. Xu, C., et al. Attenuated, flow-induced ATP release contributes to absence of flow-sensitive, purinergic Cai2+ signaling in human ADPKD cyst epithelial cells. Am. J. Physiol. Renal Physiol. 296 (6), F1464-F1476 (2009).
  16. Katsuyama, M., Masuyama, T., Komura, I., Hibino, T., Takahashi, H. Characterization of a novel polycystic kidney rat model with accompanying polycystic liver. Exp. Animals. 49 (1), 51-55 (2000).
  17. Ilatovskaya, D., Staruschenko, A. Single-channel analysis of TRPC channels in the podocytes of freshly isolated glomeruli. Methods Mol. Biol. 998, 355-369 (2013).
  18. Pavlov, T. S., et al. Deficiency of renal cortical EGF increases ENaC activity and contributes to salt-sensitive hypertension. J. Am. Soc. Nephrol. 24, 1053-1062 (2013).
  19. Mironova, E., Bugay, V., Pochynyuk, O., Staruschenko, A., Stockand, J. Recording ion channels in isolated, split-opened tubules. Methods Mol. Biol. 998, 341-353 (2013).
  20. Pavlov, T. S., et al. Endothelin-1 inhibits the epithelial Na+ channel through betaPix/14-3-3/Nedd4-2. J. Am. Soc. Nephrol. 21 (5), 833-843 (2010).
  21. Sun, P., et al. High Potassium Intake Enhances the Inhibitory Effect of 11,12-EET on ENaC. J. Am. Soc. Nephrol. 21 (10), 1667-1677 (2010).
  22. Zheleznova, N. N., Wilson, P. D., Staruschenko, A. Epidermal growth factor-mediated proliferation and sodium transport in normal and PKD epithelial cells. Biochim. Biophys. Acta. 1812 (10), 1301-1313 (2011).
  23. Sweeney, W. E., von Vigier, R. O., Frost, P., Avner, E. D. Src inhibition ameliorates polycystic kidney disease. J. Am. Soc. Nephrol. 19 (7), 1331-1341 (2008).
  24. Sweeney, W. E., Avner, E. D. Functional activity of epidermal growth factor receptors in autosomal recessive polycystic kidney disease. Am. J. Physiol. Renal Physiol. 275 (3 Pt 2), F387-F394 (1998).
  25. Orellana, S. A., Sweeney, W. E., Neff, C. D., Avner, E. D. Epidermal growth factor receptor expression is abnormal in murine polycystic kidney. Kidn. Intern. 47 (2), 490-499 (1995).
  26. Rohatgi, R., et al. Cyst fluid composition in human autosomal recessive polycystic kidney disease. Ped. Nephrol. 20 (4), 552-553 (2005).
  27. Rohatgi, R., Greenberg, A., Burrow, C. R., Wilson, P. D., Satlin, L. M. Na transport in autosomal recessive polycystic kidney disease (ARPKD) cyst lining epithelial cells. J. Am. Soc. Nephrol. 14 (4), 827-836 (2003).
  28. Olteanu, D., et al. Heightened epithelial Na+ channel-mediated Na+ absorption in a murine polycystic kidney disease model epithelium lacking apical monocilia. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 290 (4), C952-C963 (2006).
  29. Veizis, I. E., Cotton, C. U. Abnormal EGF-dependent regulation of sodium absorption in ARPKD collecting duct cells. Am. J. Physiol. Renal Physiol. 288 (3), F474-F482 (2005).
  30. Wilson, P. D. Polycystic kidney disease. NEJM. 350 (2), 151-164 (2004).
  31. Hillman, K. A., et al. P2X(7) receptors are expressed during mouse nephrogenesis and in collecting duct cysts of the cpk/cpk mouse. Exp. Nephrol. 10 (1), 34-42 (2002).
  32. Turner, C. M., Ramesh, B., Srai, S. K., Burnstock, G., Unwin, R. J. Altered ATP-sensitive P2 receptor subtype expression in the Han:SPRD cy/+ rat, a model of autosomal dominant polycystic kidney disease. Cells Tissues Organs. 178 (3), 168-179 (2004).
