Summary

Intravital mikroskopi av monocyt Homing och tumör-relaterade angiogenes i en murin modell av perifer arteriell sjukdom

Published: August 26, 2017
doi:

Summary

Monocyter är viktiga mediatorer av arteriogenesis i samband med perifer arteriell sjukdom. Detta protokoll använder en basalmembranet-liknande matris och intravital mikroskopi, och undersöker monocyt homing och tumör-relaterade angiogenes efter monocyt injektion i lårbensartären ligering murina modellen.

Abstract

Det terapeutiska målet för perifer arteriell sjukdom och ischemisk hjärtsjukdom är att öka blodflödet till ischemiska områden orsakas av hemodynamiska stenos. Kärlkirurgi är ett gångbart alternativ i utvalda fall, men för patienter utan indikationer för kirurgi såsom progression att vila smärta, kritiska lem ischemi eller stora störningar liv eller arbete, finns det några möjligheter för att mildra deras sjukdom. Cellterapi via monocyt-förbättrad genomblödning genom stimulering av säkerheter bildandet är en av några icke-invasiva alternativ.

Vår grupp undersöker arteriogenesis efter monocyt transplantation i möss med bakbenet ischemi modell. Tidigare har vi visat förbättring i bakbenet perfusion med stelkramp-stimulerad syngena monocyt transplantation. Förutom effekterna på säkerheter bildandet, kan tumörtillväxt påverkas av denna terapi också. För att undersöka dessa effekter, använder vi en basalmembranet-liknande matris musmodell genom att injicera den extracellular matrisen av den Engelbreth-Holm-Swarm sarkom i flanken av musen, efter ocklusion av femoralartären.

Efter de konstgjorda tumör studierna, vi använder intravital mikroskopi för att studera i vivo tumör-angiogenes och monocyt homing inom säkerheter artärer. Tidigare studier har beskrivit en Histologisk undersökning av djurmodeller, vilket förutsätter efterföljande analys till obduktion artefakter. Vår strategi visualiserar monocyt homing rättsområden collateralization i realtid sekvenser, är lätt att utföra, och undersöker processen för arteriogenesis och tumör angiogenes i vivo.

Introduction

Hjärt-kärlsjukdomar, inklusive kranskärlssjukdom eller perifer arteriell sjukdom, är de vanligaste orsakerna till dödsfall globalt1. Cellterapi är en lovande metod att behandla hjärt-kärlsjukdom, särskilt för människor som inte kan genomgå kirurgiska ingrepp. I området i närheten finns det flera metoder att använda celler eller deras utsöndras ämnen som ett terapeutiskt verktyg2,3, med det övergripande målet att förbättra perfusionen och upprätthålla funktion av ischemisk och underperfused vävnad. Ett försök att uppnå detta mål är att förbättra arteriogenesis, vilket stärker utvecklingen av säkerheter artärer. Monocyter är en viktig celltyp som är associerad med collateralization. Vår grupp har fokuserat på forska effekterna av monocyter i områden av inflammation4,5, i synnerhet med bakbenet ischemi modell för att inducera ischemi och efterföljande inflammation6. Monocyter hem till områdena av inflammation och orsaka komplexa systemiska reaktioner som leder till utveckling av collateralization7.

Med användning av intravital mikroskopi, kan vi studera beteendet hos dessa celler i vivo och observera homing av injicerade monocyter till områdena av inflammation. De flesta tidigare studier bara beskriva obduktion analyser, som hålla nackdelar inklusive en introduktion av histologiska artefakter och ett stort antal djur som krävs för preparat. Med vårt arbetssätt kan vi undersöka immunologiska processer och säkerheter bildning via live imaging vid flera tidpunkter.

Förutom utvecklingen av säkerheter artärer i ischemiska områden påverka monocyter också tumörens tillväxt. För att undersöka dessa processer, vi injicerar en basalmembranet-liknande matris utvinns ur Engelbreth-Holm-Swarm mus sarkom, en tumör som är rik på extracellulära matrix proteiner8, och analysera hjälp intravital mikroskopi. Denna matris används till provspelning molekyler för antingen endotelceller nätverk bildandet eller mot cancer terapier genom angiogena hämning; i detta fall kommer vi att bedöma tumör angiogena potential av monocyter för cell terapi9,10,11.

Syftet med detta protokoll är att demonstrera ett enkelt och effektivt sätt att studera immunologiska processer orsakas av ischemi i en in-vivo -modell. Vi kan skapa en mer realistisk testmiljö jämfört med histologiska workup av besiktning muskelvävnad.

Protocol

vår studie utfördes med tillåtelse av delstaten Sachsen-Anhalt, Landesverwaltungsamt Halle, enligt 8 § i den tyska lagen för djurskydd. (§ 8, punkt 1 i den tyska lagen för djurt skydd från 18.05.2016 – BGBI. I S. 1206, 1313, § 31 TierSchVersV från 13.08.2013). Obs: 8 till 12 vecka gammal BALB/c hanmöss användes för de här experimenten, och humana monocyter från blodgivare användes för visualisering av monocyter via intravital mikroskopi. 1….

