Summary

Аутологичная Microfractured и очищенного жировой ткани артроскопической управления остеохондральные повреждения осыпи

Published: January 23, 2018
doi:

Summary

Цель этого исследования заключается в отчет протокол для артроскопическое лечение поражений остеохондральные осыпи, используя microfractured и очищенный стволовых клеток жировой производные.

Abstract

В последние годы восстановительных методов чаще изучал и используется для лечения остеохондральные повреждения осыпи. В частности некоторые исследования сосредоточили свое внимание на мезенхимальные стволовые клетки, полученные из жировой ткани. Жировой производные стволовые клетки (ADSCs) экспонат морфологические характеристики и свойства похожи на другие мезенхимальных клеток и способны дифференцироваться в несколько клеточных линий. Кроме того эти клетки также широко доступны в подкожной клетчатке, составляет 10-30% от нормального веса тела, с концентрацией 5000 клеток в грамм ткани.

В представленной методики на первом этапе заготовки ADSCs от живота и процесс микроперелому и очистки; Далее хирургическая процедура выполняется полностью arthroscopically, с менее рассечения мягких тканей, совместные наглядности и быстрого восстановления по сравнению с стандартными процедурами открытым. Артроскопия характеризуется первый этап, в котором поражения выявлены, изолированных и подготовлен с микроперфорация; Второй шаг, выполненные сухой, включает в себя инъекции жировой ткани на уровне поражения.

Января 2016 года и сентября 2016 четыре больных прошли артроскопическое лечение остеохондральные повреждения осыпи с microfractured и очищенного жировой ткани. Все пациенты сообщили клинического улучшения через шесть месяцев после операции с осложнений не сообщалось. Функциональные результаты по итогам последних являются обнадеживающими и подтвердить, что техника обеспечивает надежный боли и улучшения у пациентов с поражением остеохондральные осыпи.

Introduction

Артроскопия является золотым стандартом для лечения поражений остеохондральные осыпи (OLTs) с целью облегчения боли, восстановление функциональности и улучшение качества жизни, особенно в молодых и активных пациентов.

В настоящее время артроскопической техники могут быть классифицированы по трем направлениям. Восстановительная техника стимулирует клетки, полученные из костного мозга через хирургическая и микроперфорация на уровне поражения. Реконструктивной техники заменяет поражения, с использованием лоскута аутологичной или гетерологичных ostechondral. Регенеративные техника использует способность клеток Multipotent с дифференцировать и репликации для восстановления поврежденной ткани1,2,3,4,5,6 .

В последние годы регенеративные методы были предметом многочисленных исследований in vitro и in vivo для лечения OLTs и особенно мезенхимальные стволовые клетки, полученные из жировой ткани (ADSCs)7,8 , 9. Эти мезенхимальные стволовые клетки проявляют Морфологические и функциональные характеристики, похож на другие Multipotent с клетки, изолированный от других тканей; Они также способны дифференцироваться в несколько различных сотовых линии в пробирке и в естественных условияхи10,11,12,13. Акцент на исследованиях, касающихся эти клетки в основном за счет их локализации, в действительности они представляют собой от 10% до 30% от нормального веса тела с концентрацией 5000 клеток на грамм ткани13,14. С другой стороны является фактором, который ограничивает использование этих клеток связана с их обработки при лабораторных процедур. Lipoaspirate, содержащие агрегаты адипоциты, коллагеновые волокна и нормальной сосудистой компонентов ферментативно обрабатывается с коллагеном A типа I и подвергается гемолиз до культуры. Здесь цель заключается в том, чтобы описать протокол для лечения поражений остеохондральные осыпи, используя microfractured и очищенного жировой ткани.

Protocol

Все процедуры выполняются в исследованиях с участием людей участники были в соответствии с этических стандартов, институциональным и/или национального исследовательского комитета и с 1964 года Хельсинкская декларация и его более поздних поправок или сопоставимые этических стандарты.<…

Representative Results

Января 2016 года и сентября 2016 четыре больных прошли артроскопическое лечение остеохондральные повреждения осыпи с microfractured и очищенного жировой ткани. Все пациенты сообщили клинического улучшения через шесть месяцев после операции. Предварительные клинические резул?…

Discussion

В последние годы доклинических и клинических испытаний сосредоточили свое внимание на эффект ADSCs для лечения различных патологий опорно-двигательного аппарата. Цель этой статьи заключается в том, чтобы описать протокол для лечения поражений остеохондральные осыпи, используя microfractured …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Процедуры выполняются с использованием системы Lipogems.

