Summary

Terapia de testes em um modelo de cultura celular 3D baseado no Spheroid para cabeça e pescoço Carcinoma de células escamosas

Published: April 20, 2018
doi:

Summary

Descrevemos a evolução de um modelo tridimensional, esferoide-baseado em vitro que permite-nos testar o padrão atual de regimes de terapia experimental para cabeça e pescoço carcinoma de células escamosas na linha de celular, com o objetivo de avaliar a terapia susceptibilidade e resistência em células primárias de espécimes humanos no futuro.

Abstract

Opções atuais do tratamento para avançados e recorrente de cabeça e pescoço carcinoma de células escamosas (HNSCC) Coloque a radiação e quimioterapia-radiação abordagens com ou sem cirurgia. Enquanto esquemas de quimioterapia baseados em platina, atualmente, representam o padrão ouro em termos de eficácia e são dadas na grande maioria dos casos, novos regimes de quimioterapia, ou seja, imunoterapia estão surgindo. No entanto, as taxas de resposta e mecanismos de resistência de terapia para qualquer regime de quimioterapia são difíceis de prever e permanecem insuficientemente compreendida. Grandes variações dos mecanismos de resistência a quimioterapia e a radiação são conhecidas até à data. Este estudo descreve o desenvolvimento de um ensaio padronizado, elevado-throughput em vitro para avaliar a resposta da linha celular HNSCC para diferentes regimes de terapia e espero que em células primárias de pacientes individuais como futura ferramenta para tumor personalizado terapia. O ensaio é projetado para ser integrado o algoritmo padrão de controle de qualidade para pacientes com HNSCC em nosso centro de atendimento terciário; no entanto, este será o tema de estudos futuros. Viabilidade técnica parece promissor para as células primárias de biópsias de tumor de pacientes reais. Amostras são então transferidas para o laboratório. Biópsias são mecanicamente separadas seguido por digestão enzimática. Então, as células são cultivadas em frascos de cultura de células de ultra baixa adesão que promovem a formação reprodutível, padronizada e espontânea dos conglomerados de células tridimensionais, em forma de esferoide. Esferoides então estão prontos para ser exposto a protocolos de quimioterapia-radiação e protocolos de imunoterapia conforme necessário. O tamanho de viabilidade e esferoide de final de célula são indicadores de susceptibilidade de terapia e, portanto, poderia elaborar-se em consideração no futuro para avaliar a resposta do provável terapia dos pacientes. Este modelo pode ser uma ferramenta valiosa, custo-eficiente para terapia personalizada para câncer de cabeça e pescoço.

Introduction

Cabeça e pescoço carcinoma de células escamosas (HNSCC) é o sexto mais comum de câncer em todo o mundo com uma incidência crescente de patogénese associada a infecção da mucosa papilomavírus humano (HPV), ao lado de uma maioria de casos causados por álcool e nicotina excessiva consumo de 1,2. Enquanto tumores menores e estágios pre-invasoras são geralmente bem tratáveis com excisão cirúrgica, geralmente combinado com dissecação de linfonodo cervical, o tratamento para estado avançado e recorrente HNSCC permanece desafiador devido à invasão de tumor agressivo com disseminação metastática e resistência à radiação e quimioterapia protocolos3,4,5,6,7,8. Estudos recentes sugerem uma alta variabilidade do fenótipo celular e caracterização sub circulantes e células tumorais disseminadas começou9,10. A crença anterior de um tumor sólido, uniforme massa teve que ser revisto à luz dos recentes estudos nos últimos anos11,12,13,14. As abordagens atuais para caracterização do tumor e identificação das principais mutações poderiam identificar vários genes que parecem estar associadas com resistência à terapia, mas permanecem uma abordagem de custo elevado. Além disso, conhecimento do genótipo não necessariamente permite uma previsão confiável do fenótipo e sua resposta de tratamento.

