Summary
이 연구에서 우리는 결과 얻기 위해 더 많은 재현, 중간 대뇌 동맥 폐색 (MCAO) 마우스 모델을 구축 하 여 기존 실험 방법 수정. Glycyrrhizae 기 수의 구강 관리 외 뿌리 줄기 (GR) 메탄올 추출 물 (GRex), 선 유도 따라 크게 감소 치료 제어 그룹을 기준으로 총 경색 볼륨.
Abstract
허 혈 뇌졸중 후 뇌 혈 류의 reperfusion 뒤 신경 세포의 죽음 및 뇌 조직의 손실을 이끌어 낸다. 선 공부에 대 한 가장 일반적으로 사용 되 동물 모델은 중간 대뇌 동맥 폐색 (MCAO) 모델. 이전 연구는 동일한 실험 동물 종 비슷한 MCAO 조건 하에서 사용 하는 경우에 다른 경색 크기를 보고 있다. 따라서, 우리는이 불일치를 해결 하는 향상 된 실험 방법 개발. 마우스 MCAO 폐색 소재로 인간의 선 조건을 모방 하는 필 라 멘 트를 사용 하 여 대상이 됐다 고 필 라 멘 트 두께 더 재현 경색 볼륨 설정 최적화 되었다. Glycyrrhizae 기 수의 마우스는 메탄올으로 치료 추출 외 뿌리 줄기 (GRex) 선 유도 따라 크게 감소 총 경색 볼륨 및 치료 제어 그룹을 기준으로 세포가 살아 나 기의 증가 수. 이 성공적으로 실험 프로토콜을 수정 하 고 reproducibly 뇌경색에 GRex의 유익한 효과 설명 했다.
Introduction
허 혈과 reperfusion 대뇌 혈 류로 인 한 뇌 손상 신경 세포의 죽음 및 뇌 조직의 손실을 이끌어 낸다. 뇌 손상의이 유형은 비만, 고혈압, 당뇨병 mellitus1,2등 대사 질환의 확산으로 인해 뇌혈관 질환의 증가 보급 증가 하 고 있습니다. 절대 뇌졸중 노인 환자는 극적으로 증가 세계적으로, 그리고 수시로 남겨진다 장기 장애, 이러한 환자에 대 한 의료 서비스의 비용 주요 사회적 부담. 따라서, 2 차 장애 경제 부담1,2를 줄이기 위해 가능한 만큼 많이 완화 한다.
뇌의 가장 일반적으로 사용 되는 설치류 모델은 있는 MCA는 가려진는 실리콘 코팅 수술 suturing 필 라 멘 트 혈액 흐름을 차단 하와 허 혈 성 뇌졸중3, 를 일으키는 중간 대뇌 동맥 (MCA) 폐색 (MCAO) 모델 4. 폐색 소재 내부 luminal 필 라 멘 트 삽입 기간을 조작 하 여 폐색 시간과 영원의 컨트롤 수를 필 라 멘 트를 사용 하 여.
이전 연구는 같은 설치류 MCAO 모델을 사용 하는 경우에 뇌의 총 볼륨 차이가 실험, 연구의 낮은 재현성을 일으키는 나타났습니다. 재현성을 높이기 위해 우리는 실험에 사용 된 필 라 멘 트 민트의 두께 최적화. 대뇌 허 혈 성 기간 및 허 혈 성 기간 60 분 보다 긴의 체적 영역 허용 했다 유도 경색의 예비 연구의 결과 관찰 하 여 측정할 뇌 조직 손상.
Glycyrrhizae 기 수 외 Rhizoma (GR), 일컬어 감 초, 말린된 뿌리와 뿌리 줄기 Glycyrrhiza uralensis 의 구성 및 G. 나무. 그것은 중국 하 고 한국 전통 의학에서 식품 첨가제와 약5,6,7등 다양 한 용도로 사용 되었습니다.
