Summary

Omfattende DNA-metyleringsanalyse ved bruk av en metyl-CpG-bindende domene-fangstbasert metode i kroniske lymfocytiske leukemi-pasienter

Published: June 16, 2017
doi:

Summary

Dette arbeidet beskriver en optimalisert metyl-CpG-bindingsdomene (MBD) sekvenseringsprotokoll og en beregningsrørledning for å identifisere differensielt metylerte CpG-rike regioner hos pasienter med kronisk lymfocytisk leukemi (CLL).

Abstract

Rollen av lange, ikke-kodende RNAer (lncRNAs) i kreft, kommer frem i forkant på grunn av økende interesse for å forstå deres mekaniske funksjoner under kreftutvikling og progresjon. Til tross for dette har den globale epigenetiske reguleringen av lncRNA og repetitive sekvenser i kreft ikke blitt godt undersøkt, særlig i kronisk lymfocytisk leukemi (CLL). Denne studien fokuserer på en unik tilnærming: immunpresipitasjonsbasert fangst av dobbeltstrengede, metylerte DNA-fragmenter ved bruk av metyl-bindende domene (MBD) proteiner, etterfulgt av neste generasjons sekvensering (MBD-seq). CLL pasientprøver som tilhørte to prognostiske undergrupper (5 IGVH-muterte prøver + 5 IGVH ikke-mutaterte prøver) ble brukt i denne studien. Analyse avslørte 5.800 hypermetylerte og 12.570 hypometylerte CLL-spesifikke differensielt metylerte gener (cllDMGs) sammenlignet med normale friske kontroller. Viktigst, disse resultatene identifiserte flere CLL-spesifikke, differensielt metylerte lncRNAer, rePetitive elementer og proteinkoding gener med potensiell prognostisk verdi. Dette arbeidet skisserer en detaljert protokoll for en MBD-seq og bioinformatikk pipeline utviklet for omfattende analyse av globale metyleringsprofiler i svært CpG-rik regioner ved bruk av CLL pasientprøver. Endelig ble et proteinkoding-gen og et lncRNA validert ved bruk av pyrosequensering, som er en svært kvantitativ metode for å analysere CpG-metyleringsnivåer for ytterligere å bekrefte funnene fra MBD-seq-protokollen.

Introduction

Bruken av neste generasjons sekvenseringsteknikker for å analysere globale DNA-metyleringsprofiler har blitt stadig mer populært de siste årene. Genome-brede metyleringsanalyser, inkludert mikroarray- og ikke-mikroarray-baserte metoder, ble utviklet basert på følgende: bisulfittomdannelsen av genomisk DNA, metyleringsfølsomme restriksjonsenzymfordøyninger og immunutfelling av metylert DNA ved bruk av metyl-CpG-spesifikke antistoffer .

Aberrant DNA-metylering er et kjennetegn ved leukemi og lymfomer, inkludert kronisk lymfocytisk leukemi (CLL). Tidligere har flere grupper inkludert vår karakterisert DNA-metyleringsprofilene av forskjellige CLL-prognostiske undergrupper og normale, sunne B-cellekontroller ved bruk av bisulfitt-omdannelsen av genomisk DNA, etterfulgt av mikromarbaserte metoder eller helgenomsekvenser 1 , 2 , 3 , <Sup class = "xref"> 4. Bisulfittomdannelsen av genomisk DNA fører til deaminering av umodifiserte cytosiner til uracil, hvilket etterlater de modifiserte metylerte cytosiner i genomet. Når de er omdannet, kan metyleringsstatusen til DNA'et bestemmes ved PCR-amplifisering og sekvensering under anvendelse av forskjellige kvantitative eller kvalitative metoder, som for eksempel mikromarraybasert eller helgenoms-bisulfitt-sekvensering (WGBS). Selv om bisulfitt-konverteringsbaserte metoder har mange fordeler og er mye brukt i forskjellige krefttyper for å analysere DNA-metyleringsnivåer, er det noen ulemper forbundet med denne teknikken. WGBS-sekvensering tillater enkelbasbasert oppløsning med lavere mengder DNA og er det beste egnet alternativet for å analysere et stort antall prøver. Imidlertid unnlater denne metoden å skille mellom modifikasjonene mellom 5mC og 5hmC nivåene i genomene 5 , 6 . I tillegg tilbyr ikke mikroarray-baserte metoder komplett cOverage av genomet.