Tem havido alguns avanços na melhoria da sobrevivência global e livre de doença para doença estado avançado e recorrente. Nicotina – bem como carcinoma de vírus associado, opções atuais do tratamento além de cirurgia juntar radiação agressiva e esquemas de quimioterapia baseados em platina. Há implicações para as taxas de resposta diferente entre carcinoma de HPV-negativas e positiva; no entanto, isso ainda não conduzir a uma mudança em geral orientações de terapia. Resistência à radiação e a quimioterapia é um fenómeno frequente em todas as fases do tumor e existe para baseada em platina quimioterapia bem como quanto à terapia-alvo (Anti-EGFR; receptor de fator de crescimento epidérmico) e recentemente emergentes de inibição posto15. Quimioterapia e radioterapia ineficaz têm um custo elevado de morbidade paciente significativo em termos de disfagia, mucosite, boca seca e risco de diminuição da função renal ou cardíaca, entre outros. A decisão de um conceito geral de terapia para cada paciente individual prevendo antes da resposta terapêutica parece ser o objetivo crucial, impedindo os conceitos de tratamento desnecessário, efeitos colaterais e custos.

Procuramos estabelecer um modelo para testar a susceptibilidade de tratamento individual do paciente para o atual padrão quimioterapia radiação-que poderia ser integrada o algoritmo de tratamento oncológico regular e controle de qualidade de um ponto técnico permanente. A meta distante foi usar o modelo sem usar linhas de células fortemente alterado e envelhecido, como mal representam as células de tumor humano real sem sua variabilidade e a heterogeneidade como sabemos agora, enquanto o estabelecimento do protocolo foi feita em várias linhas de células. Para ser independente apenas a partir de linhagens celulares disponíveis comercialmente, recentemente com sucesso geramos uma linha de celular intermediário chamada “PiCa” de células HNSCC primárias de espécimes de tumor humano com marcadores celulares conservadas na suas superfície e limitadas de passagens 16. linha de celular essa PiCa deve servir como uma preparação para o desenvolvimento do modelo na estrada para depois mais tarde após testes com células cancerosas humanas frescas de biópsias de tumor. Tem sido demonstrado que as células em uma célula tridimensional culturas reagem de forma diferente e mais na vivo-como a administração de drogas de câncer do que aquelas crescendo em monocamadas17,18,19,20 ,21, devido principalmente à conservação de migratórias e propriedades de sub diferenciação de certas células subconjuntos22,23,24. Aqui, descrevemos o protocolo de um modelo tridimensional, baseado em esferoide de linhas de células intermediárias e maneiras as células primárias humanas carcinoma de células escamosas como integram e tal modelo em tratamento de câncer de cabeça e pescoço cirurgião e oncologista ( Figura 1).

Protocol

Todos os estudos mostrados neste manuscrito, ou seja, a utilização de amostras de tumor humano, estão protegidos sob e em consentimento com decisões anteriores da Universidade de medicina de Mainz/Universidade da Comissão de ética médica de centro de Munique. Pacientes deram o consentimento informado, de acordo com as diretrizes legais nacionais concordando para uso científico de excesso de material biológico que foi obtido no decorrer de seu tratamento. Pesquisa foi realizada em conformidade com todas as orient…

Representative Results

Fomos capazes de gerar reproducibly esferoides de suspensões de célula única, primeiro a partir de linhas de células diferentes, incluindo a linha de celular proprietária da PiCa, depois a partir de células de câncer humano primário derivado de biópsias de tumor fresco conforme descrito em Hagemann et al . 26. foram avaliados dois métodos estabelecidos para a geração de esferoide; os dois sendo o so-called enforcamento cair (HD) método e o mé…

Discussion

Fomos capazes de estabelecer um protocolo para gerar esferoides reprodutíveis de suspensões celulares, para ambas as linhas de célula e, em experimentos preliminares, as células do tumor primário humano. Nós primeiro avaliados dois métodos anteriormente descritos e identificado o ULA-método, um método onde as placas de cultura com ultra baixa aderência são utilizadas, para ser a mais segura e confiável para a geração de esferoides tridimensionais uniformes. Combinando dois métodos distintos para a leitura …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este projeto foi financiado por uma bolsa da Universidade de Munique (FöFoLe projeto-n. º: 789-781).

