Summary

Electroforese Capilar Separação de Anticorpo Monoclonal isoformas utilizando um capilar de ponto morto

Published: January 16, 2017
doi:

Summary

Here, we present a comprehensive capillary zone electrophoresis protocol for the assessment of intrinsic physicochemical heterogeneity of monoclonal antibodies as a quality attribute.

Abstract

Biotherapeutic proteins, such as monoclonal antibodies (mAbs), are feasible alternatives for the treatment of chronic-degenerative diseases. The biological activity of these proteins depends on their physicochemical properties. The use of high-performance techniques like chromatography and capillary electrophoresis has been described for the analysis of physicochemical heterogeneity of mAbs. Nowadays, capillary zone electrophoresis (CZE) technique constitutes one of the most resolutive and sensitive assays for the analysis of biomolecules. Besides, the electro-driven separation in CZE is governed by extensive properties of matter and offers the advantage of analyzing proteins close to their native state. However, the successful implementation of this technique for routine analysis depends on the skills of the analyst at the critical steps during sample and system preparation. The purpose of this tutorial is to detail the steps to succeed in the CZE analysis of mAbs. Further, this protocol can be used for the development and improvement of skills of the personnel involved in protein analytical chemistry laboratories.

Introduction

Os anticorpos monoclonais (mAbs) são proteínas bioterapêuticos com crescente interesse devido à sua capacidade de agir contra várias doenças crónicas e degenerativas 1. Como outras biomoléculas, os mAbs são propensos a sofrer várias alterações físico-químicos em todas as fases do seu ciclo de vida (ou seja, a partir de biossíntese para o produto final). Tais modificações incluem, mas não estão limitados a: desamidação, glicosilação, oxidação, ciclização, isomerização, a agregação e a clivagem proteolítica 2. Assim, técnicas analíticas capazes de resolver isoformas intrínsecas são necessários para monitorar mAbs heterogeneidade e estabilidade a fim de estabelecer especificações de qualidade.

A electroforese capilar (CE) é uma tecnologia de separação de alta performance realizada outinside de um tubo de sílica fundida estreita (gama uM) cheio com um electrólito de fundo (BGE). Após a aplicação de um campo eléctrico (até 30.000 V), molécula carregadas migrar para o eletrodo com carga oposta (ie, separação orientada por electro). O uso de altas tensões no CE permite análises rápidas e uma maior eficiência, que são superiores a electroforese em gel clássica. Eletroforese capilar de zona (CZE) é uma técnica baseada CE rotineiramente utilizado na indústria biofarmacêutica para a avaliação da qualidade do produto 3-9. Ao contrário de outros modos de Ce (por exemplo, electroforese capilar em gel, isoeléctrica capilar de focagem) ou métodos baseados em cromatografia, CZE pode ser realizado sem a utilização de agentes desnaturantes ou interfaces de fase sólida, permitindo a análise da heterogeneidade inerente de mAbs próximo ao seu estado nativo 10 . CZE separação de isoformas de mAb ocorre dentro de um capilar de sílica fundida coberta com um polímero hidrofílico (capilar neutro) e baseia-se na sua mobilidade electroforética diferente, que é regida por carga, massa, tamanho e forma (ou volume hidrodinâmico) 11. porções de mAb são detectados quandoeles são mobilizadas e passe através da janela de detecção, que é detectada por um detector de ultravioleta (UV) a absorvância a 214 nm de 4.

O sucesso da implementação desta técnica analítica dependerá a devida atenção aos detalhes antes e durante o experimento. Agindo de outra forma vai aumentar o custo eo tempo para realizar a análise, levando a falha constante e frustração.

Aqui, apresentamos um guia passo-a-passo para realizar uma análise bem-sucedida de mAb heterogeneidade por CZE através da explicação detalhada sobre a preparação de soluções e amostras, a preparação do sistema CE, os métodos instrumento criado, a aquisição de dados e o processamento. Para o propósito deste tutorial, um factor alfa de necrose anti-tumoral totalmente humano recombinante (anti-TNF) é o mAb usado como modelo de proteína; no entanto, este protocolo pode ser facilmente customizado para a análise de outras proteínas considerando breves modificações. UMAdditionally, várias recomendações para mitigar possíveis problemas são propostos. O leitor é encorajado a seguir rigorosamente o protocolo proposto, como a probabilidade de sucesso irá aumentar.

Protocol

1. Preparação de Soluções Preparar a solução BGE. Preparação de 100 ml de uma solução composta de 0,05% (m / v) de celulose hidroxi propil metil celulose (HPMC), 200 mM de ε amino-n-capróico ácido (EACA) e acetato de lítio 30 mM. NOTA: Como HPMC é um polímero viscoelástico, despeje o pó para um copo de vidro, adicionar 80 ml de água e, finalmente, adicionar a barra de agitação. Continue a adicionar os restantes reagentes como normalmente. Use óculos de se…

Representative Results

A Figura 2 mostra o perfil de corrente eléctrica típica de um EACA 200 mM, 30 mM de acetato de lítio, pH 4,8 com BGE amostra anti-TNFa mAb diluído com tampão Tris (50 mM, pH 8,0). Como pode ser observado, a corrente é estável durante toda a análise e pode oscilar entre os valores de 30 a 35 uA. A Figura 3 mostra o electroferograma CZE de uma amostra em branco onde o pico detectado corresponde ao padrão interno de histamina. Espera-se para a hist…

Discussion

Neste tutorial, destacamos a importância de práticas adequadas na condução CZE análises de mAbs, a fim de aumentar a probabilidade de sucesso. No entanto, quando CZE é usado de forma rotineira, questões surgem inevitavelmente 12.

