Summary

משולב האינפרה-אדום הקרוב הדמיה פלורסנט וטומוגרפיה-מחושב מיקרו ישירות חזותי מוחין Thromboemboli

Published: September 25, 2016
doi:

Summary

פרוטוקול זה מתאר את היישום של ניאון בשילוב האינפרה-אדום הקרוב (NIRF) הדמיה וטומוגרפיה-מחושב מיקרו (microCT) המאפשר הדמיה thromboemboli מוחין. טכניקה זו מאפשרת כימות של נטל פקיק ואבולוציה. טכניקת דימות NIRF מדמיינת שכותרתו fluorescently פקיק במוח הניכר, ואילו טכניקת microCT מדמיינת פקיק בתוך חיות בעלות באמצעות-חלקיקי זהב.

Abstract

הדמית פקיק ישירה מדמיינת את שורש אוטם תרומבואמבוליים. יכולת פקיק תמונה ישירות מאפשרת הרבה יותר טוב חקירת השבץ מאשר להסתמך על מדידות עקיפות, ותהיה כלי מחקר כלי דם חזק ויציב. אנו משתמשים בגישה הדמיה אופטית כי תוויות thrombi בטוש פקיק הדמיה מולקולרית – פלורסנט Cy5.5 האינפרה-אדום קרוב (NIRF) בדיקה מקושרת קוולנטית גדילי הפיברין של פקיק ידי פעולת אנזימטית crosslinking-הפיברין של XIIIa גורמת קרישה המופעלת במהלך התהליך של התבגרות קריש. טומוגרפיה מיקרו ממוחשבת (microCT), גישה מבוססת משתמשת חלקיקי זהב שוחרת פקיק (AuNPs) פונקציונליות כדי למקד המרכיב העיקרי של קריש: הפיברין. מאמר זה מתאר פרוטוקול מפורט עבור בשילוב in vivo microCT לשעבר vivo NIRF הדמיה של thromboemboli במודל של עכברים לשבץ תסחיפי. אנו מראים כי in vivo </ em> microCT ו AuNPs גליקול-chitosan במיקוד הפיברין (FIB-GC-AuNPs) יכול לשמש המאפשר הדמיה הן thrombi באתרו thrombi תסחיפי מוחין. כמו כן, אנו מתארים את השימוש של in vivo הדמית פקיק הישיר מבוסס microCT לפקח על ההשפעות הטיפוליות הסדרה של thrombolysis בתיווך activator plasminogen רקמות. לאחר פגישת ההדמיה האחרונה, אנחנו מדגימים ידי vivo לשעבר NIRF הדמיה במידה וחלוקת thromboemboli שיורית במוח. לבסוף, אנו מתארים תמונה ניתוחים כמותיים של נתוני הדמיה microCT ו NIRF. הטכניקה בשילוב של הדמית פקיק ישירה מאפשרת שתי שיטות עצמאיות של ויזואליזציה פקיק שתשווינה: באזור של אות ניאון הקשורות פקיק על vivo לשעבר NIRF הדמיה לעומת היקף thrombi microCT hyperdense in vivo.

Introduction

אחד מכל 6 אנשים לוקה בשבץ בשלב כלשהו בחייהם. שבץ איסכמי הוא ללא ספק סוג השבץ הנפוץ ביותר, והוא מהווה כ -80 אחוזים מכלל מקרי השבץ. בגלל thromboemboli לגרום רוב שבץ איסכמי אלה, יש עניין גובר בתחום ההדמיה פקיק ישיר.

ההערכה היא כי כ -2 מיליון תאי מוח מתים במהלך כל דקה של חסימה בעורק באמצע מוחין 1, מה שמוביל את הסיסמה "הזמן הוא המוח". ניתן לעשות טומוגרפיה ממוחשבת (CT) מחקרים במהירות, והם זמינים באופן נרחב; מסיבה זו, CT נשאר ההדמיה שבה נקט באבחון וטיפול הראשוני של שבץ איסכמי hyperacute. CT הוא בעל ערך במיוחד עבור ליידע את ההחלטות המוקדמות הקריטיות: מתן activator plasminogen רקמות (tPA) עבור thrombolysis ו / או triaging אל יחזור קריש 2 endovascular. הדמית פקיק הנוכחית מבוסס CT, לעומת זאת, לא ניתן לעקוב אחר סדרה cerebral thromboemboli in vivo, כי היא משתמשת בשיטות עקיפות להפגין thrombi: לאחר עכירות של ברכת הדם לעומת זאת עם יוד, את thrombi מתואר כבעלי מילוי פגמי הכלי. קיימות מגבלות מינון וסיכונים הקשורים במתן החוזר של ניגוד עם יוד, אשר ימנעו חזרו הדמיה של thrombi בצורה זו.

