JoVE Journal > Medicine
Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Résultats
Discussion
Divulgations
Acknowledgements
Materials
References
Traduction automatique
Please note that all translations are automatically generated. Click here for the English version.
Médecine

Otolog Microfractured ve saf yağ dokusu osteokondral lezyon Talus, artroskopik yönetimi için

Published: January 23, 2018
doi:
10.3791/56395
, , , ,
1IRCCS Istituto Ortopedico Galeazzi – C.A.S.C.O. Piede e Caviglia, 2Dipartimento di Scienze Biomediche per la Salute,Università degli Studi di Milano

Summary

Bu çalışmada microfractured ve saf yağ kaynaklı kök hücre kullanarak talus osteokondral lezyon artroskopik tedavi için bir protokol rapor etmektir.

Abstract

Son yıllarda yeniden üretim teknikleri edilmiş giderek okudu ve osteokondral lezyon talus, tedavi etmek için kullanılır. Özellikle, çeşitli çalışmalarda dikkatlerini Yağ dokusundan elde edilen Mezenkimal Kök hücre üzerinde odaklanmıştır. Yağ kaynaklı kök hücreler (ADSCs) Morfolojik özellikleri ve özellikleri diğer Mezenkimal hücrelerin benzer sergi ve birkaç hücresel hattı ayırt edebiliyoruz. Ayrıca, bu hücreler de yaygın olarak normal vücut ağırlığının 10-%30 5000 hücre, doku gram başına bir konsantrasyon ile temsil eden subkutan doku mevcuttur.

Sunulan teknikte ilk adım ADSCs karın ve mikro çatlak ve arıtma süreci hasat içerir; ardından, cerrahi prosedür tamamen arthroscopically, daha az yumuşak doku diseksiyon, daha iyi ortak görselleştirme ve standart açık prosedürler ile karşılaştırıldığında daha hızlı bir iyileşme ile gerçekleştirilir. Artroskopi içinde lezyon tespit, izole ve microperforations ile hazırlanan ilk aşaması ile karakterizedir; İkinci adım, gerçekleştirilen kuru, enjeksiyon lezyon düzeyde yağ dokusunun içerir.

Ocak 2016 ve Eylül 2016 arasında dört hasta osteokondral lezyon microfractured ve saf yağ dokusu ile talus, artroskopik tedavi uygulandı. Tüm hastalar klinik iyileşme bildirilen komplikasyon ile altı ay ameliyat sonrası bildirdi. En son takip fonksiyonel sonuçlarına ümit verici ve tekniği güvenilir ağrı ve talus osteokondral lezyon olan hastalarda iyileştirmeler sağlar onaylayın.

Introduction

Artroskopi altın osteokondral lezyonlari talus (OLTs) tedavisinde ağrı kesici, işlevselliği geri yükleme ve genç ve aktif hastalarda özellikle yaşam kalitesini artırma amacı ile standarttır.

Şu anda, artroskopik teknikleri üç şekilde sınıflandırılabilir. Onarıcı tekniği kemik iliği debridman ve microperforations lezyon düzeyde yoluyla elde hücreleri uyarır. Estetik tekniği bir Otolog veya kapaklı ostechondral greft kullanarak lezyon yerini alır. Rejeneratif tekniği ayırt etmek ve çoğaltmak için multipotent hücreler hasarlı doku1,2,3,4,5,6 yeniden yeteneği olağanüstü başarı .

Son yıllarda yeniden üretim teknikleri çok sayıda vitro ve in vivo çalışmalar OLTs ve yağ dokusu (ADSCs)7,8 ‘ den türetilmiş özellikle Mezenkimal Kök hücre tedavisi için konu oldu , 9. bu Mezenkimal Kök hücre morfolojik ve fonksiyonel özellikleri diğer dokulardan; izole multipotent diğer hücrelere benzer sergi Onlar da birkaç ayırt etmek için yeteneği var ve farklı cep satırları içinde in vitro ve in vivo10,11,12,13. Bu hücreler araştırmalarına odaklanmak çoğunlukla onların yerelleştirme nedeniyle, aslında temsil ettikleri % 10 dan 5000 hücre, doku13,14gram başına bir konsantrasyon ile normal vücut ağırlığının % 30. Öte yandan, bu hücreler kısıtlar bir faktör kullandıklarında daha laboratuvar işlemleri sırasında ilişkili. Toplamları adipositler, kollajen lifleri ve normal vasküler bileşenleri içeren lipoaspirate enzimatik A tip ı ve hemoliz kültür önce tabi kollajen ile işlenir. Burada amaç Protokolü osteokondral lezyon microfractured ve saf yağ dokusu kullanarak talus, tedavisi için tarif etmektir.