Para melhores resultados, é importante seguir as notas que foram incluídos ao longo do protocolo, como eles vão ajudar o analista a superar e resolver problemas difíceis passos. Uma consideração importante para obter uma melhor resolução a …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors thank Wiley for the granted permission to use the concepts of the following publication for this tutorial. Carlos E. Espinosa-de la Garza, Francisco C. Perdomo-Abúndez, Jesús Padilla-Calderón, Jaime M. Uribe-Wiechers, Néstor O. Pérez, Luis F. Flores-Ortiz, Emilio Medina-Rivero: Analysis of recombinant monoclonal antibodies by capillary zone electrophoresis. Electrophoresis. 2013. 34. 1133-1140. Copyright Wiley-VCH Verlag GmbH & Co. KGaA. This work was supported by CONACyT, Mexico, grant 230551.

Materials

Glacial acetic acid Tecsiquim AT0035-7
ACS grade hydrochloric acid J.T. Baker 9535-05
Histamine dihydrochloride Fluka 53300
(Hydroxypropyl) methyl cellulose  Fluka 09963
Lithium acetate Sigma-Aldrich 517992
6-Aminocaproic acid Sigma-Aldrich A2504
eCAP Tris Buffer, 50.0 mM,  pH 8 Beckman Coulter 477427
PA 800 Plus Pharmaceutical Analysis System Beckman Coulter A66528
eCAP Neutral capillary  Beckman Coulter 477441
Vial, Micro, 200 µl Beckman Coulter 144709
Universal Vial Caps Beckman Coulter A62250
Universal Vials Beckman Coulter A62251
Cable, Optics, UV/Vis Beckman Coulter 144093
UV/Vis Detector Module Beckman Coulter 144733
Cartridge Assembly Kit, Blank Beckman Coulter 144738

References

  1. Bruno, V., Battaglia, G., Nicoletti, F. The advent of monoclonal antibodies in the treatment of chronic autoimmune diseases. Neurol. Sci. 31, 283-288 (2011).
  2. Liu, H., Gaza-Bulseco, G., Faldu, D., Chumsae, C., Sun, J. Heterogeneity of monoclonal antibodies. J. Pharm. Sci. 97 (7), 2426-2447 (2008).
  3. Creamer, J. S., Oborny, N. J., Lunte, S. M. Recent advances in the analysis of therapeutic proteins by capillary and microchip electrophoresis. Anal. Methods. 6 (15), 5427-5449 (2014).
  4. Fekete, S., Guillarme, D., Sandra, P., Sandra, K. Chromatographic, Electrophoretic, and Mass Spectrometric Methods for the Analytical Characterization of Protein Biopharmaceuticals. Anal. Chem. 88 (1), 480-507 (2016).
  5. He, Y., et al. Analysis of identity, charge variants, and disulfide isomers of monoclonal antibodies with capillary zone electrophoresis in an uncoated capillary column. Anal. Chem. 82 (8), 3222-3230 (2010).
  6. He, Y., Isele, C., Hu, W., Ruesch, M. Rapid analysis of charge variants of monoclonal antibodies with capillary zone electrophoresis in dynamically coated fused-silica capillary. J. Sep. Sci. 34 (5), 548-555 (2011).
  7. Zhao, S. S., Chen, D. D. Y. Applications of capillary electrophoresis in characterizing recombinant protein therapeutics. Electrophoresis. 35 (1), 96-108 (2014).
  8. Štěpánová, S., Kašička, V. Determination of impurities and counterions of pharmaceuticals by capillary electromigration methods. J. Sep. Sci. 37 (15), 2039-2055 (2014).
  9. Štěpánová, S., Kašička, V. Recent applications of capillary electromigration methods to separation and analysis of proteins. Anal. Chim. Acta. 933, 23-42 (2016).
  10. Espinosa-de la Garza, C. E., et al. Analysis of recombinant monoclonal antibodies by capillary zone electrophoresis. Electrophoresis. 34 (8), 1133-1140 (2013).
  11. Staub, A., Guillarme, D., Schappler, J., Veuthey, J. L., Rudaz, S. Intact protein analysis in the biopharmaceutical field. J. Pharm. Biomed. Anal. 55 (4), 810-822 (2011).
  12. Altria, K. D., Altria, K. D. Troubleshooting. Methods in Molecular Biology, Vol 52. Capillary Electrophoresis Guidebook: Principles, Operation and Applications. , (1996).
  13. Ma, S., Nashabeh, W. Analysis of protein therapeutics by capillary electrophoresis. Chromatographia. 53 (5), 75-89 (2001).
  14. Jaccoulet, E., Smadja, C., Prognon, P., Taverna, M. Capillary electrophoresis for rapid identification of monoclonal antibodies for routine application in hospital. Electrophoresis. 36 (17), 2050-2056 (2015).
check_url/fr/55082?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Espinosa-de la Garza, C. E., Salazar-Flores, R. D., Pérez, N. O., Flores-Ortiz, L. F., Medina-Rivero, E. Capillary Electrophoresis Separation of Monoclonal Antibody Isoforms Using a Neutral Capillary. J. Vis. Exp. (119), e55082, doi:10.3791/55082 (2017).

View Video