Representative Results

Intravital mikroskopi för undersökning av tumören och säkerheter fartyget tillväxt utlöses av monocyter kan hjälpa till att avslöja nya aspekter i molekylära mekanismer för tumör angiogenes och arteriogenesis. Cellerna måste vara beredd och injiceras noggrant anvisningarna i protokollet. Skillnader kan leda till variationer mellan enda experiment. I monocyter måste injiceras i venösa systemet (figur 1) för att upprätthålla systemiska effekter…

Discussion

Den metod som beskrivs här belyser utvecklingen av säkerheter artärer, uppförandet av monocyter i dessa fartyg, och processen för arteriogenesis. Stegen för tillämpningen av detta protokoll är lätt att lära sig och kan användas inom andra områden av vetenskap. Trots dessa fördelar finns det några nackdelar. Exempelvis är mikroskopisk utrustning krävs för att köra teknikerna som beskrivs. Att skaffa utrustning för ett experiment är ohållbar, så det är viktigt att samarbeta med andra institutioner at…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöds av den ELSE-Kröner-Stiftung och den DFG (Deutsche Forschungsgemeinschafts, tyska Research Foundation) SFB 854 (Sonderforschungsbereich, collaborative research center). Speciellt tack till Hans-Holger Gärtner, Audiovisuelles Medienzentrum, Otto-von-Guericke University Magdeburg, Magdeburg, Tyskland, för teknisk support.

Materials

10% fetal calf serum (FCS) Sigma Aldrich, Hamburg, Germany
1% penicillin/streptomycin Sigma Aldrich, Hamburg, Germany
1mL Omnifix -F insuline syringe B. Braun, Melsungen AG, Melsungen, Germany
50 ml syringe  Fresenius Kabi AG, Bad Homburg, Germany Injectomat- syringe 50 ml with canule
6-well-ultra-low-attachement-plates Corning Incorporated, NY, USA
8- 12 week old, male, C57BL/6, BalbC mice  Charles River, Sulzfeld, Germany
Adhesive tape TESA SE, Hamburg, Germany
Acquisition Software Leica, Wetzlar, Deutschland  Leica Application Suite Advanced Fluorescence (LAS AF); Version: 2.7.3.9723
Canules B. Braun, Melsungen AG, Melsungen, Germany 29G, 30G
Cell culture dish Greiner Bio-One GmbH, Frickenhausen, Germany
Cell culture medium Manufactured by our group with single components Medium199, 10% Fetal calf serum, 1% Antibiotic (penicillin/streptomycin)
Centrifuge Beckman Coulter GmbH, Krefeld, Germany Allegra X-15R centrifuge
Depilatory cream Veet, Mannheim, Germany
DiO Invitrogen Eugene, Oregon, USA
Disinfection agent Schülke&Mayr GmbH, Norderstedt, Germany
Disposable scalpel No.10  Feather safety razor Co.Ltd, Osaka, Japan 
EDTA Sigma Aldrich, Hamburg, Germany
Erlenmeyer flask GVB, Herzogenrath, Germany
Ethanol 70% Otto Fischar GmbH und Co KG, Saarbrücken, Germany
Fetal Calf Serum Sigma Aldrich, Hamburg, Germany
Fine Forceps Rubis, Stabio, Switzerland
Flurophor/Rhodamindextran Thermo Fischer Scientific, Waltham, MA USA Katalognummer: D-1819
Gloves Rösner-Matby Meditrade GmbH, Kiefersfelden, Germany
Heating pad  Labotect GmbH, Göttingen, Germany  Hot Plate 062
Human macrophage-colony stimulating factor Sigma Aldrich, Hamburg, Germany SRP3110 
Humane leucocyte filters Blood preservation
Incubator Ewald Innovationstechnik GmbH, Bad Nenndorf, Germany
Isoflurane Baxter Deutschland GmbH, Unterschleißheim, Germany
Ketamine (10%) Ketavet, Pfizer Deutschland GmbH, Berlin , Germany
Leukocyte separation tubes (tubes with filter)  Bio one GmbH, Frickenhausen, Germany
Light microscope  Carl Zeiss SMT GmbH, Oberkochen, Germany Axiovert 40 C
Lymphocyte separation medium LSM1077 GE Healthcare, Pasching, Austria
Matrigel  Becton, Dickinson and Company, Franklyn Lakes, New Jersey, USA
Medium M199  PAA Laboratories GmbH, Pasching, Austria
Microbiological work bench Thermo Electron, LED GmbH, Langenselbold, Germany Hera safe
Microscope slide Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe Art. Nr. 1879
Microscope stand with incubator and heating unit  Leica DMI 6000, Pecon, Germany
Monocyte wash buffer Manufactured by our group with single components PBS, 0,5% BSA, 2mM EDTA
Mouse restrainer Various
Multi-photon microscope  Leica, Wetzlar, Deutschland  Leica SP5 Confocal microscope, Cameleon, Coherent
NaCl (0,9%) Berlin Chemie AG, Berlin, Germany
Neubauer counting chamber  Paul Marienfeld GmbH und Co.KG, Lauda-Königshofen, Germany
Objective Leica, Wetzlar, Deutschland  Leica HC PL APO 10x/0.4 CS
PBS Life technologies GmbH, Darmstadt, Germany ph 7,4 sterile
Penicillin/Streptomycin Sigma Aldrich, Hamburg, Germany
Percoll Manufactured by our group with single components 90 % Percoll, 10% 1,5M NaCl, ρ= 1,064 g cm-3
Percoll solution GE Healthcare, Bio-Science AB, Uppsala, Sweden
Pipettes Eppendorf AG, Hamburg, Germany 10µL/100µL/200µL/1000µL
Pipettes serological Greiner Bio-One GmbH, Frickenhausen, Germany  Cellstar2ml, 5ml, 10ml
Pipetting heads Eppendorf AG, Hamburg, Germany
Pipetus Eppendorf AG, Hamburg, Germany
Polystyrol tube Cellstar, Greiner Bio-One GmbH, Frickenhausen, Germany
Scissor Word Precision Instruments, Inc., Sarasota, USA
Scale Mettler PM4800 Delta Range, Mettler-Toledo GmbH, Gießen, Germany
Suction unit Integra bioscience, Fernwald, Germany Vacusafe comfort
Surgical scissors Word Precision Instruments, Inc., Sarasota, USA
Trypan blue solution 0,4 % Sigma Aldrich, Hamburg, Germany
Tubes with cap Greiner Bio-One GmbH, Frickenhausen, Germany 15ml, 50ml Cellstar
Xylazine (2 %) Ceva Tiergesundheit GmbH, Düsseldorf, Germany

