Summary

علم الأحياء نظم تنظيم التمثيل الغذائي عن طريق مستقبلات الاستروجين في اشارة الى سرطان الثدي

Published: March 17, 2016
doi:

Summary

Integration of data from genome-wide sequencing experiments and metabolomics experiments is a challenge. In this paper we report, for the first time, generation, analysis and integration of transcriptome, cistrome and metabolome data from breast cancer cells treated with estradiol.

Abstract

مع قدوم -omics النهج فهمنا للأمراض المزمنة مثل السرطان ومتلازمة التمثيل الغذائي قد تحسن. ومع ذلك، التعدين الفعال للمعلومات في قواعد البيانات واسعة النطاق التي يتم الحصول عليها من ميكروأرس التعبير الجيني، والتجارب تسلسل عميقة أو التنميط التمثيل الغذائي أمر ضروري لكشف ومن ثم تستهدف على نحو فعال المنظمين تنتقد الظواهر الخلايا المريضة. مستقبلات الاستروجين α (ERα) هي واحدة من عوامل النسخ سيد تنظيم برامج الجينات التي تعتبر مهمة لهرمون الاستروجين سرطان الثدي استجابة. من أجل فهم لدور ERα يشير في التمثيل الغذائي سرطان الثدي نحن تستخدم البيانات transcriptomic، cistromic وmetabolomic من MCF-7 الخلايا تعامل مع استراديول. في هذا التقرير وصفنا جيل من العينات لRNA تسلسل، رقاقة تسلسل والتجارب الايض والتحليل الحسابي التكاملي للبيانات التي تم الحصول عليها. هذه الطريقة مفيدة في تحديد الخلد روايةآليات دائرية ودوائر الجينات التنظيمية التي تنظم من قبل عامل النسخ معين مما يؤثر التمثيل الغذائي للخلايا العادية أو المريضة.

Introduction

هرمون الاستروجين هي منظمات هامة لكثير من العمليات الفسيولوجية في كل من الإناث والذكور بما في ذلك الأنسجة التناسلية، الأنسجة التمثيل الغذائي والدماغ والعظام 1. بالإضافة إلى آثار مفيدة في هذه الأنسجة، هرمون الاستروجين أيضا دفع السرطانات التي تنشأ من الثدي والأنسجة التناسلية. هرمون الاستروجين يعمل أساسا من خلال المتطلبات البيئية للحث على نوع من الخلايا آثار محددة. أثبت تسلسل عميق من النصوص التي تنظمها ERα باستخدام تسلسل الحمض النووي الريبي وعلى نطاق الجينوم ERα تحليل الحمض النووي مواقع الربط باستخدام رقاقة تسلسل لتكون مفيدة لفهم كيفية عمل ERα في الأنسجة وأمراض السرطان المختلفة التي تنجم عنها. نحن وغيرنا قد نشرت الجينات ملامح التعبير يرتبط مع مستقبلات مختلفة (ERα مقابل ERβ) 2،3، بروابط مختلفة 3-5 وcoregulators مختلفة 2،4،6،7.

RNA تسلسل هو الأسلوب الرئيسي لدراسة Transcriptome على، وتقديم أعلى دقة وكفاءة مقارنة با ميكروأريتحليل التعبير الجيني (سيد) 8. وتسلسل الحمض النووي الريبي التي تم الحصول عليها من خطوط الخلايا 2-4،7 أو الأنسجة أو عينات الورم، وتعيينها إلى المجالس الجينومية المتاحة ويتم تحديد الجينات ينظم بشكل مختلف. ويعمل لونين مناعي (رقاقة) لتشريح عامل النسخ وcoregulator الكروماتين ملزمة لمواقع الربط التنظيمية المعروفة. رقاقة تسلسل (رقاقة تليها عالية التسلسل الإنتاجية) على الكشف غير متحيز للمواقع الربط العالمية. الايض هو نهج آخر تستخدم بشكل متزايد البيولوجيا النظام الذي كميا التدابير، استجابة multiparametric ديناميكية من الأنظمة الحية لمختلف المنبهات بما في ذلك المواد الكيميائية والاضطرابات الوراثية.

عن طريق أداء التنميط التمثيل الغذائي العالمي، ويمكن الحصول على قراءات وظيفية من الخلايا والأنسجة والدم. وبالإضافة إلى ذلك، معلومات من تجارب Transcriptome على لا تعكس دائما التغيرات الفعلية في مستوى الانزيمات التي تساهم في المسارات البيوكيميائية. الجمع بينتحليل البيانات Transcriptome على وmetabolome تمكننا من تحديد وربط التغيرات في التعبير الجيني مع التغييرات الأيض الفعلية. تسخير المعلومات من جميع وتوفر هذه المجموعات على نطاق واسع في تفاصيل الآلية لفهم دور عوامل النسخ التي تنظم النظم البيولوجية المعقدة، وخاصة تلك التي تتعلق بالتنمية البشرية والأمراض مثل السرطان والسكري.

