Summary

Metoder til bestemmelse af priser for glucose og fedtsyreoxidation i Isolated Working Rat Heart

Published: September 28, 2016
doi:

Summary

The following protocol describes the preparation and utilization of buffers for the quantitative measurement of rates of glucose and fatty acid oxidation in the isolated working rat heart. The methods used for sample analysis and data interpretation are also discussed.

Abstract

Den pattedyr hjerte er storforbruger af ATP og kræver en konstant tilførsel af energi substrater til sammentrækning. Ikke overraskende har ændringer af myocardial metabolisme været knyttet til udviklingen af ​​kontraktil dysfunktion og hjertesvigt. Derfor optrevling sammenhængen mellem metabolisme og sammentrækning skal kaste lys over nogle af de mekanismer, der styrer hjerte-tilpasning eller dårlig tilpasning i sygdomstilstande. Det isolerede rotte hjerte præparat arbejder kan bruges til at følge, samtidig og i realtid, hjerte- kontraktile funktion og flux af energi leverer substrater til oxidative metaboliske veje. Den nuværende protokol til formål at give en detaljeret beskrivelse af de metoder, der anvendes til fremstilling og anvendelse af buffere til kvantitativ måling af satserne for oxidation for glucose og fedtsyrer, den vigtigste energi leverer substrater af hjertet. De til prøveanalyse og datafortolkning metoder er også diskuteret.Kort fortalt er teknikken baseret på levering af 14 C- radiomærket glucose og en 3H-radiomærket langkædet fedtsyre til en ex vivo bankende hjerte via normotermisk krystalloid perfusion. 14 CO 2 og 3 H2O, endelige biprodukter af de enzymatiske reaktioner, der er involveret i udnyttelsen af ​​disse energi leverer substrater, derefter kvantitativt genvindes fra koronar spildevand. Med kendskab til den specifikke aktivitet af de radiomærkede anvendte substrater, er det så muligt at individuelt kvantificere fluxen af ​​glucose og fedtsyre ved oxidationen veje. Kontraktile funktion af det isolerede hjerte kan bestemmes parallelt med den passende kontrolapparatet og direkte korreleret til metaboliske flux værdier. Teknikken er yderst nyttig til at studere metabolismen / sammentrækning forhold som reaktion på forskellige stressbetingelser såsom ændringer i før og efter belastning og iskæmi, et lægemiddel eller et omløbTing faktor, eller efter ændring i ekspressionen af ​​et gen produkt.

Introduction

Klinisk relevans

I pattedyrs hjerte, er der en stærk positiv sammenhæng mellem fluxen af substrater gennem oxidative metaboliske veje, ATP generation og hjertets arbejde 1. I de seneste to årtier, har undersøgelsen af den indviklede sammenhæng mellem hjerte-stofskifte og funktion førte til at erkende, at ændringer i hjertets stofskifte er en årsag til kontraktile dysfunktion og eventuelt patologisk strukturelle remodeling i fastsættelsen af forskellige typer af hjertesygdomme 2-4. derfor forventes det, at vores forståelse af de mekanismer, der styrer metaboliske ombygning af stressede hjerte vil føre til identifikation af terapeutiske mål for forebyggelse eller behandling af hjertesvigt 5-7. Den nylige offentliggørelse af en videnskabelig redegørelse fra American Heart Association på "Vurdering Cardiac Metabolisme" understreger den voksende interesse for det videnskabelige samfund for thans forskningsfelt 8. Men mens de teknologiske fremskridt i cardiac imaging nu mulighed for en hurtig og præcis vurdering af hjertefunktionen morfologi og funktion, in vivo-undersøgelse af hjertets stofskifte fortsat begrænset og byrdefuld: kernemagnetisk resonans (NMR) spektroskopi og Positron Emission Tomography (PET) scanning kan anvendes til at følge cardiac høj energi phosphatmetabolisme og Krebs cyklus aktivitet, men disse teknikker er plaget af høje driftsomkostninger og ved deres manglende evne til at bestemme bidraget fra forskellige substrater for oxidativ metabolisme i ligevægtsforhold 9 .For denne dato ex vivo arbejder hjerte forberedelse repræsenterer den eneste og unikke teknik til rådighed til at studere, samtidigt og i realtid, kontraktil funktion og flux af substrater til oxidative metaboliske veje 7,9. Følgende protokol til formål at give retningslinjer i forberedelsen og udnyttelsen af ​​reagenser bruges til at bestemme rottenes af substrater udnyttelse i den isolerede arbejdsmiljø rotte hjerte.