Materials

PROCESS KIT – PROCESSING KIT FOR FAT TISSUE LIPOGEMS LG PK 60 Lipogems Kit to obtain microfractured and purified ADSCs
HINTERMANN SPREADER INTEGRA 119654 The spreader allow to access most of the talar dome, in particular in case of posterior lesion
CUP CURETTE ARTHREX AR-8655-02 To remove the damaged cartilage and necrotic and sclerotic bone
CHONDRAL PICK 30° TIP / 60° TIP ARTHREX AR-8655-05
AR-8655-06
To perfrom microperforation at the level of the lesion, stimulating bleeding from the subchondral bone
SHAVER ARTHREX AR-7300SR To clean the joint and aspirate water

References

  1. D’Ambrosi, R., Maccario, C., Serra, N., Liuni, F., Usuelli, F. G. Osteochondral Lesions of the Talus and Autologous Matrix-Induced Chondrogenesis: Is Age a Negative Predictor Outcome?. Arthroscopy. 33 (2), 428-435 (2017).
  2. Becher, C., et al. T2-mapping at 3 T after microfracture in the treatment of osteochondral defects of the talus at an average follow-up of 8 years. Knee Surg. SportsTraumatol. Arthrosc. 23 (8), 2406-2412 (2015).
  3. Polat, G., et al. Long-term results of microfracture in the treatment of talus osteochondral lesions. Knee Surg. Sports Traumatol. Arthrosc. 24 (4), 1299-1303 (2016).
  4. van Bergen, C. J., et al. Arthroscopic treatment of osteochondral defects of the talus: outcomes at eight to twenty years of follow-up. J. Bone Joint Surg. Am. 95 (6), 519-525 (2013).
  5. van Eekeren, I. C., et al. Return to sports after arthroscopic debridement and bone marrow stimulation of osteochondral talar defects: a 5- to 24-year follow-up study. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc. 24 (4), 1311-1315 (2016).
  6. D’Ambrosi, R., Maccario, C., Ursino, C., Serra, N., Usuelli, F. G. Combining Microfractures, Autologous Bone Graft, and Autologous Matrix-Induced Chondrogenesis for the Treatment of Juvenile Osteochondral Talar Lesions. Foot Ankle Int. 38 (5), 485-495 (2017).
  7. Usuelli, F. G., D’Ambrosi, R., Maccario, C., Indino, C., Manzi, L., Maffulli, N. Adipose-derived stem cells in orthopaedic pathologies. British Medical Bulletin. , (2017).
  8. Kim, Y. S., et al. Assessment of clinical and MRI outcomes after mesenchymal stem cell implantation in patients with knee osteoarthritis: a prospective study. Osteoarthr Cartilage. 24 (2), 237-245 (2016).
  9. Koh, Y. G., Choi, Y. J., Kwon, S. K., Kim, Y. S., Yeo, J. E. Clinical results and second-look arthroscopic findings after treatment with adipose-derived stem cells for knee osteoarthritis. Knee Surg. Sports Traumatol. Arthrosc. 23 (5), 1308-1316 (2015).
  10. Zuk, P. A., et al. Human adipose tissue is a source of multipotent stem cells. Mol. Biol. Cell. 13 (12), 4279-4295 (2002).
  11. Taléns-Visconti, R., et al. Human mesenchymal stem cells from adipose tissue: Differentiation into hepatic lineage. Toxicol. In Vitro. 21 (2), 324-329 (2007).
  12. Timper, K., et al. Human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells differentiate into insulin, somatostatin, and glucagon expressing cells. Biochem. Biophys. Res. Commun. 341 (4), 1135-1140 (2006).
  13. Tremolada, C., Palmieri, G., Ricordi, C. Adipocyte transplantation and stem cells: plastic surgery meets regenerative medicine. Cell. Transplant. 19 (10), 1217-1223 (2010).
  14. Keramaris, N. C., et al. Endothelial progenitor cells (EPCs) and mesenchymal stem cells (MSCs) in bone healing. Curr. Stem Cell. Res. Ther. 7 (4), 293-301 (2012).
  15. Leigheb, M., et al. Italian translation, cultural adaptation and validation of the American Orthopaedic Foot and Ankle Society’s (AOFAS) ankle-hindfoot scale. Acta Biomed. 87 (1), 38-45 (2016).
  16. Ware, J., Kosinski, M., Keller, S. D. A 12-Item Short-Form Health Survey: construction of scales and preliminary tests of reliability and validity. Med. Care. 34 (3), 220-233 (1996).
  17. Hawker, G. A., Mian, S., Kendzerska, T., French, M. Measures of adult pain: Visual Analog Scale for Pain (VAS Pain), Numeric Rating Scale for Pain (NRS Pain), McGill Pain Questionnaire (MPQ), Short-Form McGill Pain Questionnaire (SF-MPQ), Chronic Pain Grade Scale (CPGS), Short Form-36 Bodily Pain Scale (SF-36 BPS), and Measure of Intermittent and Constant Osteoarthritis Pain (ICOAP). Arthritis Care (Hoboken). 63, S240-S252 (2011).