Materials

Dulbeccos modified Eagles medium (DMEM) Biochrom, Berlin, Germany F 0425
Fetal bovine serum Gibco Life Technologies, Paisley, UK 10500-064
penicillin/streptomycin Biochrom, Berlin, Germany A2212
sodium pyruvate Biochrom, Berlin, Germany L0473
non-essential amino acids Biochrom, Berlin, Germany K0293
L-Glutamine Biochrom, Berlin, Germany K0293
Liberase Roche Life Sciences, Basel, Switzerland 5401127001
GravityPLUS 3D Culture and Assay Platform InSphero, Schlieren, Switzerland PB-CS 06-001
GravityTRAP plate InSphero, Schlieren, Switzerland PB-CS-01-001
Ultra-low attachment (ULA) culture plates Corning, Corning, NY, USA 4520
airway epithelial cell growth medium Promocell, Heidelberg, Germany C-21060
amphotericin B Biochrom, Berlin, Germany A 2612
airway epithelial cell growth medium supplement mix Promocell, Heidelberg, Germany C39165
WST-8 test Promocell, Heidelberg, Germany PC PK-CA705-CK04
Keratinocyte SFMedium + L-Glutamine 500mL Invitrogen #17005-034
Bovine Pituitary Extract (BPE), 25mg Invitrogen #37000015
Recombinant human Epithelial Growth Factor 2.5 µg Invitrogen #37000015
DMEM High Glucose Invitrogen #21068-028
Penicillin Streptomycin 10000U/mL Penicillin/ 10000µg/mL Streptomycin Invitrogen #15140-122
F12 Nutrient Mix Invitrogen #21765-029
Glutamax (200 mM L-Alanyl-L-Glutamin-Dipeptide in NaCl) Invitrogen #35050087
HBSS (Ca, Mg) Life Technologies #14025-092 (no phenol red)
1x TrypLE Expres Enzyme Invitrogen #12604-013 (no phenol red)
Accutase (enzymatic cell detachment solution) Innovative cell technologies Cat# AT104
70 µm Falcon cell strainer BD Biosciences, USA #352350