De isolerede Working gnaver Heart Apparatur

Selvom teknikken er næsten et halvt århundrede gamle, det isolerede rottehjerte præparat arbejder stadig et foretrukne metode til kardiovaskulær forskning. Som med Langendorff hjerte forberedelse, arbejdsmiljøet gnaver hjertet tilbyder en relativt simpel, pålidelig og billig måde at måle en bred vifte af hjerteparametre uafhængigt af de forstyrrende virkninger af andre organer, neurohormonale og andre cirkulerende faktorer. Men i modsætning til Langendorff-perfunderet hjerte, arbejdsmiljøet hjertet fortsætter med at udføre næsten fysiologisk hjertets arbejde, en forudsætning for dannelsen af oxidative metaboliske flux til niveauer, der er relevante for in vivo betingelser. Dette opnås ved at levere perfusionen buffer til den venstre ventrikel (LV) via en kanyle forbundet til det venstre atrium, og som LV fylder og udbud, enbuffer udstødes gennem aorta linje mod et bestemt afterload hydrostatisk tryk. Udformningen af perfusion apparat oprindeligt beskrevet af Neely og kolleger 10 blev efterfølgende forbedret ved Taegtmeyer, Hems og Krebs 11, men har ændret sig meget lidt siden da. Som beskrevet i den oprindelige apparat, kan kontraktile funktion vurderes ved bestemmelse af minutvolumen, hjælp ikke flere end graduerede cylindre og et stopur til at måle aorta og koronar strømme 10,11. Flere leverandører nu tilbyde komplette arbejdsmiljø gnaver hjerte perfusion systemer. Disse kommercielt tilgængelige apparater kan erhverves med flowprobes, tryktransducere, et tryk-volumen kateter og alt det nødvendige udstyr til hjerte-funktionel indsamling og analyse af data. Sælgerne giver omfattende dokumentation og kurser til at sætte den nye bruger med deres udstyr. Adskillige oversigtsartikler også detaljer protokoller om arbejdsmiljøet hjerte instrumentation og om brugen af katetre til måling hjertefunktion hos gnavere 12-15. Derfor vil vi kun kort nævne det set-up af perfusion apparater og kontrolapparatet. Den nuværende protokol snarere har til formål at supplere de allerede tilgængelige oplysninger med en beskrivelse af de metoder, der kan gennemføres til samtidig satserne for glucose og langkædede fedtsyrer oxidation, de to store energi leverer substrater i normal hjerte. Vi beskriver her alle de trin, der er involveret i brugen af ​​radioaktivt mærkede energi substrater til vurdering af myokardie oxidativ metabolisme, fra udarbejdelse af reagenser og buffere til genopretning og behandling af prøver, til dataanalyse.

Principper for metoden

Cardiomyocytter generere hovedparten af ​​deres energi til kontraktion fra den oxidative phosphorylering af fedtsyrer (hovedsageligt langkædede fedtsyrer) og carbohydrater (glucose og lactat). Hjertet har meget begrænset energiske reserver og er afhængig af en konstant tilførsel af disse energi leverer substrater fra cirkulationen. Katabolismen af ​​glucose gennem den glycolytiske pathway giver pyruvat, som derefter decarboxyleres ved pyruvatdehydrogenase-kompleks af den indre mitokondrielle membran. Langkædede fedtsyrer, udvundet af cirkulerende albumin eller lipoprotein triglycerider, først aktiveres til acyl-CoA-molekyler i cytosolen og derefter transporteres inde i mitochondriematricen gennem carnitin shuttle at indtaste beta-oxidation pathway. Acetyl-CoA molekyler fremstillet ved katabolismen af glucose og fedtsyrer brændstof Krebs cyklus til at generere de reducerende ækvivalenter (NADH og FADH 2), der anvendes af elektrontransportkæden at bygge proton-motorkraft tværs den indre mitokondrielle membran og generere ATP gennem aktiviteten af ​​ATP syntase. Vand og kuldioxid er de endelige biprodukter afde enzymatiske reaktioner, der finder sted inde i Krebs cyklus. Levering af 14 C- og 3H-radioaktivt mærkede substrater (såsom 14C-radiomærket glucose og 3H-radiomærket oliesyre) til isolerede arbejder hjerte vil følgelig føre til produktion af 14 CO 2 og 3 H2O, som kan kvantitativt udvindes fra koronar spildevand. Indsamlingen af 14 CO 2 udføres ved at holde den isoleret perfunderet hjerte i en forseglet kammer og ved straks udvinding af koronar spildevand, idet den forlader hjertet. En lille anionbyttersøjle bruges til at adskille og genvinde 3 H2O fra koronar spildevand. Radioaktiviteten af ​​de behandlede prøver måles med en væskescintillationstæller, og med kendskab til den specifikke aktivitet af radioaktivt mærkede substrater anvendes, er det så muligt at individuelt kvantificere fluxen af ​​glucose og fedtsyre ioxidation veje 16,17.