이전 연구8, GR 메탄올 추출 물 (GRex) MCAO 마우스에서 안티-apoptotic 효과 보여주었다 사전 치료 (Bcl-2) B-세포 림프 종 2의 단백질 표정에 있는 감소의 중요 한 예방 및 Bcl 초대형 (Bcl-xL)를 포함 하 여. 이 연구는 GRex 후 경색 치료 효과적으로 MCAO-대뇌 손상에서 경색 볼륨을 감소 하는 경우 결정의 효율성을 평가 하 여 기존의 MCAO 마우스 모델의 재현성을 향상 시키기 위해 실시 되었다.
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Protocol
동물 관련 된 모든 절차는 부산 대학교 (승인 번호, 부산대-2016-1087)의 윤리 위원회에 의해 승인 되었다. 이 연구에 대 한 그래픽 개요는 그림 1에 표시 됩니다.
1. 준비 및 GRex의 관리
참고:이 연구에 사용 된 GR 상업적인 제약 회사에서 구입 했다.
- 메탄올의 2000 mL에 GR의 200g를 배치 하 고 5 일 동안 실 온 (25 ° C)에서 품 어.
- 0.26 m m 두께와 5 µ m 기 공 크기, 필터 종이 사용 하 여 혼합물을 필터링 하 고는 상쾌한 제거. GR 잔류물에 메탄올 1000 mL를 추가 하 고 다시 필터링.
- 두 개의 supernatants 결합, 필터 종이 통해 필터링, 진공, 아래 집중 하 고 생산 GRex 잔류물을 freeze-dry.
- 디 메 틸 sulfoxide (DMSO), 0.9% 생리 식 염 수로 희석에 GRex 녹이 고는 0.45 μ m 주사기 필터를 통해 필터링. 그런 다음 < 5 %DMSO 최종 농도 조정 합니다.
- 구강을 통해 MCAO reperfusion 후 GRex (300 밀리 그램/kg 체중) 1 시간을 관리 합니다. 생리 식 염 수 (10 mL/kg 체중) 정상적인 그룹 및 제어 그룹에만에 각각 희석 DMSO를 관리 합니다.
참고:이 실험에 사용 된 GRex 농도 있었던 우리의 이전 연구8농도 따라 결정 되었다.
2. 마우스 모델 MCAO의
- 사용 남성 C57BL/6 쥐 세 6 주 하 고 22-25 g. 무게 제공 표준 차 우와 물, 그리고 집에 무료로 액세스할 모든 동물 제어 온도 (22 ± 1 ° C)는 환경에서 그들 12 h 명암 주기.
- 보통 가짜 운영, 제어, 및 GRex 치료 그룹의 구성 한다 6 마우스 각각의 그룹으로 마우스를 나눕니다.
- MCAO 수술 (고이즈미 외 의 방법의 수정 9) 제어 및 스테레오-현미경을 사용 하 여 GRex 치료 그룹에.
- 70% N2O 2% isoflurane 30% O2를 사용 하 여 마우스에 흡입 마 취를 유도. 마 취 때 마우스 꼬리에 적용 하는 기계적인 자극에 반응이 충분 한으로 간주 됩니다. 36.5 ± 0.5 ° C 온도 지주 담요 온도계에 연결 하는 몸을 사용 하 여에서 쥐의 체온을 유지 한다.
- 가슴에 머리를 제거 하 고 면도 하 여 쥐의 목 제 모 크림의 사용 하 여 다음 2 번 술과 함께 번갈아 betadine 스크럽으로 피부 수술 부위의 소독 이며 약 2cm의 절 개 수술로 긴 목의 센터에 블레이드입니다. 조심 스럽게 왼쪽된 일반적인 경 동맥 (LCCA), 외부 경 동맥, 및 주위 결합 조직에서 내부 경 동맥의 분기를 격리 합니다.
- 외부 경 동맥과 (4-0 비단 봉합, 반 히 치 매듭) 일시적으로 혈액 흐름을 차단 하는 수술 봉합으로 일반적인 경 동맥 내부 경 동맥으로 작업 중 선.
- 실리콘 코팅 나일론 봉합 (8-0 monofilament, 11 m m 긴) 왼쪽된 MCA의 기원에 내부 경 동맥을 통해 삽입 합니다. 0.10-0.12 범위에 필 라 멘 트의 실리콘 코팅 부분의 두께 조정 m m.
