Subretinal injections are the most common technique for delivering large therapeutic agents such as proteins and viral vectors to photoreceptors and the retinal pigment epithelium. An alternative method in mice that successfully targets the subretinal space with minimal collateral damage and fast recovery times is described here.
Subretinal injektioner med succes er blevet brugt i både mennesker og gnavere til at levere terapeutiske interventioner proteiner, virale agenter og celler til interphotoreceptor / subretinal kabine, som er direkte udsættelse for fotoreceptorer og retinale pigment epitel (RPE). Subretinal injektioner af plasminogen samt seneste prækliniske og kliniske forsøg har vist sikkerhed og / eller effekt levere virale vektorer og stamceller til personer med fremskreden retinal sygdom. Musemodeller for retinal sygdom, især arvelig retinal dystrofier, er afgørende for at teste disse behandlinger. Den mest almindelige injektionsprocedure hos gnavere er at bruge små transcorneal eller transcleral indsnit med en forreste tilgang til nethinden. Med denne fremgangsmåde, kanylen trænger den neurosensoriske nethinde forstyrre underliggende RPE og indsættelse kan nemt nick linsen, der forårsager linseuklarhed og nedskrivninger på ikke-invasiv imaging. Adgang til subretinarummet via en transcleral, posterior tilgang undgår disse problemer: nålen krydser sclera ca. 0,5 mm fra den optiske nerve, uden retinal penetration og undgår at forstyrre glaslegemet. Collateral skaden er begrænset til, at forbundet med kontaktpunktet sklerotomi og virkningerne af en forbigående, serøs nethindeløsning. Enkeltheden af metoden minimerer okulær skade, sikrer hurtig retinal refiksation og nyttiggørelse, og har en lav dumpeprocent. Den minimale skader på nethinden og RPE muliggør klar vurdering af effekten og direkte effekter af de terapeutiske midler selv. Dette håndskrift beskriver en hidtil ukendt subretinal injektion teknik, der kan anvendes til at målrette virale vektorer, farmakologiske midler, stamceller eller induceret pluripotente stamceller (IPS) celler til subretinarummet i mus med høj effektivitet, minimal skade, og hurtig genopretning.
Subretinal injektioner er det primære middel til at levere cellulære og virale agenter til nethinder af mus til at undersøge deres virkninger på fotoreceptorer og underliggende RPE 1,2. De fleste subretinal injektion protokoller hos mus bruger en transcorneal eller et transcleral injektionsstedet anterior til ækvator (figur 1). Denne fremgangsmåde kan resultere i iboende indirekte skader, som omfatter huldannelse og resulterende uklarhed af linsen, afbrydelse af integriteten af glaslegemet, penetration af neurosensoriske nethinde og iris, retinal blødning, betydelige retinaløsninger og varig subretinal ødem 3-9. Eksperimentelle manipulationer skal overvinde disse effekter for at vurdere effekten af terapeutiske interventioner 3,7,10,11. Denne undersøgelse giver en detaljeret beskrivelse og validering af en posterior transcleral injektion metode, der undgår disse komplikationer, minimerer traume og har en høj succesrate for at målrette subretinal plads.
Injektioner målrettet mod subretinarummet i mus er ofte meget vanskeligt at udføre, og de fleste forskere støder på en høj frekvens af mislykkede forsøg, hvor vektoren, som leveres til en forkert placering, eller der er betydelig beskadigelse af nethinden, for eksempel i en fuldstændig nethindeløsning 6. Antallet af øjne er udelukket fra analysen på grund af injektion komplikationer typisk ikke rapporteret i muse studier, men i vores egne erfaringer og i samarbejde med andre forskere, kan antallet af mislykkede injektioner være så høj som 50% og varierer afhængig af erfaring og kapaciteter af investigator, der udfører injektioner. Succesen af injektionen typisk vurderes ved direkte fundus billedbehandling og / eller optisk kohærens tomografi (OCT) 7,9. En let mestret metode med høj succesrate for subretinal injektioner i mus kan fremskynde eksperimenter og reducere omkostningerne ved prækliniske studier af treatments for retinale sygdomme, der er vigtige årsager til blindhed i USA.
Den bageste, transcleral beskrevet her subretinal injektionsteknik er en tilpasning fra kliniske og prækliniske protokoller 9,12. De invasive diagnostiske vurderinger foretaget i injicerede mus demonstrerer mild og meget lokal skader og mangler yderligere sikkerhed linse, retinal og RPE skade. Desuden vil der med relativt lidt praksis, kan en eksperimentator opnå disse resultater med en høj succesrate (80 – 90% eller bedre) og dermed reducere omkostningerne i forbindelse med sådanne undersøgelser. Denne procedure kan anvendes til at levere cellulære, virale, eller farmakologiske terapeutiske interventioner til fotoreceptorer og / eller RPE i prækliniske undersøgelser og til nemt vurdere eksperimentelle interventioner.
Subretinal injektioner er den foretrukne metode til levering af virale vektorer og stamcelle-afledt terapi for at manipulere fotoreceptorer og RPE i både grundforskning og klinisk behandling. Hos patienter, der subretinal injektioner typisk sker med en forreste sklerotomi ved pars plana, en bageste kernevitrektomi og indtrængning af nethinden af nålen med direkte visualisering. Som med de fleste vitrektomi procedurer, er det almindeligt for kataraktdannelse at forekomme tidligt medmindre øjet er allerede pseud…
The authors have nothing to disclose.
We gratefully acknowledge support by the Harold and Pauline Price Chair in Ophthalmology and the Jules Stein Eye Institute to MBG, the NEI Core grant (EY00331-43) to SN. Research was supported in part by a generous gift from the Sakaria family to SN and MGB, and from an unrestricted grant from the Research to Prevent Blindness to the Department of Ophthalmology. We thank Charlotte Yiyi Wang at Berkeley School of Optometry for obtaining initial OCT images of subretinal injections.
Hamilton Model 62 RN SYR | Hamilton | 87942 | Syringe x 1 |
Hamilton Needle 33G, 1.0", 20 DEG, point 3 (304 stainless steel) | Hamilton | 7803-05 | Needles x 6 |
Vannas Curved Scissors | Ted Pella, INC. | 1347 | 5mm Blade |
22.5 Degree Microsurgery Knife | Wilson Ophthalmic Corp. | 91204 | |
Ketaject | Phoenix | NDC 57319-609-02 | Ketamine |
Anased | Lloyd Laboratories | NDC 61311-482-10 | Xylazine |
Fluorescein 10% AK-Fluor | Akorn | NDC 17478-253-10 | 100mg/ml |
0.9% Saline USP | Hospira | NDC 0409-4888-50 | 0.9% NaCl |
Antibiotic Ointment | Akorn | NDC 17478-235-35 | Ophthalmic |
Water Circulating Pump | Gaymar | TP-500 T/Pump | P/N 07999-000 |
sd-OCT | Bioptigen | R-Series | Commercial |
Fundus Camera | Phoenix Research Laboratories | MICRON III | |
Tweezers Type 3 | Ted Pella, INC. | 5385-3SU | |
2.5% Phenylephrine | Paragon BioTeck | NDC 42702-102-15 | Ophthalmic |
IMARIS8 | Bitplane | Version 8.1.2 | |
ImageJ | NIH | V1.8.0_77 | |
Hypromellose 2.5% | Goniovisc | AX0401 | Methylcellulose |
Eye Drops (Rinse) | Bausch & Lomb | Saline Solution | |
Microscope | Zeiss | Stemi 2000 | Microscope |
Light source | Fostec | P/N 20520 | Light source |