Protocol

BEMÆRK: Alle dyreforsøg blev udført i overensstemmelse med NIH Public Health Service Politik på Human Care og anvendelse af dyr og blev godkendt af Institutional Animal Care og brug Udvalg fra University of Mississippi Medical Center. Alle procedurer, der involverer brugen af ​​radioaktive isotoper blev godkendt og udført i overensstemmelse med de retningslinjer, der er fastsat af stråling sikkerhed kontor på University of Mississippi Medical Center. 1. Udarbejdelse af Stock Buffer …

Representative Results

To repræsentative eksperimenter er beskrevet i nedenstående figurer. I begge tilfælde blev hjertet af en 16 uger gamle Sprague Dawley rotte isoleret og perfunderet i arbejds- tilstand med KH-buffer fremstillet ifølge det foregående protokol. I hvert forsøg blev hjertet udsat for en stresstilstand påvirker hjertes arbejde. Cardiac kontraktile funktion blev bedømt ved kontinuerlig registrering af puls tryk gennem indsættelse af en tryktransducer i aorta linje og ved bestemmelse af…

Discussion

Den foregående protokol beskriver de metoder til samtidig kvantificering fluxen af ​​substratet gennem glucose oxidation og fedtsyreoxidation i det isolerede arbejdsdag rotte hjerte. Målingerne kan derefter oven på de optagne cardiac funktionelle parametre for at bestemme forholdet mellem substrater stofskifte og hjerte arbejde under baseline og stress betingelser (ændring i arbejdsbyrden, iskæmi-reperfusion, etc …). Det er også muligt at vurdere, hvordan stofskiftet / sammentrækning forhold påvir…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by National Institutes of Health Grants R00 HL112952 (to R. H.), R01 HL108618 (to J.P.G.), P01 HL051971, and P20 GM104357. The content is solely the responsibility of the authors and does not necessarily represent the official views of the National Institutes of Health.

Materials

Sodium Chloride (NaCl) Fisher Scientific BP358
Potassium Chloride (KCl) Fisher Scientific BP366
Potassium Phosphate Monobasic (KH2PO4) Fisher Scientific P284
Magnesium Sulfate Heptahydrate (MgSO4*7H2O) Fisher Scientific M63
Sodium Bicarbonate (NaHCO3) Fisher Scientific S233
Calcium Chloride (CaCl2) Sigma-Aldrich C5670
AG 1-X8 resin, chloride form, 100-200 dry mesh size, 500 g Bio-Rad 1401441 This item can be replaced by purchasing directly the hydoxide form  (see reference below), but this will cost almost 8 times more
AG 1-X8 resin, hydroxide form, 100-200 dry mesh size, 100 g Bio-Rad 1432445 Purchasing this item allows to bypass the conversion of the anion exchange resin from the chloride form to the hydroxide form (See section 1.2 of protocol)
Glass Microanalysis Vacuum Filter Holder Fisher Scientific 09-753-2
Sodium Hydroxide (NaOH) Fisher Scientific S318 Corrosive. Consult the product MSDS for appropriate handling and storage.
Gas Dispersion Tube with Fritted Cylinder Fisher Scientific 11-138B
Probumin Bovine Serum Albumin Fatty Acid Free, Powder EMD Millipore 820027 We recommend the use of a charcoal-defatted BSA, as other purification process such as cold ethanol fractionation may leave residues toxic for the heart.
Sodium Oleate Sigma-Aldrich O7501
Oleic Acid, [9,10-3H(N)]- PerkinElmer NET289005MC Radioactive material. Follow your Institution's radiation safety office guidelines for ordering and handling.
Dialysis Membrane Tubing, 29 mm diameter Fisher Scientific 08-667E
D-(+)-Glucose Sigma-Aldrich G7021
Glucose, D-[14C(U)]- PerkinElmer NEC042B005MC Radioactive material. Follow your Institution's radiation safety office guidelines for ordering and handling.
Humulin R U-100 Eli Lilly and Company NDC 0002-8215-01 (HI-210)
Inactin Hydrate Sigma-Aldrich T133 Controlled substance on USDEA Schedule III
3-0 Silk Black Braid Roboz Surgical SUT-15-3
10X Hyamine Hydroxide PerkinElmer 6003005 Highly toxic and causes severe burns. Consult the product MSDS for appropriate handling and storage
20 mL Glass Scintillation Vials Fisher Scientific 03-341-25E Use glass vials for quantitative recovery of 14CO2
20 mL HDPE Scintillation Vials Fisher Scientific 03-337-23B Use HDPE vials for quantitative recovery of 3H2O
Red Rubber Sleeve Stoppers Fisher Scientific 14-126DD Fit 20 mL scintillation vials; Reusable
BD PrecisionGlide Needle 23G x 40 mm BD 305194 Use to inject perchloric acid through the rubber sleeve stopper of the CO2 trap
Perchloric Acid, 60% Fisher Scientific A228 Highly corrosive and may act as an oxidizer and/or cause an explosion hazard. Consult the product MSDS for appropriate handling and storage
Ultima Gold, Scintillation Cocktail PerkinElmer 6013327
Glass Wool Fisher Scientific AC38606
Decon Dri-Clean Detergent Powder Fisher Scientific 04-355 For cleaning of glassware, plastic parts, and tubing
Alconox Tergazyme Enzyme-Active Powered Detergent Fisher Scientific 16-000-115 For cleaning of "hard to reach" surfaces (tubing, glassware) contaminated by fatty acid-BSA residue