الطبيعة المعقدة للجينوم الثدييات يجعل صعوبة في الاندماج وتفسير البيانات التي تم الحصول عليها من Transcriptome على، cistrome وmetabolome التجارب بشكل كامل. تحديد الأحداث ملزمة الوظيفية التي من شأنها أن تؤدي إلى تغييرات في التعبير عن الجينات المستهدفة مهم جدا لأنه يتم تحديد مواقع الربط مرة واحدة الوظيفية؛ تلت ذلك التحليل، بما في ذلك النسخ ملزمة (TF) تحليل عزر، يمكن أن يؤديها مع أعلى قدر من الدقة. وهذا يؤدي إلى التعرف على شلالات TF ذات مغزى من الناحية البيولوجية والآليات. comparis المباشرة أيضاعلى التجارب يليها-RNA والشذرة يليها ليست دائما ممكنة لأن البيانات من كل تجربة لها اختلاف المقاييس والضوضاء، وفي بعض الحالات يتم حجب إشارات ذات مغزى من الضوضاء السكان. نحن لسنا على علم بأي دراسة تلك المعلومات من هذه المناهج مستقلة ولكنها ذات صلة ثلاث لفهم تنظيم التمثيل الغذائي المباشر من قبل ERα في سرطان الثدي المتكاملة. لذلك، لدينا الهدف العام في هذه الورقة هو لربط الأحداث ملزمة الإنتاجية إلى التعبير الجيني والتغيرات الأيض. من أجل تحقيق هذا الهدف، ونحن دمج بيانات من RNA تسلسل، رقاقة تسلسل والايض التجارب وتحديد تلك التي يسببها هرمون الاستروجين ERα الأحداث التي من شأنها أن تؤدي إلى تغيرات التعبير الجيني في المسارات الأيضية ملزمة. للمرة الأولى، ونحن نقدم مجموعة كاملة من البروتوكولات (الشكل 1) لتوليد رقاقة تسلسل، RNA تسلسل والايض التنميط وإجراء تحليل متكامل من البيانات للكشف عن الدوائر الجينات الجديدة التي تنظم عملية التمثيل الغذائي للالثديخطوط الخلايا السرطانية.

Protocol

1. إعداد عينات الحمض النووي الريبي يليها ثقافة الخلية والعلاج ثقافة الخلايا MCF7 في MEM تحسين (IMEM) زائد الفينول الحمراء المتوسطة مع 10٪ الحرارة غير نشط FBS، 1٪ البنسلين / الستر?…

Representative Results

Transcriptomics لتحليل الجينات وأعرب تفاضلي عن طريق العلاج E2، اخترنا لإجراء تجربة-RNA يليها. بالإضافة إلى توفير المعلومات حول مستويات مرنا، يمكن للبيانات الحمض النووي الريبي يليها أيضا أن تستخدم لرصد التغيرات في (الرنا طويلة غير الترميز، الرنا الميكرو?…

Discussion

في هذه الورقة، وصفنا جيل والتحليل التكاملي من الحمض النووي الريبي تسلسل، رقاقة تسلسل والبيانات الايض من MCF-7 الخلايا التي يتم التعامل مع E2. قمنا بتطوير مجموعة من بروتوكولات وضع استراتيجيات للاستفادة من الأساليب الأكثر فعالية وسهولة التركيبات الناعمة الودية التي تنت…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وأيد هذا العمل من المنح المقدمة من المعهد الوطني للأغذية والزراعة، وزارة الزراعة، جائزة ILLU-698-909 (ZME) وفايزر، وشركة (ZME). محتوياته هي الجهة الوحيدة المسؤولة عن المؤلفين ولا تمثل بالضرورة وجهة النظر الرسمية لوزارة الزراعة الأمريكية.

Materials

Triglyceride Mix Sigma 17810-1AMP-S
Oleic acid  Sigma O1257-10MG Oleic Acid-Water Soluble powder 
TRIzol Reagent Life technologies  15596-026
Dynabeads Protein A Life technologies  10006D
Dynabeads Protein G Life technologies  10007D
QIAquick PCR Purification Kit QIAGEN 28106 DNA isolation of input sample 
ZYMO ChIP-DNA Isolation kit  Zymo Research  D5205 ChIP DNA Clean & Concentrator
Quant-iTª PicoGreen¨ dsDNA Assay Kit Invitrogen  P7589 DNA Quantitation
RNase-Free DNase Set QIAGEN 79254 RNA purification
DEPC Treated Water  LIFE TECH 462224 Dnase/Rnase Free
Model 120 Sonic Dismembrator Fisher Scientific  FB120110 With 1/8 probe 
 Fisher Scientific Sound Enclosure Fisher Scientific  FB-432-A For sound reduction
 Eppendorf Tubes 5.0mL Eppendorf  0030 119.401 200 tubes (2 bags of 100 ea.)
Random Primer Mix  NEB S1330S
DNTP MIX NEB N0447S
M-MuLV Reverse Transcriptase NEB M0253S
FastStart SYBR Green Master ROCHE 4673484001
Agarose Fisher  BP160100 1.5% agarose gel 
Qubit® RNA HS Assay Kit Life technologies  Q32852 RNA quantification (100 assays) 
Formaldehyde Sigma F8775
Protease Inhibitor tablets  Roche  4693116001 Each tablet is sufficient for 10ml lysis buffer
PhosSTOP Phosphatase Inhibitor Cocktail Tablets Roche  4906845001 Each tablet is sufficient for 10ml lysis buffer
Qubit® Assay Kits Life technologies  Q32850 For 100 assays
Automated cell counter ORFLO MXZ000
tube Rotator  VWR 10136-084
Victor X5 Multilple plate reader  PerkinElmer 2030-0050
Microcentrifuge 5417R Eppendorf 22621807
Magnetic Stand Diagenode B04000001 
Fast Real-time PCR system Applied Science  4351405