- 레이저 도플러 유량 계를 사용 하 여 MCA에 상대적인 대뇌 혈 류 (rCBF)에 있는 감소를 측정 합니다. MCAO는 rCBF은 전체 허 혈 성 기간 동안 휴식 조건 값의 < 20%에서 유지 될 때 확인 될 것입니다.
- 대뇌 동맥을 차단 하는 동안 2 시간에 대 한 혈관에 삽입 된 필 라 멘 트를 수정 하 고 신중 하 게 철회 reperfusion의 22 h에 대 한 혈액 흐름을 복원 하는 필 라 멘 트. 5 장소 (3-0 비단 봉합, 두 절반 보내고 매듭)에서 봉 제 하 여 피부를 봉합 하 고 마 취에서 각 성 각 마우스 허용.
- 일반 그룹에서 다음과 같은 예외 (2.4)까지 위의 동일한 절차에 따라 가짜 작업을 수행. 일반적인 경 동맥 선 고 베인된 근육과 피부를 봉합.
3. 손상 된 뇌 조직의 볼륨의 측정
- CO2 흡입 뇌 손상 측정에 대 한 생쥐의 안락사, 후 소비 마우스 MCAO 아이리스 수술가 위를 사용 하 여 직각된 포 셉의 발병 후 24 시간 두뇌.
- 가 위를 사용 하 여 머리를 제거한 후 두개골에서 피부를 뒤집어 머리의 중간 피부에 절 개를 확인 합니다.
- 정수 리 뼈 각도 겸 휴식, 경질 벗는 동시에 중요 하 고 신중 하 게 두개골에서에서 뇌를 분리.
- 컷 섹션 (두께 1 m m)으로 삭제 조직 마우스 뇌 매트릭스를 사용 하 고 2 %2,3,5 triphenyltetrazolium 염화 (TTC)의 솔루션에 17 분에 대 한 섹션을 얼룩.
- 적어도 2 시간에 대 한 10% 포 르 말린에 섹션을 수정 하 고 디지털 카메라를 사용 하 여 사진을. TTC 괴 지역 흰색 될 것입니다 하는 동안 가능한 조직 붉은 얼룩 관찰 됩니다.
- 분석 하 고 계량 ImageJ를 사용 하 여 각 섹션의 대뇌 경색 영역.
4. hematoxylin과 오신 (H & E) Cresyl 조직학 섹션의 보라색 얼룩
- CO2 흡입에 의해 조직학 연구에 대 한 마우스를 안락사 그리고 그들 transcardially 인산 버퍼 (PBS), 염 분의 10 mL와 10 mL 4 %paraformaldehyde (PFA)의 뒤에 perfuse. (3.1) 위의 동일한 절차를 사용 하 여 뇌를 분리 하 고 30% 자당의 10 mL에 뇌를 하룻밤 담가.
- 최적의 절삭 온도 (10 월) 화합물에 뇌 조직을 포함 하 고 coronally는 cryostat를 사용 하 여 15 µ m 두께 섹션으로 그것을 슬라이스. 되며 고 오신 (H & E) 또는 cresyl 보라색 얼룩이 다음 유리 슬라이드에 섹션을 탑재 합니다.
- 1 분 뒤에 5 분 동안 되며 솔루션에서 얼룩에 대 한 80% 에탄올에 유리 슬라이드에 젖어.
- 1% 산 알코올에 슬라이드를 두 번 찍어, 30에 대 한 포화 리튬 탄산염 해결책에서 담가 30 s, 그리고 counterstain 30 오신 솔루션에 대 한 수돗물으로 세척 s s.
- 린스 수돗물에 슬라이드, 연속적으로 95%와 절대 에탄올에 담근 다.
- 슬라이드를 건조, 적어도 10 분 동안 크 실 렌에서 그들을 취소 하 고 설치 매체를 사용 하 여 coverslips를 탑재.
- 적어도 1 시간, 클로 프롬 하룻밤 희석 50% 에탄올에 침수에 의해 다음에 대 한 따뜻한 슬라이드 유리 슬라이드를 놓습니다.
- 40 ° C의 건조 오븐에서 10 분 0.1 %cresyl 바이올렛과 슬라이드 얼룩.