References

  1. Hunter, K. D., Parkinson, E. K., Harrison, P. R. Profiling early head and neck cancer. Nat Rev Cancer. 5 (2), 127-135 (2005).
  2. Jerjes, W., et al. The effect of tobacco and alcohol and their reduction/cessation on mortality in oral cancer patients: short communication. Head Neck Oncol. 4, 6 (2012).
  3. Chen, H. H. W., Kuo, M. T. Improving radiotherapy in cancer treatment: Promises and challenges. Oncotarget. 8 (37), 62742-62758 (2017).
  4. Boeckx, C., et al. Anti-epidermal growth factor receptor therapy in head and neck squamous cell carcinoma: focus on potential molecular mechanisms of drug resistance. Oncologist. 18 (7), 850-864 (2013).
  5. Brand, T. M., Iida, M., Wheeler, D. L. Molecular mechanisms of resistance to the EGFR monoclonal antibody cetuximab. Cancer Biol Ther. 11 (9), 777-792 (2011).
  6. Seidl, D., Schild, S. E., Wollenberg, B., Hakim, S. G., Rades, D. Prognostic Factors in Patients Irradiated for Recurrent Head-and-Neck Cancer. Anticancer Res. 36 (12), 6547-6550 (2016).
  7. Shirai, K., et al. Clinical Outcomes of Definitive and Postoperative Radiotherapy for Stage I-IVB Hypopharyngeal Cancer. Anticancer Res. 36 (12), 6571-6578 (2016).
  8. Theile, D., et al. Evaluation of drug transporters’ significance for multidrug resistance in head and neck squamous cell carcinoma. Head Neck. 33 (7), 959-968 (2011).
  9. Slade, M. J., et al. Comparison of bone marrow, disseminated tumour cells and blood-circulating tumour cells in breast cancer patients after primary treatment. Brit J Cancer. 100 (1), 160-166 (2009).
  10. Mockelmann, N., Laban, S., Pantel, K., Knecht, R. Circulating tumor cells in head and neck cancer: clinical impact in diagnosis and follow-up. Eur Arch Otorhinolaryngol. 271 (1), 15-21 (2014).
  11. Gerlinger, M., et al. Intratumor heterogeneity and branched evolution revealed by multiregion sequencing. N Engl J Med. 366 (10), 883-892 (2012).
  12. Ledgerwood, L. G., et al. The degree of intratumor mutational heterogeneity varies by primary tumor sub-site. Oncotarget. 7 (19), 27185-27198 (2016).
  13. Loyo, M., et al. Lessons learned from next-generation sequencing in head and neck cancer. Head Neck. 35 (3), 454-463 (2013).
  14. Morris, L. G., et al. The Molecular Landscape of Recurrent and Metastatic Head and Neck Cancers: Insights From a Precision Oncology Sequencing Platform. JAMA Oncol. , (2016).
  15. Bauml, J. M., Cohen, R. B., Aggarwal, C. Immunotherapy for head and neck cancer: latest developments and clinical potential. Ther Adv Med Oncol. 8 (3), 168-175 (2016).
  16. Mack, B., et al. Rapid and non-enzymatic in vitro retrieval of tumour cells from surgical specimens. PLoS One. 8 (1), e55540 (2013).
  17. Ham, S. L., Joshi, R., Thakuri, P. S., Tavana, H. Liquid-based three-dimensional tumor models for cancer research and drug discovery. Exp Biol Med (Maywood). 241 (9), 939-954 (2016).
  18. Kelm, J. M., Timmins, N. E., Brown, C. J., Fussenegger, M., Nielsen, L. K. Method for generation of homogeneous multicellular tumor spheroids applicable to a wide variety of cell types. Biotechnol Bioeng. 83 (2), 173-180 (2003).
  19. Kunz-Schughart, L. A., Freyer, J. P., Hofstaedter, F., Ebner, R. The use of 3-D cultures for high-throughput screening: the multicellular spheroid model. J Biomol Screen. 9 (4), 273-285 (2004).
  20. Lin, R. Z., Chang, H. Y. Recent advances in three-dimensional multicellular spheroid culture for biomedical research. Biotechnol J. 3 (9-10), 1172-1184 (2008).
  21. Weiswald, L. B., Bellet, D., Dangles-Marie, V. Spherical cancer models in tumor biology. Neoplasia. 17 (1), 1-15 (2015).
  22. Cancer Genome Atlas, N. Comprehensive genomic characterization of head and neck squamous cell carcinomas. Nature. 517 (7536), 576-582 (2015).
  23. Duarte, S., et al. Isolation of head and neck squamous carcinoma cancer stem-like cells in a syngeneic mouse model and analysis of hypoxia effect. Oncol Rep. 28 (3), 1057-1062 (2012).
  24. Reid, P. A., Wilson, P., Li, Y., Marcu, L. G., Bezak, E. Current understanding of cancer stem cells: Review of their radiobiology and role in head and neck cancers. Head Neck. 39 (9), 1920-1932 (2017).
  25. Cossu, F., et al. Structural Insight into Inhibitor of Apoptosis Proteins Recognition by a Potent Divalent Smac-Mimetic. PLoS ONE. 7 (11), e49527 (2012).
  26. Hagemann, J., et al. Spheroid-based 3D Cell Cultures Enable Personalized Therapy Testing and Drug Discovery in Head and Neck Cancer. Anticancer Res. 37 (5), 2201-2210 (2017).
  27. Worp, H. B., et al. Can animal models of disease reliably inform human studies?. PLoS Med. 7 (3), e1000245 (2010).
  28. Wilding, J. L., Bodmer, W. F. Cancer cell lines for drug discovery and development. Cancer Res. 74 (9), 2377-2384 (2014).
  29. Chitcholtan, K., Asselin, E., Parent, S., Sykes, P. H., Evans, J. J. Differences in growth properties of endometrial cancer in three dimensional (3D) culture and 2D cell monolayer. Exp Cell Res. 319 (1), 75-87 (2013).
  30. Longati, P., et al. 3D pancreatic carcinoma spheroids induce a matrix-rich, chemoresistant phenotype offering a better model for drug testing. BMC Cancer. 13, 95 (2013).

Play Video

Citer Cet Article
Hagemann, J., Jacobi, C., Gstoettner, S., Welz, C., Schwenk-Zieger, S., Stauber, R., Strieth, S., Kuenzel, J., Baumeister, P., Becker, S. Therapy Testing in a Spheroid-based 3D Cell Culture Model for Head and Neck Squamous Cell Carcinoma. J. Vis. Exp. (134), e57012, doi:10.3791/57012 (2018).

View Video