I en nylig studie fra laboratoriet 7 ble immunoprecipitasjonsbaserte metoder, i stedet for bisulfittkonvertering, brukt til å identifisere svært CpG-rike, differensielt metylerte regioner i global skala hos CLL-pasienter og normale sunne kontroller. Inmethyl-CpG-bindende domene (MBD) neste generasjons sekvensering (MBD-seq) avhenger anrikningen av dobbeltstrenget fragmentert DNA av graden av CpG-metylering. Denne metoden kan overvinne ulempene ved bisulfitt-omdannelsesmetoden og kan også gi genomfattende dekning av CpG-metylering på en upartisk og PCR-uavhengig måte. I motsetning til bisulfitt-konverteringsbaserte mikroarray-metoder kan MBD-seq også brukes til å analysere metyleringsstatusen for repeterende elementer, for eksempel lange interspersed-kjernefysiske elementer (LINE), korte intersperserte kjernefysiske elementer (SINEs), lange terminale repetisjoner (LTRS), Etc. Imidlertid, sammenlignet med bisulfittomdannelsesmetoder,En MBD-seq-protokoll krever en relativt stor mengde inngangsd DNA. Også kvaliteten på sekvenseringen leser og dataene avhenger av spesifisitet, affinitet og kvalitet av antistoffene som anvendes.

Den nåværende studien forklarer en detaljert MBD-seq-protokoll for å berikke metylert DNA for neste generasjons sekvensering. Den bruker et kommersielt metylert DNA-bindingsberikningssett (oppført i Materialetabellen ), samt en beregningsrørledning for å visualisere og tolke metylerings-sekvenseringsdata for å identifisere CLL-spesifikke hyper- og hypomethylerte regioner sammenlignet med normale sunne kontroller. I utgangspunktet benytter denne metoden muligheten til MBD av humant MBD2-proteininteraksjon med metylerte CpGer for å ekstrahere DNA beriget med metylerte CpGer, og dette følges av høy gjennomstrømningssekvensering av metylert DNA.

Protocol

Den etiske godkjenningen for å samle CLL-prøvene er fra 2007-05-21, med følgende registreringsnummer: EPN Gbg dnr 239/07. Alle CLL-pasienter ble diagnostisert i henhold til nylig revidert kriterium 8 , og prøvene ble samlet på diagnosetidspunktet. Pasientene i studien ble inkludert fra forskjellige hematologiavdelinger i den vestlige delen av Sverige etter skriftlig samtykke. Bare prøver av CLL perifert blodmononukleær celle (PBMC) med en tumorprosent av leukemic celler ≥70% ble valgt i …

Representative Results

MBD-seq ble nylig utført på CLL-pasienter og matchede, normale, sunne kontroller for å identifisere CLL-spesifikke differensielt hyper- og hypometylerte gener 7 . Den eksperimentelle og bioinformatiske rørledningen som brukes for å analysere dataene som er generert fra CLL og normale sunne prøver, er vist i figur 1A og 1B . Disse analysene identifiserte flere CLL-spesifikke differensielt metylerte regioner (cllD…

Discussion

MBD-seq er en kostnadseffektiv, immunprecipitasjonsbasert teknikk som kan brukes til å studere metyleringsmønstre med fullstendig gjennomsiktig dekning. Både MeDIP-seq (metylert DNA-immunutfelling etterfulgt av sekvensering) og MBD-seq resulterer i anrikning av CpG-rik metylert DNA. Imidlertid viser MBD-seq mer affinitet mot binding til høyt CpG-rik-regioner når sammenlignet med MeDIP-seq 19 . Ved å bruke et metylbindende anrikningssett kan man fraksjonere DNAet til høy CpG- og lav-CpG-rik…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne studien ble støttet av Svenske Forskningsrådet, Svenske Kreftforeningen, Knut og Alice Wallenberg Foundation (KAW), og FoU VästraGötalandsregionen.

Materials

Dneasy Blood and tissue kit Qaigen 69504
Lymphoprep solution A X I S-S H I E L D 1114544
Nano drop 2000 Thermo Fischersceintific
TE buffer PH 8 Sigma aldrich 93283
Bioruptor standard sonication device Diagenode UCD-200
TPX bioruptor tubes 1.5ml Diagenode C30010010-300
3 M Sodium acetate Diagenode C03030002
E-gel iBase safe imager combo kit Thermo Fischersceintific G6465EU
E-gel 2% Agarose gels Thermo Fischersceintific G441002
Methylminer Methylated DNA enrichment kit Thermo Fischersceintific ME10025
Labquake Tube Shaker/Rotators Thermo Fischersceintific 415110
Dynal MPC-S Thermo Fischersceintific A13346
Vortex mixer VWR 12620-848
Absolute Ethanol Any company
70% Ethanool Any company
DNAse free water Milli Q
DNA precipitant (3M sodium acetate) Diagenode C03030002
Safe seal 1.5ml eppendorf tubes Eppendorf 4036-3204
Qubit dsDNA HS Assay Kit Thermo Fischersceintific Q32851
Qubit 0.5ml tubes Thermo Fischersceintific Q32856
Qubit Thermo Fischersceintific Q32866
Illumina Hiseq2000 Platform Illumina
Water  Bath Grant
Heat block grant
Tube rotater Labquake