- 30 분 동안 95% 에탄올에 immerse 다음 2 시간 동안 절대 에탄올에서 탈수.
- 5 분, 크 실 렌에 2 번 후 공기 건조 후 장착 매체 마운트하기.
- 현미경을 사용 하 여, MCAO 유도 뇌 손상 후 발생 한 조직학 변화 관찰.
5. 통계 분석
- 실험 결과 수단 ± 표준 편차로 표현 하 고는 단방향 분산 분석 (ANOVA) Tukey의 임시 게시물 분석 데이터 분석 소프트웨어를 사용 하 여 다음을 사용 하 여 그룹 간의 통계적 의미를 결정 합니다.
- P에 통계적 의미를 설정-< 0.05 값.
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Representative Results
가짜 운영 하는 일반 그룹에 아무 대뇌 경색 반면 상대적으로 광범위 한 손상된 영역 관찰 제어 그룹에서 관찰 된다. 쥐에 관리 300 mg/kg GRex MCAO 모델 그룹, 손상 된 영역에서 통계적으로 유의 한 감소에에서는 (그림 2) 관찰 됩니다.
조직학 변화는 조사에 의해 허 혈 성 뇌 섹션 H & E 또는 cresyl 보라색 얼룩. H & E 염색 제공 합니다 구조 정보를 특정 기능에 대 한 정보와 셀10, 반면 hippocampal 신경11의 총 수를 추정 하는 데 사용 됩니다 cresyl 보라색 얼룩. 따라서, H & E 또는 cresyl 바이올렛 강도, ImageJ 소프트웨어 (그림 3A)를 사용 하 여 측정 세포 생존의 인덱스 제공. H & E와 cresyl 바이올렛 농도 크게 얼룩 정상 그룹 (그림 3B, C 3)을 기준으로 컨트롤 그룹에 있는 감소. GRex 대우 그룹 제어 그룹 (그림 3C) 보다 덜 신경 세포의 죽음을 암시 하 고 큰 조직학 무결성을 보여줍니다. 이 결과 GRex 국 소 빈 혈 또는 reperfusion 유도 뇌 손상에 대 한 강력한 신경 보호 효과 나타냅니다.
그림 1 . Glycyrrhizae 기 수의 메탄올 추출 물과 중간 대뇌 동맥 폐색 (MCAO) 모델 및 치료 계획 외 Rhizome (GRex). 마우스 GRex 1 h 유지 되었다 MCAO reperfusion 후의 300 mg/kg로 치료 했다 2 헤 쥐 했다 안락사 24 h 후는 MCAO 개시, 그리고 수확된 뇌 조각 단백질 분석 결과 대 한 깊은 동결에 저장 했다 또는 TTC 경색에 대 한 솔루션으로 물 측정입니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 2 . Glycyrrhizae 기 수 추출 메탄올의 효과 보여주는 두뇌 (A) 섹션의 대표 이미지 동부 표준시 Rhizome (GRex) 치료 후 중간 대뇌 동맥 폐색 (MCAO)에-뇌 경색 볼륨 및 300 mg/kg GRex 1 h (B) 단일 치료 유도 MCAO reperfusion 크게 경색 볼륨을 억압 한 후. 결과 수단 ± SDs. # # #p으로 표시 됩니다 < 0.001 vs 일반 그룹 * * p < 0.01 vs 제어 그룹; n = 그룹 당 6. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 3 . (A) 되며 고 오신 (H & E)의 대표 이미지-cresyl 바이올렛 스테인드 뇌 섹션 및 (B, C) 색상 농도, Glycyrrhizae 기 수의 메탄올 추출 물의 효과 평가 하는 데 사용 했다 동부 표준시 Rhizome (GRex) 중간의 두뇌에 대뇌 동맥 폐색 (MCAO)-쥐 부상. 