  33. Hillman, K. A., et al. The P2X7 ATP receptor modulates renal cyst development in vitro. Biochem. Biophys. Res. Commun. 322 (2), 434-439 (2004).
  34. Wilson, P. D., Hovater, J. S., Casey, C. C., Fortenberry, J. A., Schwiebert, E. M. ATP release mechanisms in primary cultures of epithelia derived from the cysts of polycystic kidneys. J. Am. Soc. Nephrol. 10 (2), 218-229 (1999).
  35. Schwiebert, E. M., et al. Autocrine extracellular purinergic signaling in epithelial cells derived from polycystic kidneys. Am. J. Physiol. Renal Physiol. 282 (4), F763-F775 (1152).
  36. Stockand, J. D., et al. Purinergic inhibition of ENaC produces aldosterone escape. J. Am. Soc. Nephrol. 21 (11), 1903-1911 (2010).
  37. Pochynyuk, O., et al. Paracrine Regulation of the Epithelial Na+ Channel in the Mammalian Collecting Duct by Purinergic P2Y2 Receptor Tone. J. Biol. Chem. 283 (52), 36599-36607 (2008).
  38. Zaika, O., Mamenko, M., Boukelmoune, N., Pochynyuk, O. IGF-1 and insulin exert opposite actions on ClC-K2 activity in the cortical collecting ducts. Am. J. Physiol. Renal Physiol. 308 (1), F39-F48 (2015).
  39. Lalo, U., Pankratov, Y., Kirchhoff, F., North, R. A., Verkhratsky, A. NMDA receptors mediate neuron-to-glia signaling in mouse cortical astrocytes. J. Neurosci. 26 (10), 2673-2683 (2006).
  40. Lalo, U., Andrew, J., Palygin, O., Pankratov, Y. Ca2+-dependent modulation of GABAA and NMDA receptors by extracellular ATP: implication for function of tripartite synapse. Biochem. Soc. Trans. 37 (Pt 6), 1407-1411 (2009).
  41. Li, D., et al. Inhibition of MAPK stimulates the Ca2+ -dependent big-conductance K channels in cortical collecting duct). Proc. Nat. Acad. Sci U.S.A. 103 (51), 19569-19574 (2006).
  42. Bugaj, V., Mironova, E., Kohan, D. E., Stockand, J. D. Collecting duct-specific endothelin B receptor knockout increases ENaC activity. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 302 (1), C188-C194 (2012).
  43. Pavlov, T. S., et al. Regulation of ENaC in mice lacking renal insulin receptors in the collecting duct. FASEB J. 27 (7), 2723-2732 (2013).
  44. Gleason, C. E., et al. mTORC2 regulates renal tubule sodium uptake by promoting ENaC activity. J. Clin. Invest. 125 (1), 117-128 (2015).
  45. Frindt, G., Palmer, L. G. Acute effects of aldosterone on the epithelial Na channel in rat kidney. Am. J. Physiol. Renal Physiol. , (2015).
  46. Ilatovskaya, D. V., et al. Angiotensin II has acute effects on TRPC6 channels in podocytes of freshly isolated glomeruli. Kidn. Int. 86 (3), 506-514 (2014).
  47. Ilatovskaya, D. V., Palygin, O., Levchenko, V., Staruschenko, A. Pharmacological characterization of the P2 receptors profile in the podocytes of the freshly isolated rat glomeruli. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 305 (10), C1050-C1059 (2013).
check_url/fr/53035?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Pavlov, T. S., Ilatovskaya, D. V., Palygin, O., Levchenko, V., Pochynyuk, O., Staruschenko, A. Implementing Patch Clamp and Live Fluorescence Microscopy to Monitor Functional Properties of Freshly Isolated PKD Epithelium. J. Vis. Exp. (103), e53035, doi:10.3791/53035 (2015).

View Video