Protocol

Çalışmalarda etik standartlarına kurumsal ve/veya Ulusal Araştırma Komitesi ve 1964 Helsinki Bildirisi’ne ve daha sonraki değişiklikler veya karşılaştırılabilir etik ile ilgili insan katılımcılar vardı tüm yordamları gerçekleştirilen standartları. 1. tıbbi geçmişi Klinik muayene ile ayrıntılı bir hasta Tarih başlatın.Not: Bir OLT her zaman ayak bileği istikrarsızlık durumunda tekrarlanan burkulma şişme, sertlik, ağrı ve eklem tıkanıklık ile…

Representative Results

Ocak 2016 ve Eylül 2016 arasında dört hasta osteokondral lezyon microfractured ve saf yağ dokusu ile talus, artroskopik tedavi uygulandı. Tüm hastalar klinik iyileşme altı ay ameliyat sonrası bildirdi. İlk klinik sonuçlar Tablo 1′ de rapor edilir. Herhangi bir komplikasyon bildirildi. Son yıllarda, ayak ve ayak bileği patolojiler tedavisi için ADSCs kullanımı artmıştır. 2013 yılında, Kim <em…

Discussion

Son yıllarda preklinik ve klinik denemeler farklı kas-iskelet patolojiler tedavisinde ADSCs etkisi onların dikkatini odaklanmıştır. Bu makalenin amacı Protokolü osteokondral lezyon artroskopik microperforations birlikte microfractured ve saf yağ dokusu kullanarak talus, tedavisi için tarif etmektir. Protokol komplikasyonların yüksek risk ile birkaç kritik adımları içerir. Şişman hasat sırasında komplikasyon lokal veya sistemik sorunlar ayrılabilir.

En yaygın ameliyat sonr…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Yordamlar Lipogems sistemini kullanarak gerçekleştirilir.