לפיכך, יש צורך קריטי עבור מתודולוגיה הדמיה ישירה thrombi מוחות בחולי שבץ מוחי, כדי לאפשר מהר והחלטות טיפול טובות יותר להתבצע. אנו מציעים לעשות זאת על ידי הגדלת ערכן של CT, באופנות הדמיה החזית המשמש כיום לשבץ, עם השימוש סוכן הדמיה מולקולרית nanoparticular שוחרת פקיק.

אנחנו הוכחנו את השימוש של סוכן באמצעות טומוגרפיה מייקרו ממוחשב (microCT) חברה לשעבר vivo ברזולוציה גבוהה או in vivo (חיה קטנה) גרסת הדמיה של CT המאפשרת רכישת נתונים מהירים <sup> 3,4. אפילו עם ניגוד הרקמות הרך העני יחסית זמין עבור microCT חיים הקטן (הרבה יותר גרוע ממה שזמין מסורקי אדם בגודל), סוכן ההדמיה הצליח לחפש ולסמן thrombi ידי הפיכתם hyperdense על CT, א 'סימן כלי צפוף "משופר על ידי מולקולרי הַדמָיָה.

משלימים את הטכניקה CT, הקבוצה שלנו בעבר פיתח טכניקת דימות פקיק ישירה אופטי באמצעות Cy5.5 פלורסנט האינפרה-אדום הקרוב (NIRF) בדיקה לדמיין נטל פקיק מוחין 5. זוהי טכניקה vivo לשעבר על המוח פוסט מורטם, אבל הוא רגיש מאוד, ויש בהם כדי לאשר בנתונים vivo בסביבה המחקר.

בשניהם CT ו- NIRF מבוסס טכניקות הדמיה שוחרת פקיק מאפשר לנו להשוות לעומת טכניקות אלה כדי להשיג נתונים אינפורמטיבי מאוד על עצמו את התפקיד של פקיק והדמיה פקיק בתהליך של פיתוח שבץ איסכמי.

Here, אנו מתארים פרוטוקול מפורט של טכניקה בשילוב של microCT in vivo לשעבר vivo NIRF הדמיה לדמיין thromboemboli ישירות במודל של עכברים לשבץ תסחיפים. שיטות פשוטות ויציבות אלה שימושיים כדי לקדם את הבנתנו מחל טרומבוטיים ידי ההפעלה המדויקת בהערכת vivo של פקיק ניטל / הפצה ואפיון של אבולוציה פקיק דינמית באופן מהיר וכמותיים in vivo במהלך טיפול, ואחריו נתוני vivo לשעבר המשמשים כסטנדרט מלא התייחסות לאישור של ממצאי הדמית in vivo.

Protocol

נהלי כל החיה הפגינו פרוטוקול זה כבר נבדקו ואושרו על ידי הטיפול בבעלי חי Dongguk אונ' אילסאן חולי ועדת שימוש ו הנערכים בהתאם לעקרונות והנהלים המפורטות במדריך NIH לטיפול והשימוש בחיות. 1. הכנת קריש נוצר כתרופת תווית עם קרינת מרקר (איור 1) <ol style=";text…

Representative Results

תמונות Baseline microCT, שהושגו vivo שלאחר מתן לבלף-GC-AuNP (10 מ"ג / מ"ל, 300 μl) בשעה 1 שעות לאחר שבץ תסחיפי, פקיק מוחין דמיינו בבירור MCA – אזור הסתעפות ACA של עורק התרדמה הפנימי הדיסטלי (איור 6 ). מעקב הדמית microCT לא הראתה שינוי פקיק פרה עם טיפול מלוח. עם ז…

Discussion

הפגנו את השימוש בשתי טכניקות הדמיה מולקולריות משלימות הדמית פקיק ישירה במודלים ניסיוניים לשבץ תסחיפים: א הפיברין ממוקד ננו-חלקיקים מזהב (FIB-GC-AuNP) בתחום הדמית vivo מבוסס microCT, וכן FXIIIa ממוקד חללית הדמיה אופטית עבור לשעבר vivo הדמיה ניאון.