References

  1. Neely, J. R., Morgan, H. E. Relationship between carbohydrate and lipid metabolism and the energy balance of heart muscle. Annu Rev Physiol. 36, 413-459 (1974).
  2. Sen, S., et al. Glucose regulation of load-induced mTOR signaling and ER stress in mammalian heart. J Am Heart Assoc. 2, e004796 (2013).
  3. Young, M. E., McNulty, P., Taegtmeyer, H. Adaptation and maladaptation of the heart in diabetes: Part II: potential mechanisms. Circulation. 105, 1861-1870 (2002).
  4. Stanley, W. C., Recchia, F. A., Lopaschuk, G. D. Myocardial substrate metabolism in the normal and failing heart. Physiol Rev. 85, 1093-1129 (2005).
  5. Fillmore, N., Lopaschuk, G. D. Targeting mitochondrial oxidative metabolism as an approach to treat heart failure. Biochim Biophys Acta. 1833, 857-865 (2013).
  6. Jaswal, J. S., Keung, W., Wang, W., Ussher, J. R., Lopaschuk, G. D. Targeting fatty acid and carbohydrate oxidation–a novel therapeutic intervention in the ischemic and failing heart. Biochim Biophys Acta. 1813, 1333-1350 (2011).
  7. Taegtmeyer, H. Cardiac metabolism as a target for the treatment of heart failure. Circulation. 110, 894-896 (2004).
  8. Taegtmeyer, H., et al. Assessing Cardiac Metabolism: A Scientific Statement From the American Heart Association. Circ Res. , (2016).
  9. Barr, R. L., Lopaschuk, G. D. Methodology for measuring in vitro/ex vivo cardiac energy metabolism. J Pharmacol Toxicol Methods. 43, 141-152 (2000).
  10. Neely, J. R., Liebermeister, H., Battersby, E. J., Morgan, H. E. Effect of pressure development on oxygen consumption by isolated rat heart. Am J Physiol. 212, 804-814 (1967).
  11. Taegtmeyer, H., Hems, R., Krebs, H. A. Utilization of energy-providing substrates in the isolated working rat heart. Biochem J. 186, 701-711 (1980).
  12. Liao, R., Podesser, B. K., Lim, C. C. The continuing evolution of the Langendorff and ejecting murine heart: new advances in cardiac phenotyping. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 303, H156-H167 (2012).
  13. Cingolani, O. H., Kass, D. A. Pressure-volume relation analysis of mouse ventricular function. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 301, H2198-H2206 (2011).
  14. Pacher, P., Nagayama, T., Mukhopadhyay, P., Batkai, S., Kass, D. A. Measurement of cardiac function using pressure-volume conductance catheter technique in mice and rats. Nat Protoc. 3, 1422-1434 (2008).
  15. Abraham, D., Mao, L. Cardiac Pressure-Volume Loop Analysis Using Conductance Catheters in Mice. J Vis Exp. , (2015).
  16. Harmancey, R., et al. Insulin resistance improves metabolic and contractile efficiency in stressed rat heart. FASEB J. 26, 3118-3126 (2012).
  17. Harmancey, R., Vasquez, H. G., Guthrie, P. H., Taegtmeyer, H. Decreased long-chain fatty acid oxidation impairs postischemic recovery of the insulin-resistant rat heart. FASEB J. 27, 3966-3978 (2013).
  18. Goodwin, G. W., Taylor, C. S., Taegtmeyer, H. Regulation of energy metabolism of the heart during acute increase in heart work. J Biol Chem. 273, 29530-29539 (1998).
  19. Lopaschuk, G. D., Ussher, J. R., Folmes, C. D., Jaswal, J. S., Stanley, W. C. Myocardial fatty acid metabolism in health and disease. Physiol Rev. 90, 207-258 (2010).
  20. Neely, J. R., Denton, R. M., England, P. J., Randle, P. J. The effects of increased heart work on the tricarboxylate cycle and its interactions with glycolysis in the perfused rat heart. Biochem J. 128, 147-159 (1972).