References

  1. Hamilton, K. J., Arao, Y., Korach, K. S. Estrogen hormone physiology: reproductive findings from estrogen receptor mutant mice. Reprod Biol. 14 (1), 3-8 (2014).
  2. Madak-Erdogan, Z., et al. Integrative genomics of gene and metabolic regulation by estrogen receptors alpha and beta, and their coregulators. Mol Syst Biol. 9, 676 (2013).
  3. Gong, P., et al. Transcriptomic analysis identifies gene networks regulated by estrogen receptor alpha (ERalpha) and ERbeta that control distinct effects of different botanical estrogens. Nucl Recept Signal. 12, e001 (2014).
  4. Bergamaschi, A., et al. The forkhead transcription factor FOXM1 promotes endocrine resistance and invasiveness in estrogen receptor-positive breast cancer by expansion of stem-like cancer cells. Breast Cancer Res. 16 (5), 436 (2014).
  5. Madak-Erdogan, Z., et al. Nuclear and extranuclear pathway inputs in the regulation of global gene expression by estrogen receptors. Mol Endocrinol. 22 (9), 2116-2127 (2008).
  6. Madak-Erdogan, Z., Lupien, M., Stossi, F., Brown, M., Katzenellenbogen, B. S. Genomic collaboration of estrogen receptor alpha and extracellular signal-regulated kinase 2 in regulating gene and proliferation programs. Mol Cell Biol. 31, 226-236 (2011).
  7. Madak-Erdogan, Z., Ventrella, R., Petry, L., Katzenellenbogen, B. S. Novel roles for ERK5 and cofilin as critical mediators linking ERalpha-driven transcription, actin reorganization, and invasiveness in breast cancer. Mol Cancer Res. 12 (5), 714-727 (2014).
  8. Wang, Z., Gerstein, M., Snyder, M. RNA-Seq: a revolutionary tool for transcriptomics. Nat Rev Genet. 10 (1), 57-63 (2009).
  9. Invitrogen. . Quant-iT™ PicoGreen ® dsDNA Reagent and Kits. , (2008).
  10. Lee, P. Y., Costumbrado, J., Hsu, C. Y., Kim, Y. H. Agarose gel electrophoresis for the separation of DNA fragments. J Vis Exp. (62), (2012).
  11. . . Quant-iT™ Assays for high-throughput quantitation of DNA, RNA, and oligos. , (2006).
  12. Kim, D., et al. TopHat2: accurate alignment of transcriptomes in the presence of insertions, deletions and gene fusions. Genome Biol. 14 (4), R36 (2013).
  13. Langdon, W. B. Performance of genetic programming optimised Bowtie2 on genome comparison and analytic testing (GCAT) benchmarks. BioData Min. 8, (2015).
  14. Zhang, Y., et al. Model-based analysis of ChIP-Seq(MACS). Genome Biol. 9 (9), R137 (2008).
  15. Gao, J., et al. Metscape: a Cytoscape plug-in for visualizing and interpreting metabolomic data in the context of human metabolic networks. Bioinformatics. 26, 971-973 (2010).
  16. Schroeder, A., et al. The RIN: an RNA integrity number for assigning integrity values to RNA measurements. BMC Mol Biol. 7 (3), (2006).
  17. Mokry, M., et al. Efficient double fragmentation ChIP-seq provides nucleotide resolution protein-DNA binding profiles. PLoS One. 5 (11), e15092 (2010).
  18. Park, P. J. ChIP-seq: advantages and challenges of a maturing technology. Nat Rev Genet. 10, 669-680 (2009).
  19. Landt, S. G., et al. ChIP-seq guidelines and practices of the ENCODE and modENCODE consortia. Genome Res. 22 (9), 1813-1831 (2012).
  20. Hah, N., Kraus, W. L. Hormone-regulated transcriptomes: lessons learned from estrogen signaling pathways in breast cancer cells. Mol Cell Endocrinol. 382, 652-664 (2014).
check_url/fr/53832?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Zhao, Y. C., Madak Erdogan, Z. Systems Biology of Metabolic Regulation by Estrogen Receptor Signaling in Breast Cancer. J. Vis. Exp. (109), e53832, doi:10.3791/53832 (2016).

View Video