Materials

PROCESS KIT – PROCESSING KIT FOR FAT TISSUE LIPOGEMS LG PK 60 Lipogems Kit to obtain microfractured and purified ADSCs
HINTERMANN SPREADER INTEGRA 119654 The spreader allow to access most of the talar dome, in particular in case of posterior lesion
CUP CURETTE ARTHREX AR-8655-02 To remove the damaged cartilage and necrotic and sclerotic bone
CHONDRAL PICK 30° TIP / 60° TIP ARTHREX AR-8655-05
AR-8655-06		 To perfrom microperforation at the level of the lesion, stimulating bleeding from the subchondral bone
SHAVER ARTHREX AR-7300SR To clean the joint and aspirate water
DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. D’Ambrosi, R., Maccario, C., Serra, N., Liuni, F., Usuelli, F. G. Osteochondral Lesions of the Talus and Autologous Matrix-Induced Chondrogenesis: Is Age a Negative Predictor Outcome?. Arthroscopy. 33 (2), 428-435 (2017).
  2. Becher, C., et al. T2-mapping at 3 T after microfracture in the treatment of osteochondral defects of the talus at an average follow-up of 8 years. Knee Surg. SportsTraumatol. Arthrosc. 23 (8), 2406-2412 (2015).
  3. Polat, G., et al. Long-term results of microfracture in the treatment of talus osteochondral lesions. Knee Surg. Sports Traumatol. Arthrosc. 24 (4), 1299-1303 (2016).
  4. van Bergen, C. J., et al. Arthroscopic treatment of osteochondral defects of the talus: outcomes at eight to twenty years of follow-up. J. Bone Joint Surg. Am. 95 (6), 519-525 (2013).
  5. van Eekeren, I. C., et al. Return to sports after arthroscopic debridement and bone marrow stimulation of osteochondral talar defects: a 5- to 24-year follow-up study. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc. 24 (4), 1311-1315 (2016).
  6. D’Ambrosi, R., Maccario, C., Ursino, C., Serra, N., Usuelli, F. G. Combining Microfractures, Autologous Bone Graft, and Autologous Matrix-Induced Chondrogenesis for the Treatment of Juvenile Osteochondral Talar Lesions. Foot Ankle Int. 38 (5), 485-495 (2017).
  7. Usuelli, F. G., D’Ambrosi, R., Maccario, C., Indino, C., Manzi, L., Maffulli, N. Adipose-derived stem cells in orthopaedic pathologies. British Medical Bulletin. , (2017).
  8. Kim, Y. S., et al. Assessment of clinical and MRI outcomes after mesenchymal stem cell implantation in patients with knee osteoarthritis: a prospective study. Osteoarthr Cartilage. 24 (2), 237-245 (2016).
  9. Koh, Y. G., Choi, Y. J., Kwon, S. K., Kim, Y. S., Yeo, J. E. Clinical results and second-look arthroscopic findings after treatment with adipose-derived stem cells for knee osteoarthritis. Knee Surg. Sports Traumatol. Arthrosc. 23 (5), 1308-1316 (2015).
  10. Zuk, P. A., et al. Human adipose tissue is a source of multipotent stem cells. Mol. Biol. Cell. 13 (12), 4279-4295 (2002).
  11. Taléns-Visconti, R., et al. Human mesenchymal stem cells from adipose tissue: Differentiation into hepatic lineage. Toxicol. In Vitro. 21 (2), 324-329 (2007).
  12. Timper, K., et al. Human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells differentiate into insulin, somatostatin, and glucagon expressing cells. Biochem. Biophys. Res. Commun. 341 (4), 1135-1140 (2006).
  13. Tremolada, C., Palmieri, G., Ricordi, C. Adipocyte transplantation and stem cells: plastic surgery meets regenerative medicine. Cell. Transplant. 19 (10), 1217-1223 (2010).
  14. Keramaris, N. C., et al. Endothelial progenitor cells (EPCs) and mesenchymal stem cells (MSCs) in bone healing. Curr. Stem Cell. Res. Ther. 7 (4), 293-301 (2012).
  15. Leigheb, M., et al. Italian translation, cultural adaptation and validation of the American Orthopaedic Foot and Ankle Society’s (AOFAS) ankle-hindfoot scale. Acta Biomed. 87 (1), 38-45 (2016).
  16. Ware, J., Kosinski, M., Keller, S. D. A 12-Item Short-Form Health Survey: construction of scales and preliminary tests of reliability and validity. Med. Care. 34 (3), 220-233 (1996).
  17. Hawker, G. A., Mian, S., Kendzerska, T., French, M. Measures of adult pain: Visual Analog Scale for Pain (VAS Pain), Numeric Rating Scale for Pain (NRS Pain), McGill Pain Questionnaire (MPQ), Short-Form McGill Pain Questionnaire (SF-MPQ), Chronic Pain Grade Scale (CPGS), Short Form-36 Bodily Pain Scale (SF-36 BPS), and Measure of Intermittent and Constant Osteoarthritis Pain (ICOAP). Arthritis Care (Hoboken). 63, S240-S252 (2011).
  18. Bergen, C. J., Gerards, R. M., Opdam, K. T., Terra, M. P., Kerkhoffs, G. M. Diagnosing, planning and evaluating osteochondral ankle defects with imaging modalities. World. J. Orthop. 6 (11), 944-953 (2015).