<p class="jove_content" style=";tex…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי R טכנולוגיה בריאות קוריאה ופיתוח הפרויקט, משרד הבריאות והרווחה (HI12C1847, HI12C0066), תוכנית הפיתוח של טכנולוגיה ביו ורפואה (2,010-0,019,862) ו במעבדת המחקר העולמי (GRL) תוכנית (NRF-2015K1A1A2028228) של לאומי למחקר קרן, ממומנת על ידי ממשלת קוריאה.

Materials

Machines
microCT NanoFocusRay, JeonJu, Korea NFR Polaris-G90
NIRF imaging system Roper-scientific,Tucson, AZ coolsnap-Ez
Laser Doppler flowmeter Perimed, Stockholm, Sweden PeriFlux System 5000
Surgical microscope Leica Microsystems, Seoul, Korea EZ4HD
Inhalation anesthesia machine PerkinElmer, Massachusetts, USA XGI-8
Software
NFR control NanoFocusRay, JeonJu, Korea NFR Polaris-G90 microCT control software
Lucion Infinitt, Seoul, Korea Lucion 3D render imaging software
Lab chart 7 ADInstruments, Colorado, USA Lab chart 7 rCBF
Image J software Wanye Rasband, NIH, USA 1.49d imaging analysis
Devices/Instruments
Infusion pump Harvard, Massachusetts, USA pump 22(55-2226)
Homeothermic blanket Panlab, Barcelona, Spain HB101
Pocket cautery Daejong, Seoul, Korea DJE-39
Brain matrice Ted pella, CA, USA 15003 coronal section
PE-50 tubing Natsume, Tokyo, Japan SP-45(PE-50) I.D. 0.58 mm O.D. 0.96 mm
PE-10 tubing Natsume, Tokyo, Japan SP-10(PE-10) I.D. 0.28mm O.D. 0.61 mm
30 gauge needle sungshim-medical, Seoul, Korea
Syringe CPL-medical, Ansan, Korea 1 & 3 cc
Gauze Panamedic, Cheonan, Korea
Tape Scotch, Seoul, Korea 3M-810
Micro forceps Fine Science Tools, Vancouver, Canada  11253-27 Dumont #L5
Micro scissor Fine Science Tools, Vancouver, Canada 15000-03 Vannas spring
Scissor Fine Science Tools, Vancouver, Canada 14084-08 8.5 cm
Black silk suture Ailee, Busan, Korea SK6071, SK728 6-0 and 7-0
Reagents
meloxicam Yuhan, Seoul, Korea
vet ointment Novartis, Basel, Swiss
10% Povidone-iodine (betadine) Firson, Cheon-an, Korea
FeCl3 Sigma, Missouri, United States 157740-5G
TTC Amresco, Ohio, USA 0765-100g
Isoflurane Hana-Pham, Gyeonggi, Korea Ifran 100 mL
PBS Welgene, Daegu, Korea LB001-02 500 mL
Gold nanoparticles Synthesis
C15 optical agent Synthesis
Tissue plasminogen activator Boehringer Ingelheim, Biberach, Germany rtPA(actilyse) 20 mg
Normal saline Daihan Pham, Seoul, Korea 48N3AF3 20 mL