  18. Bergen, C. J., Gerards, R. M., Opdam, K. T., Terra, M. P., Kerkhoffs, G. M. Diagnosing, planning and evaluating osteochondral ankle defects with imaging modalities. World. J. Orthop. 6 (11), 944-953 (2015).
  19. van Dijk, C. N., Reilingh, M. L., Zengerink, M., van Bergen, C. J. Osteochondral defects in the ankle: why painful?. Knee Surg. Sports Traumatol. Arthrosc. 18 (5), 570-580 (2010).
  20. Madry, H., van Dijk, C. N., Mueller-Gerbl, M. The basic science of the subchondral bone. Knee Surg. Sports Traumatol. Arthrosc. 18 (4), 419-433 (2010).
  21. Mintz, D. N., Tashjian, G. S., Connell, D. A., Deland, J. T., O’Malley, M., Potter, H. G. Osteochondral lesions of the talus: a new magnetic resonance grading system with arthroscopic correlation. Arthroscopy. 19 (4), 353-359 (2003).
  22. Leumann, A., et al. A novel imaging method for osteochondral lesions of the talus–comparison of SPECT-CT with MRI. Am. J. Sports Med. 39 (5), 1095-1101 (2011).
  23. Kim, Y. S., Park, E. H., Kim, Y. C., Koh, Y. G. Clinical outcomes of mesenchymal stem cell injection with arthroscopic treatment in older patients with osteochondral lesions of the talus. Am. J. Sports Med. 41 (5), 1090-1099 (2013).
  24. Kim, Y. S., Lee, H. J., Choi, Y. J., Kim, Y. I., Koh, Y. G. Does an injection of a stromal vascular fraction containing adipose-derived mesenchymal stem cells influence the outcomes of marrow stimulation in osteochondral lesions of the talus? A clinical and magnetic resonance imaging study. Am. J. Sports Med. 42 (10), 2424-2434 (2014).
  25. Kim, Y. S., Koh, Y. G. Injection of Mesenchymal Stem Cells as a Supplementary Strategy of Marrow Stimulation Improves Cartilage Regeneration After Lateral Sliding Calcaneal Osteotomy for Varus Ankle Osteoarthritis: Clinical and Second-Look Arthroscopic Results. Arthroscopy. 32 (5), 878-889 (2016).
  26. Kim, Y. S., Lee, M., Koh, Y. G. Additional mesenchymal stem cell injection improves the outcomes of marrow stimulation combined with supramalleolar osteotomy in varus ankle osteoarthritis: short-term clinical results with second-look arthroscopic evaluation. J. Exp. Orthop. 3 (1), 12 (2016).
  27. Hanke, C. W., Bernstein, G., Bullock, S. Safety of tumescent liposuction in 15,336 patients. National survey results. Dermatol Surg. 21 (5), 459-462 (1995).
  28. Illouz, Y. G. Complications of liposuction. Clin Plast Surg. 33 (1), 129-163 (2006).
  29. Dixit, V. V., Wagh, M. S. Unfavourable outcomes of liposuction and their management. Indian J Plast Surg. 46 (2), 377-392 (2013).
  30. Lehnhardt, M., Homann, H. H., Daigeler, A., Hauser, J., Palka, P., Steinau, H. U. Major and lethal complications of liposuction: review of 72 cases in Germany between 1998 and 2002. Plast Reconstr Surg. 121 (6), 396e-403e (2008).
  31. Usuelli, F. G., de Girolamo, L., Grassi, M., D’Ambrosi, R., Montrasio, U. A., Boga, M. All-Arthroscopic Autologous Matrix-Induced Chondrogenesis for the Treatment of Osteochondral Lesions of the Talus. Arthrosc Tech. 4 (3), e255-e259 (2015).
  32. Simonson, D. C., Roukis, T. S. Safety of ankle arthroscopy for the treatment of anterolateral soft-tissue impingement. Arthroscopy. 30 (2), 256-259 (2014).
  33. Suzangar, M., Rosenfeld, P. Ankle arthroscopy: is preoperative marking of the superficial peroneal nerve important?. J. Foot. Ankle Surg. 51 (2), 179-181 (2012).
  34. Kraeutler, M. J., et al. Current Concepts Review Update: Osteochondral Lesions of the Talus. Foot Ankle Int. 38 (3), 331-342 (2017).
  35. Looze, C. A., et al. Evaluation and Management of Osteochondral Lesions of the Talus. Cartilage. 8 (1), 19-30 (2017).
  36. Dragoo, J. L., et al. Healing full-thickness cartilage defects using adipose-derived stem cells. Tissue Eng. 13 (7), 1615-1621 (2007).
  37. Lee, S. Y., Kim, W., Lim, C., Chung, S. G. Treatment of Lateral Epicondylosis by Using Allogeneic Adipose-Derived Mesenchymal Stem Cells: A Pilot Study. Stem Cells. 33 (10), 2995-3005 (2015).
  38. Feisst, V., Meidinger, S., Locke, M. B. From bench to bedside: use of human adipose-derived stem cells. Stem Cells Cloning. 8, 149-162 (2015).
check_url/fr/56395?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
D’Ambrosi, R., Indino, C., Maccario, C., Manzi, L., Usuelli, F. G. Autologous Microfractured and Purified Adipose Tissue for Arthroscopic Management of Osteochondral Lesions of the Talus. J. Vis. Exp. (131), e56395, doi:10.3791/56395 (2018).

View Video