  19. van Dijk, C. N., Reilingh, M. L., Zengerink, M., van Bergen, C. J. Osteochondral defects in the ankle: why painful?. Knee Surg. Sports Traumatol. Arthrosc. 18 (5), 570-580 (2010).
  20. Madry, H., van Dijk, C. N., Mueller-Gerbl, M. The basic science of the subchondral bone. Knee Surg. Sports Traumatol. Arthrosc. 18 (4), 419-433 (2010).
  21. Mintz, D. N., Tashjian, G. S., Connell, D. A., Deland, J. T., O’Malley, M., Potter, H. G. Osteochondral lesions of the talus: a new magnetic resonance grading system with arthroscopic correlation. Arthroscopy. 19 (4), 353-359 (2003).
  22. Leumann, A., et al. A novel imaging method for osteochondral lesions of the talus–comparison of SPECT-CT with MRI. Am. J. Sports Med. 39 (5), 1095-1101 (2011).
  23. Kim, Y. S., Park, E. H., Kim, Y. C., Koh, Y. G. Clinical outcomes of mesenchymal stem cell injection with arthroscopic treatment in older patients with osteochondral lesions of the talus. Am. J. Sports Med. 41 (5), 1090-1099 (2013).
  24. Kim, Y. S., Lee, H. J., Choi, Y. J., Kim, Y. I., Koh, Y. G. Does an injection of a stromal vascular fraction containing adipose-derived mesenchymal stem cells influence the outcomes of marrow stimulation in osteochondral lesions of the talus? A clinical and magnetic resonance imaging study. Am. J. Sports Med. 42 (10), 2424-2434 (2014).
  25. Kim, Y. S., Koh, Y. G. Injection of Mesenchymal Stem Cells as a Supplementary Strategy of Marrow Stimulation Improves Cartilage Regeneration After Lateral Sliding Calcaneal Osteotomy for Varus Ankle Osteoarthritis: Clinical and Second-Look Arthroscopic Results. Arthroscopy. 32 (5), 878-889 (2016).
  26. Kim, Y. S., Lee, M., Koh, Y. G. Additional mesenchymal stem cell injection improves the outcomes of marrow stimulation combined with supramalleolar osteotomy in varus ankle osteoarthritis: short-term clinical results with second-look arthroscopic evaluation. J. Exp. Orthop. 3 (1), 12 (2016).
  27. Hanke, C. W., Bernstein, G., Bullock, S. Safety of tumescent liposuction in 15,336 patients. National survey results. Dermatol Surg. 21 (5), 459-462 (1995).
  28. Illouz, Y. G. Complications of liposuction. Clin Plast Surg. 33 (1), 129-163 (2006).
  29. Dixit, V. V., Wagh, M. S. Unfavourable outcomes of liposuction and their management. Indian J Plast Surg. 46 (2), 377-392 (2013).
  30. Lehnhardt, M., Homann, H. H., Daigeler, A., Hauser, J., Palka, P., Steinau, H. U. Major and lethal complications of liposuction: review of 72 cases in Germany between 1998 and 2002. Plast Reconstr Surg. 121 (6), 396e-403e (2008).
  31. Usuelli, F. G., de Girolamo, L., Grassi, M., D’Ambrosi, R., Montrasio, U. A., Boga, M. All-Arthroscopic Autologous Matrix-Induced Chondrogenesis for the Treatment of Osteochondral Lesions of the Talus. Arthrosc Tech. 4 (3), e255-e259 (2015).
  32. Simonson, D. C., Roukis, T. S. Safety of ankle arthroscopy for the treatment of anterolateral soft-tissue impingement. Arthroscopy. 30 (2), 256-259 (2014).
  33. Suzangar, M., Rosenfeld, P. Ankle arthroscopy: is preoperative marking of the superficial peroneal nerve important?. J. Foot. Ankle Surg. 51 (2), 179-181 (2012).
  34. Kraeutler, M. J., et al. Current Concepts Review Update: Osteochondral Lesions of the Talus. Foot Ankle Int. 38 (3), 331-342 (2017).
  35. Looze, C. A., et al. Evaluation and Management of Osteochondral Lesions of the Talus. Cartilage. 8 (1), 19-30 (2017).
  36. Dragoo, J. L., et al. Healing full-thickness cartilage defects using adipose-derived stem cells. Tissue Eng. 13 (7), 1615-1621 (2007).
  37. Lee, S. Y., Kim, W., Lim, C., Chung, S. G. Treatment of Lateral Epicondylosis by Using Allogeneic Adipose-Derived Mesenchymal Stem Cells: A Pilot Study. Stem Cells. 33 (10), 2995-3005 (2015).
  38. Feisst, V., Meidinger, S., Locke, M. B. From bench to bedside: use of human adipose-derived stem cells. Stem Cells Cloning. 8, 149-162 (2015).

Tags

AutologousMicrofracturedPurifiedArthroscopicOsteochondral LesionsTalusCartilage RegenerationMicroperforationsAdipose-derived Stem CellsLipoaspirateCell SuspensionCluster ReductionSaline SolutionEmulsionOil ResidueBloodAdipose Clusters
check_url/fr/56395?article_type=t

Play Video
PDF
DOI
DOWNLOAD MATERIALS LIST
Citer Cet Article
D’Ambrosi, R., Indino, C., Maccario, C., Manzi, L., Usuelli, F. G. Autologous Microfractured and Purified Adipose Tissue for Arthroscopic Management of Osteochondral Lesions of the Talus. J. Vis. Exp. (131), e56395, doi:10.3791/56395 (2018).
Télécharger la Citation
Réimpressions et Autorisations

View Video

✖

To prove you're not a robot, please enter the text in the image below

CAPTCHA Image
Play CAPTCHA Audio
Refresh Image