References

  1. Saver, J. L. Time is brain–quantified. Stroke. 37 (1), 263-266 (2006).
  2. Latchaw, R. E., et al. Recommendations for imaging of acute ischemic stroke: a scientific statement from the American Heart Association. Stroke. 40 (11), 3646-3678 (2009).
  3. Kim, D. E., et al. Hyperacute direct thrombus imaging using computed tomography and gold nanoparticles. Ann Neurol. 73 (5), 617-625 (2013).
  4. Kim, J. Y., et al. Direct Imaging of Cerebral Thromboemboli Using Computed Tomography and Fibrin-targeted Gold Nanoparticles. Theranostics. 5 (10), 1098-1114 (2015).
  5. Kim, D. E., et al. Direct thrombus imaging as a means to control the variability of mouse embolic infarct models: the role of optical molecular imaging. Stroke. 42 (12), 3566-3573 (2011).
  6. Parasuraman, S., Raveendran, R., Kesavan, R. Blood sample collection in small laboratory animals. J Pharmacol Pharmacother. 1 (2), 87-93 (2010).
  7. Durukan, A., Tatlisumak, T., Fisher, M. Animal models of ischemic stroke. Handbook of clinical neurology: Stroke Part 1: Basic and epidemiological aspects.Volume 92. 92, 43-66 (2009).
  8. Overoye-Chan, K., et al. EP-2104R: a fibrin-specific gadolinium-Based MRI contrast agent for detection of thrombus. J Am Chem Soc. 130 (18), 6025-6039 (2008).
  9. Kim, D. E., Schellingerhout, D., Jaffer, F. A., Weissleder, R., Tung, C. H. Near-infrared fluorescent imaging of cerebral thrombi and blood-brain barrier disruption in a mouse model of cerebral venous sinus thrombosis. J Cereb Blood Flow Metab. 25 (2), 226-233 (2005).
  10. Tung, C. H., et al. Novel factor XIII probes for blood coagulation imaging. Chembiochem. 4 (9), 897-899 (2003).
  11. Robinson, B. R., Houng, A. K., Reed, G. L. Catalytic life of activated factor XIII in thrombi. Implications for fibrinolytic resistance and thrombus aging. Circulation. 102 (10), 1151-1157 (2000).
  12. Reed, G. L., Houng, A. K. The contribution of activated factor XIII to fibrinolytic resistance in experimental pulmonary embolism. Circulation. 99 (2), 299-304 (1999).
  13. Sun, I. C., et al. Biocompatible glycol chitosan-coated gold nanoparticles for tumor-targeting CT imaging. Pharm Res. 31 (6), 1418-1425 (2014).
  14. Celi, A., et al. Thrombus formation: direct real-time observation and digital analysis of thrombus assembly in a living mouse by confocal and widefield intravital microscopy. J Thromb Haemost. 1 (1), 60-68 (2003).
  15. Chen, I. Y., Wu, J. C. Cardiovascular molecular imaging: focus on clinical translation. Circulation. 123 (4), 425-443 (2011).
  16. Wintermark, M., et al. Imaging recommendations for acute stroke and transient ischemic attack patients: a joint statement by the American Society of Neuroradiology, the American College of Radiology and the Society of NeuroInterventional Surgery. J Am Coll Radiol. 10 (11), 828-832 (2013).
  17. Weissleder, R., Tung, C. H., Mahmood, U., Bogdanov, A. In vivo imaging of tumors with protease-activated near-infrared fluorescent probes. Nat Biotechnol. 17 (4), 375-378 (1999).
  18. Narayanan, S., et al. Biocompatible magnetite/gold nanohybrid contrast agents via green chemistry for MRI and CT bioimaging. ACS Appl Mater Interfaces. 4 (1), 251-260 (2012).
  19. Amendola, V., et al. Magneto-plasmonic Au-Fe alloy nanoparticles designed for multimodal SERS-MRI-CT imaging. Small. 10 (12), 2476-2486 (2014).
  20. Zhu, J., et al. Synthesis of Au-Fe3O4 heterostructured nanoparticles for in vivo computed tomography and magnetic resonance dual model imaging. Nanoscale. 6 (1), 199-202 (2014).

Play Video

Citer Cet Article
Kim, D., Kim, J., Lee, S., Ryu, J. H., kwon, I. C., Ahn, C., Kim, K., Schellingerhout, D. Combined Near-infrared Fluorescent Imaging and Micro-computed Tomography for Directly Visualizing Cerebral Thromboemboli. J. Vis. Exp. (115), e54294, doi:10.3791/54294 (2016).

View Video