References

  1. Volz, K. S., Miljan, E., Khoo, A., Cooke, J. P. Development of pluripotent stem cells for vascular therapy. Vascular pharmacology. 56 (5-6), 288-296 (2012).
  2. Henry, T. D., et al. The VIVA trial: Vascular endothelial growth factor in Ischemia for Vascular Angiogenesis. Circulation. 107 (10), 1359-1365 (2003).
  3. Wagner, M., et al. Isolation and intravenous injection of murine bone marrow derived monocytes. Journal of visualized experiments JoVE. (94), (2014).
  4. Herold, J., et al. Transplantation of monocytes: a novel strategy for in vivo augmentation of collateral vessel growth. Human gene therapy. 15 (1), 1-12 (2004).
  5. Ito, W. D., Arras, M., Scholz, D., Winkler, B., Htun, P., Schaper, W. Angiogenesis but not collateral growth is associated with ischemia after femoral artery occlusion. The American journal of physiology. 273 (3 Pt 2), H1255-H1265 (1997).
  6. Herold, J., et al. Tetanus toxoid-pulsed monocyte vaccination for augmentation of collateral vessel growth. Journal of the American Heart Association. 3 (2), e000611 (2014).
  7. . Matrigel Matrix Available from: https://www.corning.com/au/en/products/life-sciences/products/surfaces/matrigel-matrix.html (2017)
  8. Eubank, T. D., Galloway, M., Montague, C. M., Waldman, W. J., Marsh, C. B. M-CSF induces vascular endothelial growth factor production and angiogenic activity from human monocytes. Journal of immunology (Baltimore, Md. 1950). 171 (5), 2637-2643 (2003).
  9. Fridman, R., et al. Enhanced tumor growth of both primary and established human and murine tumor cells in athymic mice after coinjection with Matrigel. Journal of the National Cancer Institute. 83 (11), 769-774 (1991).
  10. Woodman, S. E., et al. Caveolin-1 knockout mice show an impaired angiogenic response to exogenous stimuli. The American journal of pathology. 162 (6), 2059-2068 (2003).
  11. Francke, A., Weinert, S., Strasser, R. H., Braun-Dullaeus, R. C., Herold, J. Transplantation of bone marrow derived monocytes: a novel approach for augmentation of arteriogenesis in a murine model of femoral artery ligation. American journal of translational research. 5 (2), 155-169 (2013).
  12. Houthuys, E., Movahedi, K., Baetselier, P., de Van Ginderachter, J. o. A., Brouckaert, P. A method for the isolation and purification of mouse peripheral blood monocytes. J. Immunol. Methods. 359 (1-2), 1-10 (2010).
  13. Berthold, F. Isolation of human monocytes by Ficoll density gradient centrifugation. Blut. 43 (6), 367-371 (1981).
check_url/fr/56290?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Wagner, M., Baer, C., Zuschratter, W., Riek-Burchardt, M., Deffge, C., Weinert, S., Lee, J. C., Braun-Dullaeus, R. C., Herold, J. Intravital Microscopy of Monocyte Homing and Tumor-Related Angiogenesis in a Murine Model of Peripheral Arterial Disease. J. Vis. Exp. (126), e56290, doi:10.3791/56290 (2017).

View Video