Il existe peu de rapports sur l’anatomie cellulaire de la zone de l’essuie-glace de la paupière interne et un seul rapport utilise des méthodes cytologiques. L’optimisation d’une méthode de collecte, de coloration et d’imagerie des cellules de la région LW à l’aide de la cytologie d’empreinte (CI) est décrite dans cette étude. Les cellules sont prélevées sur la surface interne de la paupière supérieure de sujets humains à l’aide de membranes hydrophiles en polytétrafluoroéthylène (PTFE) et colorées avec des colorants cytologiques pour révéler la présence de cellules caliciformes, de mucines, de noyaux cellulaires et de divers degrés de pré- et de parakératinisation. Les colorants immunocytochimiques montrent une activité d’estérase cellulaire et des membranes cellulaires compromises par l’utilisation d’un microscope laser à balayage confocal. Jusqu’à 100 images numériques microscopiques sont capturées pour chaque échantillon et assemblées en une image haute résolution à grande échelle de l’ensemble de la portée du circuit intégré. Nous démontrons une sensibilité de la CI plus élevée que celle rapportée précédemment, appropriée pour identifier les morphologies cellulaires et l’activité métabolique dans la zone LW. À notre connaissance, c’est la première fois que cette sélection de colorants fluorescents est utilisée pour imager des membranes de circuits intégrés LW. Ce protocole sera efficace dans les études futures pour révéler des détails non documentés de la zone LW, tels que l’évaluation des particularités cellulaires des porteurs de lentilles de contact ou des patients atteints de sécheresse oculaire ou d’épithéliopathie par essuie-glace.