Summary

Protocole CUBIC Visualise Protein Expression à cellule unique Résolution dans les préparations entières de la peau de montage

Published: August 04, 2016
doi:

Summary

Ce rapport décrit un protocole CUBIC pour clarifier plein des biopsies de peau d'épaisseur de la souris, et de visualiser les profils d'expression de la protéine, les cellules proliférantes, et sébocytes à la résolution d'une seule cellule en 3D. Cette méthode permet une évaluation précise de l'anatomie de la peau et de la pathologie et de phénotypes épidermiques anormales dans des lignées de souris génétiquement modifiées.

Abstract

La peau est essentielle pour notre survie. La couche externe est constituée de l'épiderme de l'épiderme interfolliculaire, qui est un épithélium pavimenteux stratifié qui couvre la majeure partie de notre corps, et les phanères comme les follicules pileux et des glandes sudoripares. L'épiderme subit la régénération pendant toute la vie et en réponse à une blessure. Ceci est activé par K14 exprimant des populations souches / cellules progénitrices épidermiques basales qui sont étroitement régulés par des mécanismes de régulation multiples actifs dans l'épiderme et entre l'épiderme et le derme. Cet article décrit une méthode simple pour clarifier plein des biopsies de peau d'épaisseur de la souris, et de visualiser les profils d'expression de la protéine K14, Ki67 étiquetés cellules proliférantes, rouge Nil étiqueté sébocytes, et l'étiquetage nucléaire DAPI à la résolution de la cellule unique en 3D. Cette méthode permet une évaluation précise et la quantification de l'anatomie de la peau et de la pathologie et de phénotypes épidermiques anormales dans des lignées de souris génétiquement modifiées. Le protocole CUBIC est ee meilleure méthode disponible à ce jour pour étudier les interactions moléculaires et cellulaires en pleine épaisseur biopsies de la peau à la résolution d'une seule cellule.

Introduction

La peau est essentielle pour notre survie. Il se compose de trois couches principales de l'épiderme les extérieurs, le derme et l'hypoderme. L'épiderme est un tissu très régénérative. Il est un épithélium pavimenteux stratifié, composé principalement de kératinocytes. Les kératinocytes sont nés dans la couche basale, et se déplacent vers le haut à travers les couches suprabasales tout en différenciant, et finalement ils tombent dans la couche externe cornified environ un mois après leur naissance. L'épiderme se développe un certain nombre d'appendices, y compris les follicules pileux et des glandes sébacées. Les follicules pileux se régénèrent également de façon cyclique tout au long de la vie 1. La capacité de régénération de l'épiderme est activé par la présence de cellules souches et progénitrices qui sont situés dans la couche basale de l'épiderme interfolliculaire des follicules pileux et 2.

De nombreuses voies de signalisation ont été impliquées dans le développement et la régénération de l'épiderme. Certaines d'entre elles se produisent à l'intérieurseulement l'épiderme, telles que la voie Hedgehog. D' autres événements de signalisation ont lieu entre le derme et l' épiderme 3. Par exemple, les signaux Wnt du derme sont considérées comme importantes pour le développement des follicules pileux, et ils sont sécrétés par la papille dermique au début de la phase anagène pour activer le follicule pileux gonflement souches / progénitrices la prolifération cellulaire et la croissance des follicules pileux 4. Il est important de comprendre les mécanismes cellulaires et moléculaires qui contrôlent le développement de l'épiderme et de la régénération afin de mieux comprendre comment ils peuvent être perturbés dans les maladies régénératrice de la peau telles que le cancer de la peau.

Cet article décrit un lear C, U nobstructed B pluie I cocktails forgemagie et C analyse omputational (CUBIC) protocole 5-7 pour clarifier les préparatifs de la peau de montage entières, et de visualiser les profils d'expression des protéines dans les 3 dimensions à la résolution d'une seule cellule par microscopie confocale. La méthode CUBIC implique l'immersion de la peautissu en deux cocktails chimiques à base de aminoalcools. Ces solutions ajuster les indices de réfraction de l'échantillon de peau, en laissant le tissu transparent et les protéines intactes, ce qui permet immunodétection à une résolution à une seule cellule.

En utilisant ce protocole CUBIQUE, la base et la prolifération des populations de kératinocytes dans l'épiderme interfolliculaire et dans les follicules pileux ont été imagées en totalité des biopsies de peau d'épaisseur des souris de type sauvage en utilisant l'anti-Keratin14 (K14) et des anticorps anti-Ki67. Les glandes sébacées dans les biopsies de la peau de type sauvage ont également été visualisés en utilisant du Nil Rouge coloration. Enfin, les populations de kératinocytes basaux de type sauvage et hyperplasiques biopsies cutanées YAP2-5SA-Ac 8 ont été comparés.

Ce protocole CUBIC permet une évaluation visuelle de l'expression des protéines dans leur intégralité des biopsies de peau d'épaisseur à la résolution d'une seule cellule, et est un outil important pour apprécier l'anatomie épidermique et défauts morphologiques dans la peau d'organismes génétiquement modifiéssouris, et d'enquêter sur les mécanismes cellulaires et moléculaires qui sous-tendent le développement de l'épiderme et de la régénération.