마우스 머리에서 조직학 무결성 및 조직 손상 (B) H를 사용 하 여 평가 & E 또는 (C) cresyl 바이올렛 1 h 얼룩 게시물 MCAO reperfusion 했다. H & E-얼룩진 부분에 얼룩 레드 핵 손상을 나타냅니다. Cresyl 바이올렛 염색 신경 보라색 얼룩이 있었다. GRex 대우 그룹 보다 제어 그룹, 덜 신경 세포 죽음을 나타내는 더 나은 조직학 무결성을 보여주었다. 는H & E-스테인드; b, 바이올렛-스테인드; cresyl c 와 d, 확대 및 b, 각각. 결과 수단 ± SDs. # # #p < 0.001, 그리고 * p < 0.05 대 정상 및 제어 그룹; n = 그룹 당 6. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
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Discussion
뇌졸중 주요 위험 요소는 만성 고혈압, 당뇨병, 고 지 혈 증, 등 대사 질환의 증가 보급, 뇌졸중 예방 및 치료는 되었다 의료 연구12, 의 중요 한 지역 13. 언어 및 뇌졸중 후 운동에 적자는 강하게 뇌 조직14 환자 및 그들의 가족15가난한 삶의 질에서 발생 하는 손상의 정도 연관. 그것은 약물 치료의 효능 연구를 인간의 질병에서 발생 하는 그 같은 병 적인 변화를 포함 하는 뇌졸중의 적절 한 동물 모델을 사용 하는 것이 중요. MCAO 모델 대뇌 동맥 혈관을 방해 하 여 thrombotic 스트로크를 모방 합니다. 그것은 상대적으로 재현할 수 및 최소 침 습16,17,,1819때문에 일반적으로 사용 됩니다.
그러나, 같은 휴식에 대 한 유도 뇌 경색의 영역의 비교 시간 여러 연구자에 의해 보고 된 총 경색 볼륨 연구 사이 변화 한다 보여준다. 우리는 이것이 사용 되는 폐색 재료와 수술 차이 결론을 내렸다. 따라서, 비록 MCAO 설치류 모델 높은 재현성으로 간주 됩니다, 그것 아니다 항상 같은 재현성을 얻을 수 없습니다. 따라서, 우리는 예비 연구, 이전 보고서8통해 마우스 MCAO 모델에 사용 된 필 라 멘 트의 두께 최적화.
가장 독특한 우리의 예비 연구 결과에 비해 다른 연구는 그 TTC 얼룩 공개 하지 않았다 어떤 대뇌 경색 때 60 분 (데이터 표시 되지 않음)는 허 혈 유도 되었다. 심지어 우리의 결과 다른 연구 결과 보다 낮은 경색 볼륨을 보여주었다 쥐, MCAO의 90 및 120 분 다음. 이 연구의 한 가지 한계는 우리가 아직 이러한 결과;의 정확한 원인은 결정 되지 않은 그러나, 우리는 추가 연구에서이 현상을 탐구 계획입니다.
최근 수많은 연구 GR 또는 그 구성 요소는 antitumor, 항균, 항 염증 효과20,,2122등 약리 활동 보고. 이전 연구는 GRex 전처리는 효과적으로 upregulating Bcl-2 및 Bcl xL8의 단백질 표정에 의해 caspase 9의 활성화를 저해 했다. 그러나, 뇌졸중 예방 치료 후 뇌졸중 치료 보다 덜 임상 관련 있습니다.
기반으로 했다이 연구에서는 이전 연구에8 GRex MCAO 마우스 모델에서 치료 후의 효과 평가. 대표적인 결과 섹션 에서처럼 GRex 후 처리 총 경색 볼륨 줄이고 MCAO 유도 뇌 손상 생쥐에서 세포 구조에 피해 장황에 유익한 효과 보여주었다. 후 허 혈 성 뇌 손상에 GRex의 특정 액션 메커니즘 연구, 부족 하지만 성공적으로이 연구에 사용 된 실험 프로토콜 뇌졸중의 인간의 영향을 흉내 낸에 의해이 약초 요법의 효과 증명.
하지만 실험 결과가이 연구, 신경 적자 점수에에서 나타나지 않으면 (NDS) 우리의 예비 실험에서 측정 되었다 고 때문 이었던 것으로 추정 되는 컨트롤 및 GRex 처리 그룹 간에 상당한 차이가 지적 했다 획의 심각도에 비해 짧은 관측 시간을. 우리는 보통 손상 후 오랜 기간 동안 NDS에 GRex 치료의 효과 관찰 계획입니다.