  21. Katz, J., Dunn, A. Glucose-2-t as a tracer for glucose metabolism. Biochimie. 6, 1-5 (1967).
  22. Gillis, A. M., Kulisz, E., Mathison, H. J. Cardiac electrophysiological variables in blood-perfused and buffer-perfused, isolated, working rabbit heart. Am J Physiol. 271, H784-H789 (1996).
  23. Qiu, Y., Hearse, D. J. Comparison of ischemic vulnerability and responsiveness to cardioplegic protection in crystalloid-perfused versus blood-perfused hearts. J Thorac Cardiovasc Surg. 103, 960-968 (1992).
  24. Cotter, D. G., Schugar, R. C., Crawford, P. A. Ketone body metabolism and cardiovascular disease. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 304, H1060-H1076 (2013).
  25. Huang, Y., Zhou, M., Sun, H., Wang, Y. Branched-chain amino acid metabolism in heart disease: an epiphenomenon or a real culprit?. Cardiovasc Res. 90, 220-223 (2011).
  26. Buse, M. G., Biggers, J. F., Friderici, K. H., Buse, J. F. Oxidation of branched chain amino acids by isolated hearts and diaphragms of the rat. The effect of fatty acids, glucose, and pyruvate respiration. J Biol Chem. 247, 8085-8096 (1972).
  27. Liepinsh, E., et al. The heart is better protected against myocardial infarction in the fed state compared to the fasted state. Metabolism. 63, 127-136 (2014).
  28. Niu, Y. G., Hauton, D., Evans, R. D. Utilization of triacylglycerol-rich lipoproteins by the working rat heart: routes of uptake and metabolic fates. J Physiol. 558, 225-237 (2004).
  29. Goodwin, G. W., Arteaga, J. R., Taegtmeyer, H. Glycogen turnover in the isolated working rat heart. J Biol Chem. 270, 9234-9240 (1995).
  30. Sender, P. M., Garlick, P. J. Synthesis rates of protein in the Langendorff-perfused rat heart in the presence and absence of insulin, and in the working heart. Biochem J. 132, 603-608 (1973).
  31. Hindlycke, M., Jansson, L. Glucose tolerance and pancreatic islet blood flow in rats after intraperitoneal administration of different anesthetic drugs. Ups J Med Sci. 97, 27-35 (1992).
  32. Zuurbier, C. J., Keijzers, P. J., Koeman, A., Van Wezel, H. B., Hollmann, M. W. Anesthesia’s effects on plasma glucose and insulin and cardiac hexokinase at similar hemodynamics and without major surgical stress in fed rats. Anesth Analg. 106, 135-142 (2008).
  33. Oguchi, T., Kashimoto, S., Yamaguchi, T., Nakamura, T., Kumazawa, T. Is pentobarbital appropriate for basal anesthesia in the working rat heart model?. J Pharmacol Toxicol Methods. 29, 37-43 (1993).
  34. Segal, J., Schwalb, H., Shmorak, V., Uretzky, G. Effect of anesthesia on cardiac function and response in the perfused rat heart. J Mol Cell Cardiol. 22, 1317-1324 (1990).
  35. Webster, I., Smith, A., Lochner, A., Huisamen, B. Sanguinarine non- versus re-circulation during isolated heart perfusion–a Jekyll and Hyde effect?. Cardiovasc Drugs Ther. 28, 489-491 (2014).
  36. Belke, D. D., Larsen, T. S., Lopaschuk, G. D., Severson, D. L. Glucose and fatty acid metabolism in the isolated working mouse heart. Am J Physiol. 277, R1210-R1217 (1999).
  37. Iannaccone, P. M., Jacob, H. J. Rats! . Dis Model Mech. 2, 206-210 (2009).
check_url/fr/54497?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Bakrania, B., Granger, J. P., Harmancey, R. Methods for the Determination of Rates of Glucose and Fatty Acid Oxidation in the Isolated Working Rat Heart. J. Vis. Exp. (115), e54497, doi:10.3791/54497 (2016).

View Video