Protocol

Déclaration éthique: Toutes les procédures impliquant des sujets animaux suivent les directives du Comité des soins aux animaux et de l'éthique (ACEC) à UNSW Australie sous protocole approuvé AFIC 13 / 64B. 1. Préparation du tissu transparent de la peau de la souris Remarque: Toutes les souris utilisées dans cette étude étaient sur une C57BL / 6 de fond génétique Collection de tissus de la peau de la souris. Humainement euthan…

Representative Results

Épaisseur dorsale entière des biopsies de peau de souris adultes de type sauvage ont été clarifiées, colorées avec un anticorps se liant marqueur kératinocytaire de base Keratin14 (K14) , un anticorps, et les noyaux ont été contre -colorées avec une solution de coloration DAPI (Figure 2 et le film 1). Les noyaux DAPI positifs étaient visibles à travers l'échantillon (figure 2A, C) et K14 coloration était visible exclusiveme…

Discussion

Les mécanismes de régulation contrôlant le développement de la peau et de l'homéostasie sont le plus souvent étudiées en 2D à l'aide de sectionnement des tissus et une coloration histologique ou marquage avec des anticorps, ce qui permet seulement une reconnaissance restreinte de la morphologie de la peau, des populations de cellules ou de l'expression de la protéine. Un certain nombre de méthodes ont été développées pour améliorer la visualisation de l'organisation spatiale des cellules e…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous remercions Australian Bio-Resources (Garvan Institute, Australie), le Centre de ressources biologiques (UNSW Australie) et le soin des animaux et Comité d'éthique pour le soutien à l'expérimentation animale. Ce travail a été soutenu par le Conseil national de la santé et de la recherche médicale de l'Australie (Grant Project APP1062720). Dr. Cesar P. Canales est récipiendaires d'une bourse CONICYT-Becas Chile (# 72101076). M. Bassem Akladios est récipiendaire du Prix international de l'Université d'études supérieures par UNSW Australie.

Materials

Paraformaldehyde Sigma-Aldrich  P6418
Ethanol 96% (undenaturated) Chem-supply UN1170
Nile Red Sigma-Aldrich  72485-100MG
4’,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) Roche 10236276001
N,N,N’,N’-tetrakis (2-hydroxypropyl) ethylenediamine Merck Millipore 821940
Polyethylene glycol mono-p-isooctylphenyl ether Merck Millipore 648462
Triton X-100 Merck Millipore 648462
Sucrose Sigma-Aldrich  S0389
Optimal Cutting Temperature (OCT) Compound Tissue-Tek 4583
anti-Keratin14 antibody Covance PRB-155P
anti-Ki67 antibody  Abcam ab16667
Donkey anti-rabbit Alexa 594 Life Technologies A21207
Dimethylsulfoxide Sigma-Aldrich  D2650
Urea Merck Millipore 66612
2,2′,2′’-nitrilotriethanol Merck Millipore 137002
Confocal Microscope Nikon Instruments Inc Nikon A1 – Confocal Microscope
cruZer6 Face Trimmer Braun Braun cruZer6 Face
Sodium azide Sigma-Aldrich  438456

References

  1. Fuchs, E. Scratching the surface of skin development. Nature. 445 (7130), 834-842 (2007).
  2. Watt, F. M., Lo Celso, C., Silva-Vargas, V. Epidermal stem cells: an update. Curr Opin Genet Dev. 16 (5), 518-524 (2006).
  3. Hardy, M. H. The secret life of the hair follicle. Trends Genet. 8 (2), 55-61 (1992).
  4. Lim, X., Nusse, R. Wnt signaling in skin development, homeostasis, and disease. Cold Spring Harb Perspect Biol. 5 (2), (2013).
  5. Susaki, E. A., et al. Whole-brain imaging with single-cell resolution using chemical cocktails and computational analysis. Cell. 157 (3), 726-739 (2014).
  6. Susaki, E. A., Tainaka, K., Perrin, D., Yukinaga, H., Kuno, A., Ueda, H. R. Advanced CUBIC protocols for whole-brain and whole-body clearing and imaging. Nat Protoc. 10 (11), 1709-1727 (2015).
  7. Tainaka, K., et al. Whole-body imaging with single-cell resolution by tissue decolorization. Cell. 159 (4), 911-924 (2014).
  8. Beverdam, A., Claxton, C., Zhang, X., James, G., Harvey, K. F., Key, B. Yap controls stem/progenitor cell proliferation in the mouse postnatal epidermis. J Invest Dermatol. 133 (6), 1497-1505 (2013).
  9. Fuchs, E., Green, H. Changes in keratin gene expression during terminal differentiation of the keratinocyte. Cell. 19 (4), 1033-1042 (1980).
  10. Braun, K. M., Niemann, C., Jensen, U. B., Sundberg, J. P., Silva-Vargas, V., Watt, F. M. Manipulation of stem cell proliferation and lineage commitment: visualisation of label-retaining cells in wholemounts of mouse epidermis. Development. 130 (21), 5241-5255 (2003).
  11. Hamilton, E., Potten, C. S. Influence of hair plucking on the turnover time of the epidermal basal layer. Cell Tissue Kinet. 5 (6), 505-517 (1972).
  12. Morris, R. J., Fischer, S. M., Slaga, T. J. Evidence that a slowly cycling subpopulation of adult murine epidermal cells retains carcinogen. Cancer Res. 46 (6), 3061-3066 (1986).
  13. Schweizer, J., Marks, F. A developmental study of the distribution and frequency of Langerhans cells in relation to formation of patterning in mouse tail epidermis. J Invest Dermatol. 69 (2), 198-204 (1977).
  14. Chang, H., Wang, Y., Wu, H., Nathans, J. Flat mount imaging of mouse skin and its application to the analysis of hair follicle patterning and sensory axon morphology. J Vis Exp. (88), e51749 (2014).
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Citer Cet Article
Liang, H., Akladios, B., Canales, C. P., Francis, R., Hardeman, E. H., Beverdam, A. CUBIC Protocol Visualizes Protein Expression at Single Cell Resolution in Whole Mount Skin Preparations. J. Vis. Exp. (114), e54401, doi:10.3791/54401 (2016).

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