결론적으로, 마우스 MCAO 모델에서 GRex 치료의 신경 보호 효과 좋은 재현성이 연구에서 입증 되었다. 기본 메커니즘에 관련 된 단백질은 미래 연구에서 시험 되어야 한다.
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Disclosures
저자는 공개 없다.
Acknowledgments
적용 되지 않습니다.
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Glycyrrhizae Radix et Rhizoma | Gwangmyoung Pharmaceuticals Co., Korea | Glycyrrhizae Radix et Rhizoma | |
Qualitative filter paper | Advantec | Filter paper No. 2 | Qualitative filter paper |
Dimethyl sulfoxide (DMSO) | Sigma | D8418-250ML | Dimethyl sulfoxide (DMSO) |
Syringe filter (0.45 µm) | Sigma | CLS431220 | Syringe filter (0.45 µm) |
Stereo Microscope | Leica | M50 | Stereo Microscope |
Stereo Microscope | Nikon | SMZ745 | Stereo Microscope |
Laser Doppler | Moor Instrument | moorVMS-LDF | Laser Doppler |
Anesthesia Tabletop Bracket with N2O&O2 Flowmeter System | Harvard Appratus | 34-1352 | Anesthesia Tabletop Bracket with N2O&O2 Flowmeter System |
Homeothermic Monitoring System | Harvard Appratus | 55-7020 | Homeothermic Monitoring System |
Digital Camera | Canon | Eos-M2 | Digital Camera |
Cryostat | Leica | CM3050S | Cryostat |
Microscope | Carl Zeiss | Zeiss Axio | Microscope |
Data Analysis | Systat Software Inc. | SigmaPlot version 12 | Data Analysis |
Data Analysis | NIH Image | ImageJ | Data Analysis |
Mouse diet | Doo Yeol Biotech | Standard rodent chow | Mouse diet |
Isoflurane | JOONGWAE | A02104781 | Isoflurane |
Isoflurane | TROIKAA | ISOTROY 100 | Isoflurane |
Silk suture (4-0 Black silk) | AILEE | SK47510 | Silk suture (4-0 Black silk) |
Silk suture (3-0 White silk) | Baekjae | 57 | Silk suture (3-0 White silk) |
Nylon suture (8-0 monofilament) | AILEE | NB825 | Nylon suture (8-0 monofilament) |
2,3,5-triphenyltetrazolium chloride (TTC) | Sigma | T8877-25G | 2,3,5-triphenyltetrazolium chloride (TTC) |
Formalin (Formaldehyde solution) | JUNSEI | 69360-1263 20KG | Formalin (Formaldehyde solution) |
Hematoxylin (Harris Hematoxylin) | YD Diagnostics | EasyStain | Hematoxylin (Harris Hematoxylin) |
Eosin (1% Eosin Y Solution) | MUTO PURE CHEMICALS | 3200-2 | Eosin (1% Eosin Y Solution) |
Cresyl violet (acetate) | Sigma | C5042-10G | Cresyl violet (acetate) |
Paraformaldehyde | Sigma-Aldrich | P6148-1KG | Paraformaldehyde |
Sucrose | JUNSEI | 31365-0350 1KG | Sucrose |
Optimum cutting temperature (OCT) compound | Scigen | 4583 | Optimum cutting temperature (OCT) compound |
Disecting Knife | Fine Science Tools | 10055-12 | Disecting Knife |
#4 Forcep | Fine Science Tools | 11241-30 | #4 Forcep |
#5 Forcep | Fine Science Tools | 11254-20 | #5 Forcep |
#6 Forcep | Fine Science Tools | 11260-20 | #6 Forcep |
#7 Fine Forcep | Fine Science Tools | 11274-20 | #7 Fine Forcep |
Surgical Scissors | Fine Science Tools | 14001-12 | Surgical Scissors |
Extra Fine Bonn Scissors | Fine Science Tools | 14084-08 | Extra Fine Bonn Scissors |
Moria Pascheff-Wolff Spring Scissors | Fine Science Tools | 15371-92 | Moria Pascheff-Wolff Spring Scissors |
Vessel Dilating Forcep | Fine Science Tools | 18153-11 | Vessel Dilating Forcep |
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