References

  1. Kanduri, M., et al. Differential genome-wide array-based methylation profiles in prognostic subsets of chronic lymphocytic leukemia. Blood. 115 (2), 296-305 (2010).
  2. Cahill, N., et al. 450K-array analysis of chronic lymphocytic leukemia cells reveals global DNA methylation to be relatively stable over time and similar in resting and proliferative compartments. Leukemia. 27 (1), 150-158 (2013).
  3. Kanduri, M., et al. Distinct transcriptional control in major immunogenetic subsets of chronic lymphocytic leukemia exhibiting subset-biased global DNA methylation profiles. Epigenetics. 7 (12), 1435-1442 (2012).
  4. Kulis, M., et al. Epigenomic analysis detects widespread gene-body DNA hypomethylation in chronic lymphocytic leukemia. Nat Genet. 44 (11), 1236-1242 (2012).
  5. Booth, M. J., et al. Quantitative sequencing of 5-methylcytosine and 5-hydroxymethylcytosine at single-base resolution. Science. 336 (6083), 934-937 (2012).
  6. Yu, M., et al. Base-resolution analysis of 5-hydroxymethylcytosine in the mammalian genome. Cell. 149 (6), 1368-1380 (2012).
  7. Subhash, S., Andersson, P. O., Kosalai, S. T., Kanduri, C., Kanduri, M. Global DNA methylation profiling reveals new insights into epigenetically deregulated protein coding and long noncoding RNAs in CLL. Clin Epigenetics. 8, 106 (2016).
  8. Hallek, M., et al. Guidelines for the diagnosis and treatment of chronic lymphocytic leukemia: a report from the International Workshop on Chronic Lymphocytic Leukemia updating the National Cancer Institute-Working Group 1996 guidelines. Blood. 111 (12), 5446-5456 (2008).
  9. De Meyer, T., et al. Quality evaluation of methyl binding domain based kits for enrichment DNA-methylation sequencing. PLoS One. 8 (3), e59068 (2013).
  10. Bolger, A. M., Lohse, M., Usadel, B. Trimmomatic: a flexible trimmer for Illumina sequence data. Bioinformatics. 30 (15), 2114-2120 (2014).
  11. Langmead, B., Trapnell, C., Pop, M., Salzberg, S. L. Ultrafast and memory-efficient alignment of short DNA sequences to the human genome. Genome Biol. 10 (3), R25 (2009).
  12. Zhang, Y., et al. Model-based analysis of ChIP-Seq (MACS). Genome Biol. 9 (9), R137 (2008).
  13. Quinlan, A. R., Hall, I. M. BEDTools: a flexible suite of utilities for comparing genomic features. Bioinformatics. 26 (6), 841-842 (2010).
  14. Subhash, S., Kanduri, C. GeneSCF: a real-time based functional enrichment tool with support for multiple organisms. BMC Bioinformatics. 17 (1), 365 (2016).
  15. Liao, Y., Smyth, G. K., Shi, W. featureCounts: an efficient general purpose program for assigning sequence reads to genomic features. Bioinformatics. 30 (7), 923-930 (2014).
  16. Robinson, M. D., McCarthy, D. J., Smyth, G. K. edgeR: a Bioconductor package for differential expression analysis of digital gene expression data. Bioinformatics. 26 (1), 139-140 (2010).
  17. Martinelli, S., et al. ANGPT2 promoter methylation is strongly associated with gene expression and prognosis in chronic lymphocytic leukemia. Epigenetics. 8 (7), 720-729 (2013).
  18. Kopparapu, P. K., et al. Epigenetic silencing of miR-26A1 in chronic lymphocytic leukemia and mantle cell lymphoma: Impact on EZH2 expression. Epigenetics. 11 (5), 335-343 (2016).
  19. Robinson, M. D., et al. Evaluation of affinity-based genome-wide DNA methylation data: effects of CpG density, amplification bias, and copy number variation. Genome Res. 20 (12), 1719-1729 (2010).
check_url/55773?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Subhash, S., Kanduri, M. Comprehensive DNA Methylation Analysis Using a Methyl-CpG-binding Domain Capture-based Method in Chronic Lymphocytic Leukemia Patients. J. Vis. Exp. (124), e55773, doi:10.3791/55773 (2017).

View Video